контр. раб. микробиология

Аллергическая диагностика. Основывается явлении инфекционной аллергии к аллергену бруцеллин ВИЭВ. Бруцеллин ВИЭВ, изготовляется из неаглютиногенного и авирулентного штамма B. аbortusB-1. Бруцеллин вводят под кожу нижнего века. У овец, коз и крупно рогатого скота применяют пальцебральную пробу. Овцы и козы по 0,5 мл, КРС по 1 мл, учёт через 48 часов. Свиньям препарат вводят внутрикожно с наружной стороны ушной раковины. У животных, больных бруцеллёзом, на месте введения бруцеллина развивается воспалительная реакция.

Генетическая диагностика. Применяют полимеразную цепную реакцию (ПЦР).

Биопроба. Осуществляют на морских свинках (параллельно с посевами материала на питательные среды), сыворотка которых в разведении 1:5 отрицательно реагирует в РА с бруцеллёзным антигеном. На 15, 25 и 40 – е сутки после заражения берут кровь, из которой получают сыворотку и исследуют её в пробирочной РА в титрах от 1:10 до 1:80. При получении положительных результатов морских свинок убивают (через 60 дней) и из органов (лимфоузлов, селезёнки, печени и костного мозга) делают посевы на питательные среды с целью выделения культуры бруцелл. При выделении культуры возбудителя или получении положительного результата, когда сыворотка реагирует в титре 1:10 и выше лабораторный диагноз бруцеллёза считают установленным. Для выделения культуры морских свинок убивают и делают посевы из лимфоузлов, селезёнки, печени и костного мозга. Все выделенные культуры бруцелл после их идентификации уничтожают автоклавированием при 1,5 атм. В течение 1 часа.

Специфическая профилактика.  При ликвидации бруцеллёза крупного рогатого скота большую роль играет применение средств специфической профилактики. Без использования противобруцеллезных вакцин можно оздоровить неблагополучные хозяйства по бруцеллёзу с небольшим поголовьем животных путём систематических исследований, удаление всех положительно реагирующих животных и выполнения ветеринарно – санитарных правил, но это сопряжено с большими денежными затратами и увеличением сроков оздоровления.

Эффективность специфической профилактики бруцеллёза и необходимость применения противобруцеллёзных вакцин наглядно демонстрирует ретроспективный анализ истории борьбы с бруцеллёзом крупного рогатого скота в нашей стране в зависимости от применения средств специфической профилактики болезни. Система противобруцеллёзных мероприятий с использованием вакцин во многих регионах страны существенно улучшила эпизоотическую ситуацию по бруцеллёзу крупного рогатого скота. Таким образом, внедрение в практику системы мер борьбы с бруцеллёзом крупного рогатого скота с использованием противобруцеллёзных вакцин позволило на данном этапе предотвратить дальнейшее распространение этой болезни, резко снизить количество не благополучных пунктов, полностью оздоровить ряд регионов страны и сократить количество случаев заражения бруцеллёзом людей. Вместе с тем опыт применения живых противобруцеллёзных вакцин позволил выявить не только их достоинства, но и существенный недостаток, который заключается в том, что в сыворотке крови привитых животных долгое время сохраняются агглютинины и комплементсвязывающие антитела, которые выявляются стандартными антигенами, что не позволяет отличать больных бруцеллёзом животных от вакцинированных и дать объективную оценку эпизоотической обстановке в стране. В связи с этим большой научный и практический интерес получили живые и инактивированные вакцины, изготавливаемые из диссоциированных штаммов бруцелл, так как при введении их в организм животных не регистрируют образование антител к стандартным S– антигенам или отмечают в низких количествах и непродолжительное время. Такие вакцины испытали в нашей стране и за рубежом.

В настоящее время наибольшую популярность в мире приобрели инактивированные вакцины из штаммов B. Аbortus45/20 иB.Melitensis53Н38, заключённые в водно-масленные адъюванты. Установлено, что инактивированные адъювант-вакцины из штаммов B. Аbortus45/20 иB.Melitensis53Н38, как и живая вакцина из штаммаB.abortus19, создают у иммунизированных животных длительный и стойкий иммунитет (71,4 – 87,5 % в течение 638 дней), а ревакцинация их через 12 месяцев после иммунизации усиливает иммунное состояние организма на 12,5 – 29,6 %. Обе вакцины для крупного рогатого скота обладают высокими реактогенными свойствами, выражающимися в повышении температуры тела и сильной местной реакции в виде припухлости на месте подкожного введения вакцины, вызывают в организме привитых животных сильную аллергическую перестройку, однако вакцина из штамма 45/20 обладает более выраженными сенсибилизирующими свойствами, чем из штамма 53Н38. Адъювант-вакцина из штамма 45/20 является неагглютиногенной. Однако отдельные её серии могут вызвать у иммунизированных тёлок в единичных случаях образование агглютининов и комплементсвязывающих антител в низких титрах и непродолжительное время (с S-бруцеллёзным антигеном).

В производственных условиях при оздоровлении неблагополучных хозяйств по бруцеллёзу крупного рогатого скота установлена высокая эпизоотическая эффективность адъювант-вакцина из штамма 45/20. Адъювант-вакцина из штамма 53Н38, как и сухая вакцина из штамма B.abortus19, обладает выраженными антигенными свойствами. У иммунизированных тёлок агглютинины и комплементсвязывающие антитела могут выявлять более года. В 1934г. Американские учёные получили вакцину из штамма B.abortus19. Это высоко эффективная вакцина, она безвредна, резко уменьшает число абортов и положительно реагирующих животных. Правда. Обеспеченный ею иммунитет, как и всех других противобруцеллёзных вакцин, не является абсолютным. Штамм 19 стабилен по морфологическим, культуральным, вирулентным, антигенным свойствам. Штамм не снижает удоев, не мигрирует от привитых на непривитых животных. Вакцина предотвращает животных от естественного заражения, хотя в стадах с острым течением бруцеллёза иммунитет может быть недостаточен. Вакцину из штамма 19 успешно используют в нашей стране для профилактики и ликвидации бруцеллёза крупного рогатого скота. Широкое применение показало её основной недостаток – в сыворотке крови привитых животных длительное время сохраняются агглютинины и комплементсвязывающие антитела, что не позволяет отличать больных бруцеллёзом животных от вакцинированных и дать объективную оценку эпизоотической обстановки в стране. Отмечено, что пониженные дозы вакцины из штамма 19 у коров и тёлок создают иммунитет такой же прочности, как и стандартные дозы, не мешают нормальному течению беременности и вызывают кратковременную серопозитивность у привитых животных. После вакцинного штамма 19, находящегося в S-форме, наиболее широко изучили B.abortus104М, селекционированный в 1950г. из культуры, выделенной из абортированного плода коровы.

Штамм находится 104М находится в стабильной S-форме, является слабовирулентным, обладает выраженными антигенными и более высокими иммуногенными свойствами, чем штамм 19. По всем свойствам штамм стабилен, отвечает требованиям, предъявляемым к вакцинным штаммам. Его легко контролировать и дифференцировать от других штаммов, так как он имеет только ему присущие маркеры, высокоимуногенен, неабортогенен, не мигрирует от привитых животных к непривитым, менее антигенен, чем штамм 19.

Особый интерес представляет слабоаглютиногенная вакцина из штамма B.abortus82. С 1974 года и по настоящее время она широко используется в нашей стране для иммунизации крупного рогатого скота против бруцеллёза. Вакцина у стельных коров и нетелей, особенно 3-7 месячной беременности, может вызвать аборты (10-20 %) примерно с 30-го дня и преимущественно через 3-4 месяца после вакцинации, которые затем прекращаются. Абортированные животные слабо или вообще не реагируют в РА и РСК, а если и реагируют в диагностических титрах , то они быстро утрачиваются.

При использовании вакцины из штамма 82 хотя и формируется иммунитет менее выраженной напряжённости, чем при вакцине из штамма 19, поствакцинальные реакции угасают к 7-8 месяцам. Таким образом, в этот период, то есть от 7 до 12-14 мес. с момента прививки вакцины из штамма 82, создаются наиболее благоприятные условия для оздоровления стада, поскольку с помощью РА, РСК своевременно выявляются животные – источники инфекции на фоне довольно выраженного иммунитета (в пределах 50%).

88.Патогенные микобактерии. Возбудитель туберкулеза. Характеристика заболевания. Морфологические, культуральные, биохимические и другие свойства микроба. Материал исследования. Лабораторная диагностика и специфическая профилактика.

Род Mycobacterium (лат. Mycos — гриб, bacterium — палочка) включает 49 видов как патогенных, так и непатогенных микроорганизмов. К патогенным относят микобактерии, вызывающие туберкулез у людей (Мус. tyberculosis), животных (Мус. bovis), птиц (Мус. avium), мышей (Мус. murium), а также у холоднокровных — рыб, змей, лягушек, черепах (Мус. poikilotermum); возбудителей проказы (Мус. leprae) и паратуберкулеза крупного рогатого скота (Мус. paratuberculosis). Патогенные микобактерии (рис.3.) вызывают туберкулез — инфекционную, хронически протекающую болезнь у человека, животных, птиц, особенно кур. Патологоанатомически он характеризуется образованием множественных туберкулов (бугорков), подвергаемых творожистому перерождению, обызвествлению. Возбудителей туберкулеза человека и крупного рогатого скота открыл Р. Кох в 1882 г. Птичий вид установили Штраус и Гамалея (1891).

Туберкулез у животных вызывают три патогенных вида:

-   Mycobacterium tuberculosis - человеческий вид - к нему восприимчивы свиньи, кошки, собаки, крупный рогатый скот, пушные звери;

-   Mycobacterium bovis - бычий вид - вызывает заболевание у всех видов сельскохозяйственных и диких животных, пушных зверей, а также человека; %

-   Mycobacterium avium - птичий вид - вызывает заболевание у домашних и диких птиц, восприимчивы свиньи.

Рис. 3. Возбудитель туберкулеза.

Морфологические свойства. М. tuberculosis - тонкие длинные палочки, слегка изогнутые; M. bovis короткие толстые; M. avium - тонкие длинные полиморфные палочки. Не образуют спор, жгутиков, капсулы.

Культуральные свойства. Палочки человеческого вида являются облигатными аэробами, требовательны к питательным средам, растут на средах с добавлением яичного белка и глицерина (среда Левенштейна-Иенсева)(рис.4.). В глицериновом бульоне растут в виде рыхлой пленки. Наплотных средах дают желтоватые, бородавчатые колонии в R-форме,растут медленно 2-3 недели. Вирулентные штаммы М. tuberculosis при культивировании на стеклах в жидкой среде образуют колонии в виде «кос» и «жгутов», т.к. имеют корд – фактор. Другие 2 вида растут на простых средах при температуре 40 - 42°С.

Рис. 4. Культура Mycobacterium tuberculosis (среда Левенштейна-Иенсева).

Тинкториальные свойства. Грам «+», но красятся с трудом. Они очень устойчивы к кислотам, спиртам. щелочам, поэтому их называют кислотоустойчивыми, т.к. они содержат до 40% жиров - это воск, миколовая, стеариновая кислоты. Простыми методами не красятся, поэтому их окрашивают специальным методом - методом Циля-Нильсена(окрашиваются в красный цвет).

Биохимические свойства. Разлагают нитраты, мочевину, никотинамид. Антигенная структура:имеют большой набор белковых и липополисахаридных антигенов, которые участвуют в ГЗТ и обладают протективной активностью.

Токсинообразование. Экзотоксина не образуют, в 1890 г. Кох выделил из туберкулезных палочек белковую субстанцию, которую назвали туберкулином. Он обладает свойствами аллергена. Вирулентность туберкулезных палочек связана с содержанием миколовой кислоты и называется cord – фактор – фактор верулентности.

Резистентность. Туберкулезные палочки устойчивы во внешней среде, в пыли сохраняются 10 дней, в мокроте - до 10 месяцев. При кипячении погибают через 5 минут. Погибают при действии активированного раствора хлорамина и хлорной кислоты.

Материал исследования и лабораторная диагностика. Выделить возбудителя туберкулеза в чистом виде трудно. Успех во многом зависит от исследуемого материала, в качестве которого можно использовать пораженные органы и ткани, кровь, экссудат, транссудат, гной, молоко, масло, творог, мочу, фекалии, навоз, почву, воду, соскобы с различных объектов животноводческих помещений и др. В каждом случае перед посевом применяют соответствующий метод обработки материала. Для освобождения от посторонней микрофлоры исследуемый материал (молоко, мочу, слизь, пораженные органы и ткани) обрабатывают 6–10%м раствором серной кислоты (метод Гона) не более 25–30 мин. Для обработки жидкого, полужидкого, кашицеобразного материала и соскобов с объектов среды обитания животных используют метод флотации. Сущность метода заключается в том, что исследуемый материал взбалтывают в колбе вместе с углеводородами (бензол, бензин и др.), а всплывающий слой пены — флотат, содержащий микобактерии туберкулеза, используют для приготовления мазков, посевов на питательные среды, заражения лабораторных животных.

Дифференциация микобактерий туберкулеза. Для дифференциации микобактерий существуют следующие методы: микроскопический, культуральный, цитохимический, биохимический, серологический, аллергический, биологический и др.

Микроскопический метод. Размеры и форма всех туберкулезных микобактерий весьма относительны и при определенных условиях выращивания колеблются иногда в довольно широких пределах. Бычий вид — микобактерии достигают длины 1,5 – 3,5 и толщины 0,3 – 0,5 мкм; также встречаются в виде овоидных и кокковидных форм. Палочковидные формы чаще прямые и изогнутые, с округленными концами и зернистостью. Человеческий вид микобактерий — более длинные, тонкие. Микобактерии птичьего вида наблюдаются в виде коротких и длинных полиморфных палочковидных форм. Представители микобактерий мышиного вида тоже полиморфны.

Культуральный метод. Вирулентные культуры микобактерий бычьего вида на питательных средах растут очень медленно в виде сферических, гладких и шероховатых колоний, чаще в виде сухих крошек. Культуры микобактерий человеческого вида также растут в виде сферических колоний, которые встречаются как в R, так и в S форме. Свежевыделенные культуры микобактерий птичьего вида растут быстрее, чем человеческого и бычьего. Рост характеризуется образованием гладких, мелких, круглых, белых, блестящих, с ровными краями колоний, располагающихся как единично, так и в виде скоплений или сплошного слизистого налета.

Биологический метод определение патогенности культуры для морских свинок, кроликов, птиц и других лабораторных животных, которые отличаются восприимчивостью к различным микобактериям туберкулеза. Дифференциацию выделенных культур проводят на двух кроликах массой не менее 1,5–2 кг, которым в краевую вену уха вводят суспензию культуры микобактерий в физиологическом растворе: первому — в дозе 0,1, второму — 0,01 мг бактериальной массы. Возбудитель туберкулеза бычьего вида на протяжении 3 мес вызывает генерализованное поражение, человеческого вида — нетипичные туберкулезные очажки регрессивного характера, птичьего вида — септическую форму болезни без образования специфических патологических изменений в органах и тканях с летальным исходом в течение 2–3 нед. Параллельное заражение двух морских свинок такими же дозами культуры позволяет дифференцировать возбудителя птичьего вида, к которому они нечувствительны, в то время как микобактерии человеческого и бычьего видов вызывают прогрессивные туберкулезные изменения. У кур, зараженных внутривенно бактериальной массой, микобактерии птичьего вида в дозе 1 мг вызывают туберкулезные поражения селезенки, печени и кишечника. Куры к возбудителю человеческого и бычьего видов менее чувствительны. Биохимический метод основан на проявлении различной ферментативной активности микобактерий разных видов. Наиболее демонстративны следующие тесты биохимической дифференциации микобактерий: ниациновый тест, реакция восстановления нитратов, амидазная проба, каталазная и арилсульфатазная активность, рост на среде с салицилатом натрия, деградация (разрушение) салицилата натрия, ПАСК, использование нитрата как единственного источника азота, устойчивость к 5%му хлориду натрия и пикриновой кислоте, сахаролитическая активность и др.

Серодиагностика. Для ранней диагностики туберкулезa, а также для определения антигенного родства между истинными и атипичными микобактериями используют реакцию связывания комплемента (РСК) с антигенами УНИИЭВ (Ю. Я. Кассич) и СибНИВИ (Э. Д. Лакман); реакцию пассивной, или непрямой, гемагглютинации (РПГА); реакцию кольцепреципитации; реакцию диффузной преципитации в геле (РПГ).

Аллергическая диагностика туберкулеза. Ведущее место в прижизненном распознавании туберкулеза у животных и птиц занимает аллергическая диагностика с использованием туберкулина (Р. Кох, 1890). Однако еще до Коха в России Гельман (1888 – 1889) изготовил экстракт из туберкулезных бактерий и испытал его с диагностической целью на больных туберкулезом коровах, получив положительный результат. Диагностика с помощью туберкулина наиболее распространена в медицине и ветеринарии. В настоящее время основным прижизненным методом исследования животных на туберкулез служит внутрикожная туберкулиновая проба. Туберкулин для млекопитающих изготавливают из штаммов только бычьего вида. Для внутрикожной пробы применяют сухой очищенный туберкулин (протеин пурифиед дериват — ППД), предложенный М. А. Линниковой для медицинской практики. В ветеринарии используют стандартизированный сухой очищенный туберкулин для млекопитающих, который содержит в диагностической дозе 10000 - 2000 туберкулиновых единиц (ТЕ), то есть 0,2 мг препарата, растворенного в 0,2 мл растворителя. Сухой очищенный туберкулин для птиц готовят по той же технологии, что и ППД для млекопитающих,— из культурального фильтрата микобактерий туберкулеза птичьего вида и применяют для диагностики у птиц и свиней. Туберкулин вводят внутрикожно крупному рогатому скоту, буйволам, зебу, верблюдам, оленям — в область средней трети шеи, свиньям — наружной поверхности основания уха, курам — в бородку. С этой целью применяют инъекционные иглы, которые следует менять при каждом наполнении шприца туберкулином. Используют и безыгольные инъекторы марки ИБВ0,1, БИ7 «Овод», которые ускоряют и упрощают процесс введения туберкулина. Изучают реакцию через 72 ч по результатам измерения толщины кожной складки с учетом характера образовавшейся припухлости. При положительной реакции появляется разлитой отек размером 35-45 мм и более, без строго очерченных границ, тестообразной консистенции, с повышенной местной температурой и чувствительностью (болезненность). Кожная складка увеличивается на 3 мм и более. Кожную складку измеряют с помощью кутиметра и по разнице между показателем толщиы возникшей припухлости и складки неизмененного участка кожи устанавливают степень увеличения. Курам туберкулин вводят внутрикожно в одну бородку, вторая служит контролем. Реакцию учитывают через 30–36 ч. Положительная реакция проявляется в виде опухания бородки, она утолщена, тестообразна, горячая и отвисает книзу. Кроме внутрикожной пробы в определенных случаях используют глазную, подкожную и внутривенную пробы. Крупный рогатый скот может быть инфицирован возбудителем человеческого, птичьего видов, паратуберкулезными или атипичными микобактериями. Такие животные положительно реагируют на туберкулин млекопитающих, но не являются туберкулезными. Такие реакции называют неспецифическими и разделяют на парааллергические и псевдоаллергические. Первые — результат сенсибилизации крупного рогатого скота атипичными микобактериями, вторые — воздействия возбудителей паразитарных болезней и других факторов. Для дифференциации аллергических реакций у животных предложен комплексный аллерген (КАМ) из атипичных микобактерий (А. Н.Шаров, 1978).

Специфическая профилактика. Вакцину против туберкулеза предложили в 1924 г. французские ученые А. Кальметт и К. Герен. В течение 13 лет они культивировали штамм бычьих туберкулезных палочек на картофеле, пропитанном бычьей желчью с 5% глицерина. В результате 230 пересевов культуры, непрерывно подвергавшейся воздействию желчи, авторы получили стойкий вариант с определенными биологическими свойствами. Штамм этот назван культурой BCG (Bacterium Сalmett — Guerin) — БЦЖ. Кальметт и Герен предложили использовать культуру БЦЖ как безопасную вакцину для иммунизации людей и животных, прежде всего, крупного рогатого скота. В России противотуберкулезные прививки являются одним из важнейших мероприятий в профилактике туберкулеза человека. В ветеринарной практике вакцина БЦЖ не нашла применения.

99.Микозы. Возбудитель эпизоотического лимфангоита, кандидамикоза. Морфологические, культуральные, биохимические и другие свойства микробов. Материал исследования. Лабораторная диагностика и специфическая профилактика.

Кандидамикоз (Candidamycosis; кандидоз, мо­лочница, соормикоз, поверхностный бластомикоз)— заразная болезнь животных и человека, характеризующаяся поражени­ ем слизистых оболочек желудочно­кишечного тракта и других органов с образованием беловатых пленок наподобие творожистых наложений, а также гранулематозных образований во внутренних органах (ротовая полость, молочная железа, кишечник, легкие). Поражается и кожа. Кандидамикоз вызывается дрожжеподобными грибами из рода Candida, главным образом Candida albicans. Паразитируют и другие грибы— С. krusei, С. stellatoidea, С. tropicalis, С. pseudotropicalis. Возбудитель обнаружен Б. Лаугенбеком в 1839 г. в тканях больного человека. В 1843 г. Робин дифференцировал его и назвал Oidium albicans.

Рис.5. Возбудитель кандидамикоза (Candida albicans).

Морфология. Кандиды — дрожжеподобные грибы, представляют собой одноклеточные микроорганизмы, продуцирующие псевдомицелий, мицелий, бластоспоры, вертициллы, гломерулы, псевдоконидии. В отличие от истинных дрожжей кандиды не образуют аски (сумки). Характерным морфологическим признаком С. albicans служит способность образовывать на средах с тканевыми экстрактами хламидоспоры (споры с плотной двойной оболочкой) различных размеров. Кандиды— относительно крупные микроорганизмы (от 1,5 -1,5 до 6–10 мкм). Хорошо окрашиваются простыми методами, по Граму, Романовскому— Гимзе. Грибы можно исследовать и в неокрашенном состоянии в капле воды или глицерина.

Культивирование. Кандиды— аэробы, хорошо растут на плотных и жидких средах при рН 6,0 – 6,5, а также при рН 2,5 – 3,0. Оптимальная температура 21 – 27С. На суслоагаре через 1–5 сут С. albicans формирует круглые, сметанообразные, плоские и выпуклые, блестящие, иногда матовые, с ровными краями колонии, состоящие из дрожжевидных клеток, крепко вросших в субстрат. В жидкой среде рост глубинный (помутнение, осадок, пленки, пристеночное кольцо). На агаре Литмана колонии выпуклые, часто конусовидные, маслянистые, блестящие, вначале гладкие (S-форма), позже шероховатые (R-форма). Окраска колоний от темно-синей до пурпурной. А. В. Милихина с соавт. (1988) для выделения С. Albicans из клинического материала предложила сухую селективную среду кандидаагар.

Биохимические свойства. Кандиды сбраживают глюкозу, лактозу, рафинозу, лакмусовое молоко и левулезу с образованием ислоты и газа. Некоторые штаммы не сбраживают сахарозу, что используют для дифференциации различных грибов рода Candida. С. albicans на висмут­дрожжевой среде формирует черные ко­лонии, что также отличает его от других грибов. Продуцирует эн­дотоксин, вызывающий гибель лабораторных животных. Убитые формалином (0,5%­й раствор) культуры гриба через 48 ч вызыва­ют гибель при внутрибрюшинном введении у 21­суточных мышей.

Антигенная структура. С. albicans представляет собой бел­ковую фракцию. Гриб продуцирует гликопротеин. Под воздействи­ем физико­химических факторов может менять морфологическую структуру, диссоциировать в гладкие (S) и шероховатые (R) коло­нии, а также изменять биохимические и антигенные свойства.

Устойчивость. Грибы хорошо выдерживают высушивание и замораживание. В стерильной воде и почве выживают до 12 мес., а в нестерильной— до 3–7 мес. При нагревании до 60С грибы гибнут в течение 5–10 мин. Ультрафиолетовое излуче­ние убивает дрожжеподобные грибы через 10–15 мин; рассеян­ный свет— в течение 14 сут. Из химических средств фунгицидным действием обладают 2%­й формалин, препараты йода, раствор люголя, йод­глицерин, 1%­й раствор хлорида йода, 5%­й раствор фенола, хлора­мина, 10%­й раствор лизола и др.

Патогенность. Гриб продуцирует токсин — кандидаток­син. Вирулентные штаммы грибов из рода Candida вызывают инфекцию у индюшат, цыплят, гусят, утят в возрасте до трех месяцев, реже у поросят, ягнят, телят, щенков. В лабораторных условиях вирулентность С. albicans определяют на мышах, кро­ликах, морских свинках, крысах, куриных эмбрионах 9–10­су­точного возраста. Весьма восприимчивы к грибу дикие голуби. Введение 24–48­часовой свежевыделенной культуры С. albicans внутривенно, внутрибрюшинно, внутримышечно обуслов­ ливает развитие острого или хронического заболевания. Разви­тие и исход болезни зависят от степени вирулентности гриба, способа введения, дозы, вида, возраста и режима кормления лабораторных животных. При вскрытии трупов лабораторных животных могут быть обнаружены абсцессы в печени, селезенке, почках, некротичес­кие очаги в корковом слое почек, лимфоцитемия без атрофии лимфатической системы. Внутримозговое введение культуры гриба обусловливает генерализованную инфекцию, а подкожное — местный процесс. Куриные эмбрионы при заражении на хорион­аллантоис­ную оболочку в дозе 0,2 мл суспензии гриба погибают в течение 24–48 ч. Возникновению болезни способствует снижение защитных свойств организма животных в результате несбалансированно­го кормления и неудовлетворительного содержания в сырых, тесных, плохо проветриваемых помещениях. Длительное при­ менение антибиотиков, сульфаниламидов и витаминов повыша­ет вирулентность С. albicans. Нередко кандидамикоз возникает как секундарная болезнь при туберкулезе и дисбактериозах.

Диагностика. Основана на микроскопическом исследова­нии патологического материала, где обнаруживают в большом количестве развитый мицелий, псевдомицелий и бластоспоры. Для подтверждения патогенности грибов ставят биопробу на кроликах, белых мышах или цыплятах суточного возраста. Необходимо дифференцировать от туберкулеза, авитамино­зов и незаразных желудочно­кишечных болезней. Биопрепараты отсутствуют. Больных животных лечат йо­дистыми препаратами, антибиотиками (нистатин, микоста­ тин, фунгицидин), которые дают с простоквашей из расчета 25–50 мг/кг массы в течение десяти дней. Крупным живот­ ным, пораженным кандидами, скармливают трихомицин в дозе 200 тыс. ЕД на 1 кг массы животных.

Эпизоотический лимфангоит (Lymphangoitis epizootica) — африканский сап, бластомикоз, гистоплазмоз, лимфангоит — хроническая заразная болезнь цельнокопытных животных, характеризующаяся воспалением лимфатических сосудов кожи и подкожной клетчатки с образованием гнойных очагов и язв.