- •05201051003 Мазепа
- •1Тцр — полимеразная цепная реакция
- •Внедрение в практику.
- •1.2.2 Диагностика хеликобактерной инфекции
- •2.3. Диагностика парентеральных вирусных гепатитов. Парентеральные вирусные гепатиты - группа инфекционных
- •1.3 Внедрение и использование пцр в практическом здравоохранении Российской Федерации.
- •2.Собственные исследования
- •2.1. Материалы и методы
- •2.1.2. Методы.
- •2,5 Мкл праймеров по 5-15 пмоль/мл каждого; 5 мкл 10-кратного реакционного буфера 2,5 мкл dNtp по 1мМ каждого; 1 мкл Tag-пoлимepaзы 0,5 е.А. 29 мкл деионизованной воды
- •1. Готовили реакционную смесь для амплификации из расчета на 1 пробу: буфер — Змкл, аЫтр - 3 мкл,
- •2.2.1.1. Выбор приборов для проведения пцр и фиксирования результатов.
- •2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9 - Фрагменты гена шигоподобного токсина vt1.
- •2.2.2.4, Алгоритм использования метода пнр в диагностике бактериальных оки
- •Первичное обследование лиЦ—
- •2.2.3.2. Сравнительный анализ результатов детекции h.Pylori. Полученных традиционными и молекулярно-биологическими методами.
- •2.2.3.3. Изучение распространенности h.Pylori у больных с различными формами гастродуоденальной патологии
- •Тип патологии
- •2.2.4.4. Изучение вероятности вертикального пути передачи вгс и вгв.
- •Положительный результат
- •Продолжение лечения
- •Отрицательный результат
- •Назначение лечения
- •Назначение лечения
- •Отрицательный результат Продолжение лечения
- •2.2.5.1. Место пцр в общей системе методов диагностики нуги.
- •Выявлены u.Urealyticuym m hominis
- •IПри необходимости выявление возбудителей в отдельных субстратах
- •Список источников литературы.
- •307 307Приложение 1
- •310Частота выявления возбудителей нуги по сезонам 1998-2008 годов.
Первичное обследование лиЦ—
поступающих
в инфекционные
стационары при спорадической
заболеваемости для
выявления
основных бактериальных возбудителей ОКИ.
Обнаружение генов факторов патогенности клинических изолятов Escherichia coli, выделенных от больных ОК
И
ПЦР - детекция возбудителей ОКИ
Оперативное скрининговое обследование лиц, обсемененности объектов внешней среды, продуктов питания для определения источника, факторов и путей передачи инфекции при расшифровке вспышечной заболеваемости ОКИ
Определение эффективности проведенных санитарно противоэпидемических мероприятий
.
Рис 13 Основные направления использования ПЦР в клинической диагностике и эпиднадзоре ОКИ.
Рис.
14. Алгоритм использования метода ПЦР
в диагностике бактериальных ОКИ
2.2.3. ПНР в диагностике хеликобактерной инфекции и изучении ее возбудителя
На данном этапе проводилось внедрение комплекса ПЦР тест-систем для выявления H.pylori и его значимых генов в практическую диагностику хеликобактерной инфекции. Определялась объективность, значимость, информации, получаемой новыми методами.
2.2.3.1 Выявление H.pylori в различных типах клинического материала
Первой из решаемых нами задач стала оценка возможностей метода ПЦР при детекции H.pylori в различных субстратах (биоптатах слизистой желудка и двенадцатиперстной кишки, желудочном соке, фекалиях). Известно, что H.pylori колонизирует эпителий желудка и двенадцатиперстной кишки, поэтому традиционно для его выявления рекомендуется исследовать биоптат слизистых этих отделов. Однако отбор биоптатов — процедура инвазивная, требующая дорогостоящего оборудования и травмирующая пациента. Кроме того, по протоколу при проведении фиброгастроскопиии для последующего исследования на присутствие Н. pylori рекомендуется производить отбор материала не менее чем в 5 участках, что на практике зачастую не представляется возможным.
Наиболее информативным субстратом для выявления H.pylori методом ПЦР нам представлялся желудочный сок. По данным литературы обсемененность Н. pylori слизистых желудка и двенадцатиперстной кишки неравномерна [56], поэтому результат исследования в значительной степени зависит от правильности отбора материала. Желудочный сок является интегративным субстратом, омывающим весь желудок, поэтому даже при наличии небольших очагов колонизации H.pylori можно ожидать присутствие патогена в желудочном соке. Чувствительность метода ПЦР при выявлении хеликобактера в желудочном соке составляет 96% [375, 391], что свидетельствует о перспективности этого субстрата как объекта для выявление H.pylori.
Нами проведена оценка возможности использования желудочного сока, и фекалий как альтернативных биоптатату материалов для ПЦР-детекции Н. pylori. У 128 пациентов с гастродуоденальной патологией параллельно и одновременно анализировались образцы биоптатов слизистой желудка и пробы желудочного сока. Н. pylori выявлен в 93 пробах биоптатов (72,6±3,9%), и в 92 пробах желудочного сока (71,9±4,0%). Варианты полученных результатов представлены в таблице 13.
Таблица 13.
Выявление H.pylori в образцах биоптатов и желудочного сока методом ПЦР при параллельном исследовании.
Количество обследованных |
Варианты результатов ПЦР (в абс. значениях и %) | |||
Биоптат Нр+ Жел.сок Нр+ |
Биоптат Нр+ Жел.сок Нр- |
Биоптат Нр- Жел.сок Нр+ |
Биоптат Нр- Жел.сок Нр- | |
128 |
83 |
10 |
9 |
.26 |
100% |
64,8±5,2 |
7,81±2,9 |
7,03±2,99 |
20,31 ±4,6 |
«Нр+»
- H.pylori
выявлен «Нр-»
- Н. pylori
не
выявлен
В 109 случаях наблюдалось совпадение результатов выявления H.pylori методом ПЦР в каждом из субстратов, от одного больного, что составило 85,2±3,1% от общего числа обследованных.
Варианты несовпадений, когда один из субстратов был H.pylori- положительным, а другой отрицательным составили 14,8±3,1%. BIO случаях (7,8±2,4%) Н. pylori был выявлен в биоптате и не обнаружен в желудочном соке, в 9 (7,0±2,3%) при наличии в желудочном соке он не найден в биоптате. Можно предположить, что эти варианты получены в следствие неудачного отбора материала при фиброгастроскопии (биоптат взят из неколонизированного возбудителем участка) и низкой концентрацией H.pylori в желудочном соке.
Между показателями частоты выявления хеликобактера в желудочном соке и биоптатах, статистически достоверных различий не обнаружено (t <2 ,6). H. pylori обнаруживается в желудочном соке практически с той же эффективностью, что и в биоптате.
Полученные результаты позволили рекомендовать использование желудочного сока для проведения ПЦР обследования пациентов с различными типами гастродуоденальной патологии. Желудочный сок - менее «инвазивный» субстрат, при его исследовании не наблюдается неспецифического синтеза ДНК, что объясняется низкой концентрацией эукариотической ДНК в этом субстрате.
Наиболее доступным материалом для исследования на Н. pylori являются пробы фекалий. Для их отбора не требуется сложного оборудования и инвазивных манипуляций, что привлекательно для практических исследований. Нами проанализировано 40 проб копроматериала от больных с гастродуоденальной патологией. У этой группы пациентов параллельно анализировались пробы фекалий и биоптатов. H.pylori был выявлен в 33 (82,5±6,0%) пробах биоптатов слизистой и только в 12 (30,0±7,2%) образцах фекалий. Варианты результатов представлены в таблице 14.
Таблица 14.
Выявление H.pylori в образцах биоптатов и копроматериала методом ПЦР при параллельном исследовании
Количество обследованных |
Варианты результатов ПЦР (в абс. значениях и %) | |||
Биоптат Нр+ Фекалии Нр+ |
Биоптат Нр+ Фекалии Нр- |
Биоптат Нр- Фекалии Нр+ |
Биоптат Нр- Фекалии Нр- | |
40 |
11 |
22 |
1 |
6 |
100% |
27,5±7,0 |
55±7,8 |
2,5±2,4 |
15±5,6 |
«Нр+»
- H.pylori
выявлен «Нр-»
- Н. pylori
не
выявлен
Таким образом, эффективность выявления Н.ру1оп в копроматериале составляет 35,3±8,3% от числа Н.ру1оп-положительных проб. Статистическа
яобработка полученных результатов показала, что обнаружение H.pylori в биоптатах достоверно выше, чем в копроматериале (t = 5,5).
Столь малая эффективность выявления возбудителя в фекалиях объясняется низкой концентрацией H.pylori в этом субстрате и ингибированием ПЦР компонентами непереваренной пищи, в первую очередь, липополисахаридами [214].
К сожалению, в настоящее время простых и доступных методов концентрации H.pylori в фекалиях и удаления полисахаридов копроматериала при подготовке проб не имеется [214, 291]. В связи с этим, фекалии не могут быть рекомендованы в качестве информативного субстрата при ПЦР обследовании пациентов на H.pylori.