Дневник 3

МИНИСТЕРСТВО СЕЛЬСКОГО ХОЗЯЙСТВА И ПРОДОВОЛЬСТВИЯ РЕСПУБЛИКИ БЕЛАРУСЬ

УО «Витебская ордена «Знак Почёта» государственная академия ветеринарной медицины»

Д Н Е В Н И К

По клинической практике студента 3 курса 19- группы факультета ветеринарной медицины

Грязнова Д.С.

Место прохождения практики: Райветстанция г.Молодечно

Витебск-2006г.

Дата	Место работы	Содержание и объём выполненной работы	Роспись руководителя
01.08.06 02.08.06 03.08.06 03.08.06 04.08.06 05.08.06 06.08.06 07.08.06 08.08.06 09.08.06 10.08.06 11.08.06 12.08.06 13.08.06 14.08.06 15.08.06 16.08.06 17.08.06 18.08.06 26.08.06 27.08.06 28.08.06 30.08.06 31.08.06 31.08.06	Районная ветеринарная станция г.Молодечно Районная ветеринарная станция г. Молодечно Районная ветеринарная станция г. Молодечно Районная ветеринарная станция г. Молодечно Районная ветеринарная станция г. Молодечно Районная ветеринарная станция г. Молодечно Районная ветеринарная лаборатория г.Молодечно Районная ветеринарная лаборатория г. Молодечно Районная ветеринарная станция г. Молодечно Районная ветеринарная станция г. Молодечно Районная ветеринарная станция г.Молодечно Районная ветеринарная станция г. Молодечно Районная ветеринарная станция г. молодечно Районная ветеринарная станция г. Молодечно Районная ветеринарная станция г.Молодечно Районная ветеринарная станция г. Молодечно Районная ветеринарная станция г. -------- Районная ветеринарная станция г. ---------- Районная ветеринарная станция г. ---------- Районная ветеринарная станция г. --------- Районная ветеринарная станция г. ----------	Прибыл в районную ветеринарную лабораторию города Молодечно. Лаборатория представляет собой одноэтажное здание и включает в себя следующие отделы: -вирусологический -серологический -бактериологический -радиологический -паразитологический. Ознакомился с правилами инструктажа по техники безопасности, который включает в себя следующие требования: 1. Нахождение в лаборатории только в спецодежде (белый халат и шапочка). 2. Не покидать приделы лаборатории в спецодежде и не выносить оборудование за пределы кабинета. 3. Принимать пищу только в специально отведенном помещении. 4. Не отвлекаться и не заниматься посторонними делами во время работы в лаборатории. 5. Соблюдать правила личной гигиены и др. Далее на базе лаборатории приобретал знания и навыки по выше перечисленным дисциплинам. Ознакомился с правилами и режимом работы вирусологического отдела райветстанции. Он располагается в изолированном от других отделов чистом помещении. Потолок и стены покрыты масляной краской, стены на 1, 5 м от плинтуса выложены кафельной плиткой, пол выслан линолеумом. Ежедневно данные помещения подвергаются кварцеванию и влажной уборке. Вирусологический отдел включает следующие комнаты: Приёмная – предназначена для регистрации поступающего материала. Помещение для первичной обработки поступившего материала. Комната для вирусологических исследований, состоящая из бокса и предбоксника. Автоклавная – предназначена для стерилизации посуды, питательных сред, спецодежды, приборов, обеззараживание патматериала. Моечная – предназначена для мытья посуды, аппаратуры, приборов. Вирусологическая кухня – предназначена для подготовки питательных сред необходимых для исследования. Виварий – помещения для содержания и выращивания лабораторных животных и животных, находящихся под наблюдением. Собственно комната для вирусологических исследований включает в себя следующее оборудование: спецстолы, термостат, центрифуга, холодильники, аналитические весы, водяную баню, электроплитки, электромагнитную мешалку и др. В лаборатории используют следующие методы: 1. вирусологический 2. серологический 3. биологический 4. микроскопический Поставил реакцию агглютинации на бруцеллез. Агглютинация – склеивание микробных тел с образованием хлопьев, видимых не вооруженным глазом, под влиянием антител – агглютинов, содержащихся в сыворотки крови больного животного или в иммунной сыворотке. Этим методом устанавливается не только наличие агглютининов, но и их количество, то есть титр сыворотки – наибольшее её разведение в котором ещё определяют агглютинирующие свойства. Техника постановки: Реакция ставится в пробирках количеством 8 штук. В каждую пробирку вносят одинаковое количество физраствора (1мл). Затем в первую пробирку вносят 1 мл антигена, тщательно перемешивают и отсюда переносят материал в количестве 1 мл во вторую пробирку и, материал из последней пробирки заливают в дезраствор. В каждую пробирку вносят одинаковое количество исследуемого сыворотки. Затем пробирки встряхивают и ставят в термостат при температуре 37 – 38 градусов Цельсия на 4 –12 часов. Реакцию учитываю визуально, по степени выраженности осадка в «плюсах»: ++++ -- резко положительная реакция, осадок в виде рыхлого перевёрнутого зонтика, края которого загибаются на стенки пробирки. +++ -- положительная реакция, зонтик хорошо выражен, жидкость слегка аполистирующая. ++ -- отрицательная реакция, жидкость мутная, зонтик не выражен, на дне пробирки осадок, который при встряхивании разбивается с образованием взвеси без хлопьев и комочков. Результат реакции: отрицательная. Участвовал в приготовлении препаратов-мазков и препаратов-отпечатков из патологического материала (кусочки лёгкого), которые были присланы с ЗАО «АгроЩара» с подозрением на бронхопневмонию. Для приготовления препарата отпечатка, делаем надрез патологического материала скальпелем, затем берём пинцетом кусочек лёгкого и надрезанной стороной несколько раз прикладываем к предметному стеклу. Использованный скальпель и пинцет прожигаем в пламени спиртовки. Полученный отпечаток высушиваем на воздухе и фиксируем его, проводя 2 –3 раза над пламенем спи спиртовки. С обратной стороны обводим место нахождения препарата восковым карандашом. Далее окрашиваем препарат и проводим микроскопию. Обнаруживаю культуру кокков. Постановка диагноза: бронхопневмония Проводил подготовку мазка из микробной культуры сальмонеллы с жидкой питательной средой. Для этого прокаливал над спиртовкой бактериальную петлю держа её в правой руке, а пробирку в левой. Открыл пробирку правой рукой, причём края отверстия пробирки прожёг над пламенем спиртовки. Ввёл петлю в пробирку и набрал материал, затем пробирку вновь провожу над пламенем и закрываю пробкой в виде тампона. Взятый материал нанёс на предметное стекло. Петлю прожёг в пламени, мазок высушил и окрасил. При микрокопировании наблюдал сальмонелл в виде больших изогнутых палочек. Осваивал технику постановки реакции иммунодифузии (РИД) для обнаружения антител к вирусу лейкоза КРС в исследуемых сыворотках крови. Сущность этой реакции заключается в том, что специфические антигены и антитела диффундируют в в агаров деле из места локализации на встречу друг другу и, взаимодействуя, образуют полосы преципитации, которые хорошо заметны на фоне прозрачного геля. Реакция ставится в чашках Петри или на предметном стекле. Их заливают 1 –2 % нейтральным агаром высокой степени очистки. Чаще используют агар «Дироко», Феррак». В агаре выталкивают пробойником луночки и вносят в них компоненты реакции. Используют специальный набор для серологической диагностики лейкоза КРС. Он включает в себя: -антиген -разбавитель антигена -специфическая преципитирующая сыворотка -агар -разбавитель агара. Техника постановки: Расплавленный агаровый гель наливают в чашку Петри. Затем в застывшем геле выталкивают отверстия. При этом к агаровому гелю предъявляют следующие требования: он должен быть прозрачным, достаточно плотным, стерильным, рН в пределах 6,4 –8,5. При исследовании антигенов в центральную лунку левого шестиугольника вносил 2 –3 капли преципитирующей сыворотки или специфического гамма-глобулина. В 4периферические – исследуемые антигены, в 5 – специфический антиген (контроль №1), в 6 – антигены из нормальной ткани (контроль №2). В центральную лунку правого шестиугольника внесли нормальную сыворотку, а в остальные исследуемые антигены, антигены из нормальной ткани, стандартный вирусный антиген. Компоненты вносим в необходимых количествах и так, чтобы они не растекались на поверхности агара. После заполнения лунок чашку Петри закрывали крышкой и ставили в термостат при температуре 37 – 38 градусах Цельсия на 24 –72 часа. Реакцию оценивают визуально, учёт проводили через 8 –10 часов основной через 24 часа, окончательный через 48 – 72 часа. Наблюдали полосы преципитации, что свидетельствует о гомологичности антигенов и антител, следовательно, диагноз по лейкозу положительный. Ознакомился с условиями содержания лабораторных животных и осуществил заражения 5 белых мышей. Здоровые лабораторные животные содержатся в виварии в отдельном чистом помещении. Для биопробы используют белых мышей, крыс, золотистых хомячков, морских свинок, кроликов. В бактериологическом отделе они используются в качестве: 1. Выделения культуру микроорганизмов и патологического материала. 2. Индефикация выделенной культуры. 3. Определения патогенности и вирулентности исследуемой культуры. 4. Контроль иммуногенности, безвредности, токсичности, стерильности биопрепаратов. 5. Определения вида токсина в рН на лабораторных животных. В лаборатории используют различные методы заражения в зависимости от цели исследования: -накожное -внутрикожное -внутримышечное -внутривенное -пероральное -интраназальное интрацеребральное Мною было отработано заражение белых мышей путём введения им подкожно 0,5 мл патологоанатомического материала, также путём внутрибрюшного введения в количестве 0,1 мл в область живота, немного отступив от белой линии живота, внутривенно – в вену хвоста 0,2 мл. Заражённых животных помещали в виварий в отдельное помещение. На клетку вешали бирку с датой заражения, видом патологического материала и его количества. Также ознакомился с техникой приготовления питательных сред. К ним предъявляют следующие требования: Должны содержать вещества необходимые для жизнедеятельности микроорганизмов. Иметь определенную концентрацию водородных ионов (рН) Обладать определённой буферностью Быть изотоническим для бактериальной клетки Быть стерильным и достаточно влажным. В лаборатории готовят жидкие и плотные питательные среды, обычные, специальные, диффнренциально-диагностические, селективные, среды обогащения, консервирующие. Для приготовления МПБ к 1л масляной воды добавляли 1 % пептона, 1% NaCl, устанавливая требуемый рН. Раствор прощелачиваем 10% раствором КОН, кипятим до растворения ингредиентов, проверяем рН (должен быть в пределах 7,2 –7,4) с помощью рН-метра ил лакмусовой бумаги. МПА – плотная питательная среда. Готовим её с помощью МПБ, в который добавляем 2,5 –3 %тщательно промытого мелко нарезного агар-агара. Затем расплавляем на огне. В колбе устанавливаем рН в горячем виде. Фильтруем через ватно-марлевый фильтр на пару, разливаем по пробиркам, автоклавируем 30 минут. Затем пробирки помещаем в наклоном положении и оставляем в покои до засыхания. Выходной Выходной Проводил вскрытие лабораторных животных, заражённых 07.08.06 с целью выявления причин гибели, выделения введенного возбудителя и изучения патологоанатомических изменений. Мыши были заражены работниками лаборатории интерназально в количестве 0,05 мл суспензии из исследуемого материала (лёгкое). Вскрытие проводили сразу после наступления гибели животных. Для вскрытия применяли следующие инструменты: скальпели, прямые и изогнутые ножницы, пинцеты, пастеровские пипетки. Основной принцип при вскрытии – к трупу животного можно прикасаться только инструментами или защищёнными руками. Для дезинфекции перед вскрытием труп белой мышки погружаем на 10 минут в 2,5 % раствор фенола. Труп животного брюшком кверху располагаем на специальном столике для вскрытия. Делаем разрез кожи по белой линии живота, кожу препарируем и оттягиваем в сторону. Кожные складки и подмышечные ямки обнажаем для исследования лимфатических узлов. Затем труп животного повторно дезинфицируем, меняем инструменты и вскрываем брюшную и грудную полости. Удаляем мышцы живота и брюшину, обнажая при этом сердце, почки, печень, селезёнку и вновь меняем инструменты. У трупа берём патологический материал – кусочки паренхиматозных органов. Материал помещаем в стерильную посуду и замораживаем. В журнал-протоколов записываем, какого вида и пола вскрытое животное, указываем его номер, время начала заболевания (введения культуры микроорганизма) и смерти, клинические признаки, дату, время вскрытия и результаты внешнего осмотра. Посетил радиологический отдел лаборатории. Он находится на первом этаже лаборатории и разделён на 3 отдельных помещения. Стены на высоту 2 м покрыты кафельной плиткой, выше которой стены и потолок покрашены масленой краской, углы стен закруглены для более тщательной уборки и дезинфекции. В отделе имеется следующее оборудование: столы, шкаф для хранения посуды, аналитические весы, приборы РКЗ-03 стационарный гамма-радиометр для исследования продуктов и кормов, воды, СРП 68-01, ДРГ-107,ДБГ-06Т. Под руководством специалиста радиолога провел измерения гамма-фона в помещении отдела. Он составил 15 мкр/ч, при этом использовал прибор ДБГ-06Т. Затем провёл аналогичные исследовании на территории лаборатории с помощью прибора СРП-68-01. Уровень гамма-фона составил 10 мкр/ч. При помощи прибора РКЗ-03 провёл экспертизу мяса и молока, доставленных в лабораторию с центрального рынка г. Молодечно. В результате получил следующие показатели: Молоко (0,2 литра)-290 Бк/л Говядина ( 150 г )-120 Бк/кг Результаты исследований записал в журнал радиологических исследований. Также провёл исследование молока и мяса на наличие Cs-137, результаты сравнил с РДУ –показатели находятся в пределах нормы. Участвовал в приготовлении красящих растворов применяемых в лаборатории: Спиртоводный раствор Блейфера. Для этого смешал 10 мл насыщенного спиртового раствора краски со 100 мл дистиллированной воды и 2 частями карболовой кислоты. Полученную смесь тщательно взболтал и профильтровал через бумажный фильтр. Синька Малофеева. Для этого насыщенный раствор сини (30 мл) профильтровал через бумажный фильтр, прибавил к нему КОН и разбавил дистиллированной водой. КОН брал 1 % -- 1 мл, дистилированой воды 100 мл. Водный раствор Малахитовой зелени. Для этого 5 частей малахитовой зелени (в порошке) засыпал во флакон и залил горячей дистилированой водой (100 мл). Поставил его в термостат. На дне флакона остается не большой осадок, свидетельствующий о насыщенности раствора. Раствор Люголя. Для этого Йодистый калий (2 части) растворил в 5 –10 мл дистилированой воды, затем прибавил кристаллический йод (1 часть), образовавшуюся жидкость сильно взболтал до полного растворения йода и прибавил оставшуюся воду (приблизительно 290 мл). В лаборатории используют простые и сложные методы окраски: Простой метод – используется 1 краситель, сложные методы – используется несколько красителей. Простые методы позволяют определить количество микроорганизмов, их форму и расположение. Сложные методы – позволяют более детально изучить структуру и различные элементы микробной клетки. Простой метод: на препарат-отпечаток наносят генцианвиолет на 1 –2 минуты, смывают водой, высушивают фильтровальной бумагой, микроскопируем. Под малым увеличением наблюдаем культуру кокков. Для подтверждения диагноза на микоплазму окрашиваем препарат по Рамоновскому-Гимзе. Для этого к 10 мл дистилированой воды добавляем 10 капель краски Рамановского-Гимзе. Препарат помещаем в стакан с краской. Спустя час краску смываем, промываем под проточной водой, высушиваем на воздухе и микроскопируем. Наблюдаем кокоподобные микоплазмы, они окрасились в фиолетовый цвет, следовательно, отсюда делаем вывод о том, что диагноз положительный. Повторил и закрепил на практике схему бактериологического анализа: Делаем мазки-отпечатки, окрашиваем микроскопируем; производим посевы на питательные среды Производим заражение лабораторных животных Производим пересевы на питательные среды с целью выделения чистой культуры. Определяем культуральные свойства, производим выделение чистой культуры, определяем чувствительность чистой культуры к лекарственным препаратам, осуществляем наблюдение за зараженными лабораторными животными Определяем характер роста микроорганизмов на дифференциально-диагностических средах Производим вскрытие заражённых лабораторных животных. Делаем мазки-отпечатки из паренхиматозных органов и окрашиваем их при помощи сложных методов окраски. Производим учёт результатов серологических реакций См. приложение №1 Оформление отчётной документации Выходной Выходной Совершил выезд в КУСП «Утёс», где произвёл регистрацию больного животного в амбулаторном журнале. Дата поступления – 14.08.06 Владелец – КУСП «Утёс» Вид животного – молодняк КРС Порода – чёрно-пёстрая, №1103 Возраст –10 дней Пол животного – 7 дней Анамнез жизни(Anamnis vitae) – тёлочка содержится в индивидуальном профилактории – домик на открытом воздухе. Поение молоком 3 раза в день по 3 литра, в ручную из ведра. Уборка домика осуществляется ежедневно вручную. Анамнез болезни(Anamnis morbi) – животное заболело 20.08.05 . В начале отмечалось общее угнетение, диарея, снижения аппетита, акты дефекации учащённые с выделениями разжиженного кала светло-жёлтого цвета Лечебную помощь не оказывал, уменьшил суточную дачу молока. Провёл также общее исследование животного: Габитус: тёлочка имеет естественно стоячее положение, среднее телосложение, упитанность удовлетворительная, темперамент живой, конституция плотная Исследование слизистых оболочек: исследовал коньюктиву, склеру, слизистую носа и ротовой полости. Слизистая бледно-розовая, умеренно влажная, без нарушений целостности, наложений нет. Исследование кожи и волосяного покрова: кожа упругая, эластичная, бледно-розовая на не пигментированных участках, запах специфический для данного вида животного. Шерстный покров густой, без блеска, немного взъерошен, хорошо удерживается на коже. Кожа умеренно тёплая. Тазовая часть тела загрязнена экскрементами. Исследование лимфатических узлов: исследовал подчелюстные, предлопаточные, коленной складки и надвыменые. Они не увеличены , подвижны, плотной консистенции, на поверхности гладкие, температура окружающих тканей не увеличена, безболезненны. Исследование сердечно сосудистой системы: сердечный толчок сосредоточен в 4-м межреберьи слева. При пальпации в области сердца ощущается лёгкие колебания грудной клетки. Сердечный толчок умеренной силы, ритмичный. Область сердца безболезненна. Артериальный пульс исследовал на артерии Сафена – 86 ударов/мин. Он ритмичный слегка учащенный, хорошего наполнения, средней величины. Исследование дыхательной системы: истечения из носа отсутствуют, выдыхаемый воздух без посторонних запахов, частота дыхания составляет 26 дыхательных движений в минуту. Дыхание умеренное, ритмичное. Носовое зеркало холодное, умерено влажное. При исследовании придаточных полостей осмотром и пальпацией никаких изменений не установил. Изменений внешних контуров лобных пазух не обнаружено. При исследовании трахеи и гортани путём осмотра и пальпации никаких патологических изменений не обнаружено. Грудная клетка овально-округлая, симметричная, при пальпации безболезненна, ребра и межреберные мышцы не повреждены. Исследование пищеварительной системы: аппетит снижен, нарушения глотания не обнаружено, слизистая ротовой полости бледно-розового цвета, влажная, блестящая, без нарушений целостности. При исследовании пищевода и глотки нарушений не обнаружено. Живот безболезненный не увеличен. Печень не увеличена. Дефекации часты, выделения жидкие. Исследование мочевой системы: животное при мочеиспускании принимает естественную позу, моча светло-жёлтая, прозрачная, жидкая, запах специфический, наружные половые органы без нарушений. Исследование нервной системы: животное угнетено, вялое, при исследовании черепа и позвоночного столба нарушений не обнаружено. Исследования органов зрения: зрения сохранено, слуховой аппарат в норме, болевая, тактильная чувствительность и мышечный тонус сохранены. Заключение: на основаниях данных анамнеза и клинического исследования поставил диагноз – диспепсия (Dispepsia). Тёлочке было оказано лечение. Тёлочке Recipe: Dispancoli plus 400,0 Da.Signa.Внутримышечное. По 5 мл 2 раза в день. Лечения продолжено Осуществили выезд в СПК «Хлебороб» где отработал технику введения лекарственных веществ: -подкожно -внутримышечно -внутривенно Подкожно: при введении прокалываю лишь толщину кожи вертикально, а затем наклоняю её и создаю острый угол, ввожу лекарственное средство, при этом образовывается валик. Место укола обрабатывают спиртом. Внутримышечно: это самый распространенный метод инъекционирования. При этом иглу после предварительной обработки, ввожу в мышечный слой на половину длины иглы. Внутривенно: этот способ требует соблюдать строжайших правил асептики. В вену не должен поступать воздух. Иглу ввожу в вену лёгким хлопком. При попадании иглы с неё начинает идти кровь. Затем присоединяю шприц к игле и медленно ввожу лекарственное средство, так как большая концентрация вещества может нарушать сердечную деятельность. После введения место укола осторожно придерживается ваткой смоченной спиртом, а игла выводится одним резким движением. При выезде на СПК «Лотвичи» у коровы по кличке «Травушка» в области бедра обнаружил гематому (при проколе иглой выделилась кровь) следовательно, причина возникновения – удар. Обработал ихтиоловой мазью. Recipe: Unguenti Ichtioli 20%-20,0 Da.Signa.Наружно. Наносить на поверхность гематомы. Затем у коровы по кличке «Радуга» в области паха с двух сторон обнаружил мокнущие раны, полученные в результате трения вымени о конечности. Провёл лечение: произвёл обработку с начала ватно-марлевым тампоном со спиртом (70%) для снятия гноя на поверхности , затем обработал аэразолью и нанёс через 15 минут стрептоцидную присыпку. Корове: Recipe: Spiritus aethilici 70%-5 ml Da.Signa.Смачивать ватно-марлевый тампон. Recipe: Aerasoli Cubatoli-180,0 ml Da.Signa.Наружно.Аэразоль ная обработка раны. Распылить на поверхность кожи тонким слоем. Recipe: Puolrae Streptocidi 20,0 Da.Signa.Наружно.Присыпа ть по 10, 0 г на каждую рану. На базе агрофирмы «Заря» с ветеринарным врачом посетил ветеринарную аптеку. Аптека – это учреждение, основные функции которого заключаются в приготовлении, хранении и отпуске лекарственных средств. Ветеринарная аптека содержит следующие помещения: -рецептурная -ассистентская -моечная -подвальное помещение и -материальная т.д. Рецептурная служит для приёма посетителей. Комната оборудована столом, стульями, витринами, шкафами. Ассистентская служит для приготовления лекарственных форм. Здесь же имеется шкаф и сейф для хранения документов по ветеринарному делу. Материальная комната предназначена для хранения лекарственных трав и форм. Здесь же проводится приготовления различных лекарственных средств их взвешивание и упаковка. Моечная предназначена для мытья и обеззараживания использованной посуды, стерилизации лекарственных веществ и инструмента после работы. Она оборудована автоклавами, мойками, сушильными шкафами. В аптеке лекарственные вещества хранятся в соответствии с их групповой принадлежности. К группе А хранятся в металлических сейфах. Сильнодействующие вещества относящийся к группе Б хранятся в специальных шкафах под замком. Остальные же вещества хранятся в соответствии с их химическими свойствами. Ветеринарная аптека снабжена хорошей справочной литературой, а это учебники по заразным и не заразным болезней с/х животных, ветеринарное законодательство, справочные пособия по фармакологи, токсикологии, а также фармакопею, справочники по применению лекарственных средств, правила инструктажа по техники безопасности. На базе того же хозяйства принял участие в сборе и сушке лекарственных трав для ветеринарной аптеки. Многие из них применяются как кровоостанавливающее, улучшающие аппетит, помогающие при заболевании желудка, печени, почек. Лекарственное сырьё заготавливалось в хорошую, сухую погоду, когда растения уже хорошо обсохли от росы и дождя. Заготовленные лекарственные растения укладываются рыхло, чтобы они не согревались, при чём в одну тару вкладывают только один вид растения. Тара для сбора растения должна быть совершено чистой, сухой и без запаха. Сушка растения приостанавливает работу ферментов и сохраняет при этом действующие лекарственные вещества, поэтому очень важно правильно её организовать. Многие виды растений сушат после сбора при температуре от 40 – 50 градусов Цельсия. Эфирно-маслянные растения необходимо сушить медленно, тонким слоем при температуре 30 – 35 градусов. Части растения, не содержащие эфирные масла или красящие вещества можно сушить под открытым небом. Зелёные части растения, у которых солнечные лучи разрушают хлорофилл, сушат только в тени. Особого внимания требует сырье, содержащее гликозиды, которые легко подвергаются, воздействию ферментов и быстро разрушаются. На территории прохождения сбора лекарственного сырья мною были собраны такие лекарственные растения, как боряк разнолистный, василёк синий, лопух большой, мать-и-мачеха обыкновенная, одуванчик лекарственный, полынь горькая и обыкновенная, тысячелистник. Выходной Выходной На базе СПК «Сентябрьский» написал акт зоогигейнического обследования заготовки, хранения и скармливания кормов, соблюдение режимов и правил кормления. Сено заготавливают с естественных сенокосных площадей и хранят под укрытием и вентилированием. Силос и сенаж заготавливают в специально отведенных местах, ямах из различных культур: клевера, тимофеевки, кукурузы, ботвы. В летний период животные получают зеленую массу и концентраты (комбикорм). Далее занимался оформлением акта по зоогигиене летне-пастбищного периода содержания животных на базе СПК Сентябрьский Оценка кормов и кормления, животных в летний период. Технология заготовки кормов: Сено – заготавливают несколькими способами: -полевой сушкой -активным вентилированием -измельчением с использованием концентратов (используется редко). Методом полевой естесственой сушки готовят прессcованное и рассыпное сено. Травостой скашивают не позднее следующего дня, скошенную траву ворочают. Трава в прокосах содержит до 40% влажности для злакового травостоя и 50% для бобовых. Затем провяленную массу сгребают в валики и досушивают при влажности 25 – 30%, прядут копневик. В копнах сено окончательно досушивается и укладывается на хранение с влажностью 17%. Прессование сена проводят, когда влажность массы будет не более 20%, плотность прокосов может достигать 80 –200 кг/м2. Досушивание трав методом активного вентилирования – прогрессивный способ заготовки кормов. Это значительно сокращает время сушки и уменьшает потери питательных веществ и витаминов. Методом активного вентилирования готовят рассыпное, питательное, измельченное и прессованное сено. В первых двух случаях скошенную массу провяливают в коме в прокосах, а затем в валиках влажность должна быть 35 – 40%. Предназначение для досушивание массы складывается в склады, штабеля, сенохранилища на специально подготовленные воздухораспределители, где нагнетается подогретый воздух или атмосферный ( в зависимости от погоды). В хранилище сено загружают послойно, равномерно. Прессованное сено сушат в сараях под навесом или в складах. Для формирования штабеля при укладки тюков устанавливают подстил (штабель 5*20*16 м). Между несколькими рядами делают вентиляционные ходы 25 – 30 см. Для подачи воздуха в слой досушенных тюков используют центробежные вентиляторы. Продолжал на базе того же хозяйства описания технологических процессов заготовки кормов. Технологический процесс заготовки измельченного сена включает следующие операции: скашивание проваливание до влажности 45 – 30 % Сгребание в валики, подбор валиков до влажности 35 – 40% с одновременным её измельчением на отрезки длиной 8 – 15 см и погрузкой в транспорт, доставка и загрузка в сенохранилище. Для предотвращения просыпания мелких частиц через воздухопроводящие щели, избежать забивание воздухопровода перед загрузкой сена в хранилище на вентиляционные установки кладут тонкий слой не измельчённого сена. При климатических условиях потери питательных веществ при заготовки могут достигать 35 – 40%, поэтому с целью повышения качества корма и снижения потерь проводят заготовку сена повышенной влажности, и в прессованном виде с применением химических консервантов. В качестве их используют пропионовую и муравьиную кислоты При укладки скирд и стогов исходят из того что сено должно быть влажностью 17 –18 %, места для укладки выбирают возвышенные, ровные с удобным подъёмом, территорию огораживают изгородью. Примерная окружность стога 10 – 25 м, высота 5 – 6 м, масса до 5 тонн. В противопожарных целях склады и стога размещают на расстоянии 30 м друг от друга. Силосование сложный микробиологический и биохимический процесс консервирования сочной растительной массы. Кислая реакция среды – основное условие сохранности корма. Она создаётся за счёт жизнедеятельности молочно-кислых бактерий (рН 4,0 – 4,2), чем выше буферность, тем хуже силосованость. Для лучшего силосования нужно освободить из исходной травы сахар, снизить рН, замедлить интенсивность брожения, оказывая бактериостатическое или бактерицидное действие Процессу силосования способствуют такие технологические приёмы как: -подвяливание -измельчение -внесение химических консервантов. На базе того же хозяйства занимался оформлением зоогигиенического паспорта животноводческого помещения и сопроводительной ведомости. Оформление отчётной документации, подведение итогов производственной практики, исправления недостатков в работе и оформлении отчётности.