- •Методические рекомендации Лабораторная диагностика риккетсиозов сельскохозяйственных животных
- •Содержание
- •План занятия
- •1.2. Морфологические свойства
- •1.3. Тинкториальные свойства
- •1.4. Культуральные и биохимические свойства
- •1.5. Токсинообразование
- •1.6. Устойчивость
- •1.7. Патогенность
- •1.8. Дифференциация риккетсий от вирусов и прокариотных микроорганизмов
- •2.1. Краткие эпизоотологические данные
- •2.2. Патогенез
- •2.3. Основные симптомы и патологоанатомические изменения
- •2.4. Характеристика возбудителя.
- •2.4.1. Морфологические и тинкториальные свойства.
- •2.4.2. Культуральные свойства.
- •2.4.3. Антигенная структура.
- •2.4.5. Устойчивость.
- •2.4.6. Лабораторная диагностика Ку-риккетсиоза.
- •3.0. Возбудитель риккетсиозного кератоконъюнктивита крупного рогатого скота
- •3.1. Краткие эпизоотологические данные
- •3.2. Патогенез
- •3.3. Основные клинические признаки
- •3.4. Характеристика возбудителя.
- •4. Возбудитель анаплазмоза крупного и мелкого рогатого скота
- •4.1. Краткие эпизоотологические данные
- •4.2. Патогенез
- •4.3. Основные симптомы и патологоанатомические изменения
- •4.4. Характеристика возбудителя
- •4.4.1. Морфология и тинкториальные свойства
- •4.4.2. Устойчивость.
- •4.5. Лабораторная диагностика
- •4.6. Иммунитет, средства специфической профилактики и терапия
- •5. Возбудитель эперитрозооноза свиней.
- •5.1.Краткие эпизоотологические данные
- •5.3.Основные симптомы и патологоанатомические изменения.
- •5.4. Характеристика возбудителя.
- •5.4.1. Морфология и тинкториальные свойства.
- •5.5.1. Микроскопический метод.
- •5.5.2. Серологический метод.
- •5.5.3. Молекулярно-генетический метод.
- •5.5.4. Биологический метод.
- •5.5.5. Гематологические исследования.
- •5.5.6. Гистологический метод.
- •7.0. Приложение 2.
- •8.0. Список используемой литературы
5.5.2. Серологический метод.
Включает исследование сыворотки крови в РСК и ИФА с целью выявления антител. ИФА может быть использована для идентификации возбудителя. Постановка серологических реакций проводится согласно наставлению по применению тест-систем.
5.5.3. Молекулярно-генетический метод.
Предусматривает постановку ПЦР. Данный метод является наиболее чувствительным и специфичным в идентификации Eperythrozoon suis.
5.5.4. Биологический метод.
Проводится на поросятах 2 – 4 месячного возраста. Поросят инфицируют кровью или переливанием крови от больного животного здоровому. Клинические признаки заболевания проявляются через 3 максимум 4 недели. Биопробу считают положительной при характерной клинической картине и обнаружении возбудителя микроскопическим методом.
5.5.5. Гематологические исследования.
Кровь, взятая непосредственно в течении лихорадки, имеет блестящую поверхность и не осаждается на стенках пробирки, а агглютинируется при комнатной температуре. Микроагглютинация характерный признак для Eperythro-zoon suis. Кровь исследуется сразу же после взятия. Температура крови и материалов должна быть 37 ˚С.
Eperythrozoon suis вызавает гемолитическую анемию с характерными нормахромной и хромоцитной анемиями. Показатели болезни и ее тяжести - количество эритроцитов в крови животных, содержание гемоглобина и гематокрит. У больных животных наблюдается снижение количества эритроцитов до 2,6 млн/мл и 80% эритроцитов пораженены. Также прогрессирует нейтрофильный лейкоцитоз, снижается количество тромбоцитов и плазма крови приобретает желтушное окрашивание.
В крови снижение количества эритроцитов, и снижение значений гемотокрита и гемоглобина.
В сыворотке исследуется содержание билирубина и способность связывания железа.
На результат исследования указывают: количество эритроцитов от 1 до 2 1012/л, гемоглобин 20-40 г/л, часто 70-90 г/л., лейкоцитов 20-50 109 /л.
На лейкограмме увеличение количества лимфоцитов и моноцитов.
При субклинической форме количество эритроцитов уменьшается до 2,4-5 млн, лейкоцитов возрастает до 8,5 тыс., СОЭ ускорена, возможны нейтрофилия и эозинофилия. Пораженность эритроцитов достигает 90%.
5.5.6. Гистологический метод.
Проводят гистологическое исследование печени, почек и селезенки с целью установления скоплений гемосидерина. Решающего значения не имеет.
Диагноз на эперитрозооноз считают установленным в одном из следующих случаев:
При обнаружении микроскопическим методом в мазках крови клинически больных животных эперитрозоонов с характерной морфологией и тинкториальными свойствами;
При обнаружении специфических антител в РСК, ИФА;
При идентификации возбудителя в ИФА или ПЦР.
Иммунитет, средства специфической профилактики и терапия.
Иммунитет окончательно не изучен. Установлено, что в результате переболевания иммунный ответ неполный и кратковременный. В процессе болезни вырабатываются антитела класса Ig M.
Средств спецефической профилактики и терапии не разработано.
Больных изолируют и лечат, а подозрительных в заболевании и паразитоносителей обрабатывают одно- или двукратно лекарственными препаратами.
Больным животным создают покой и улучшают кормление. Свиньям на откорме с признаками острого течения заболевания для лечения применяется парэнтеральное введение окситетрациклина в дозе 20 - 30мг/кг живой массы. Парэнтерально окситетрациклин можно также давать свиньям в инфицированных стадах (неблагополучных) время от времени при стрессах: перегрупировках и после ветеринарных и зоотехнических процедур. Тем не менее наряду с парэнтеральным введением можно проводить и оральные обработки, а также сочетанные обработки. Это может уменьшить возникновение анемий.
Здоровым поросятам и отстающим в росте дополнительно нужно давать препараты железа.
Свиньям также назначают неоарсфенамин (новарсенол) – 15 - 45 мг на 1 кг живой массы. Хорошие результаты дают препараты азидина и мышьяковистой кислоты. Симтоматические средства в зависимости от показаний.
Курс лечения составляет 3 – 4 недели.
С целью профилактики в хозяйстве должна иметься программа обработак против экто- и эндопаразитов. Должны быть приняты меры предосторожности перезаражения животных при любых процедурах с кровью: передача при хирургических операциях, ветеринарных обработках - эти операции должны быть ограничены при работе с инфицированными животными. Должны иметься отдельные стерильные инструменты и материалы для каждой зоотехнической процедуры: перегруппировках, кастрациях, обрезании хвостов и других операциях не менее двух наборов инструментов в достаточном количестве. Проводить тщательные дезинфекции после каждой зоотехнической процедуры.