- •Глава 2 Материал и методы исследования
- •2.1. Общая характеристика исследуемых клинических групп
- •2.2. Экспериментальная часть исследований
- •2.2.1. Эксперименты в условиях in vivo
- •2.2.2. Эксперименты в условиях in vitro
- •2.3. Методы исследования
- •2.3.1. Иммунологические методы исследования
- •2.3.1.1. Оценка спонтанной и индуцированной секреторной активности мононуклеаров периферической крови в условиях in vitro
- •2.3.1.2. Исследование врожденного иммунитета
- •2.3.1.3 Исследование адаптивного иммунитета
- •2.3.1.4. Определение концентрации цитокинов в сыворотке
- •2.3.2. Морфологические методы исследования
- •2.3.3. Статистические методы
2.3.1.4. Определение концентрации цитокинов в сыворотке
Проводили на планшетном фотометре «Multiscan plus» (Labsystems, Финляндия) при длине волны 450 нм с применением тест-систем (таблица 1).
Таблица 1
Характеристика тест-систем для определения цитокинов
Тест-система |
Название |
Произво-дитель |
Чувствительность |
Интер- Вал |
INF-γ, пг/мл |
Гамма – интерферон – ИФА-БЕСТ для определения в биологических жидкостях |
«Вектор-Бест», Новосибирск |
2 |
20-1000 |
IL-1β, пг/мл |
ИЛ - 1бета – ИФА – БЕСТ (А-8766) для определения в биологических жидкостях |
«Вектор-Бест», Новосибирск |
1 |
0– 250 |
IL-4, пг/мл |
ИЛ – 4 – ИФА – БЕСТ для определения в биологических жидкостях |
«Вектор-Бест», Новосибирск |
2 |
0–400 |
TGF-β1, пг/мл |
Трансформирующий фактор роста - β1 |
«Bender Medsystems», Австрия |
2 |
31,2-2000 |
EGF,пг/мл |
Эпидермальный фактор роста |
«Biosource» (США) |
1 |
3,9-250 |
2.3.2. Морфологические методы исследования
Морфологическое определение апоптоза лимфоцитов проводили методом суправитальной окраски клеток ядерным флюоресциирующим красителем «Hoeсhst 33342» с последующим морфологическим учетом на микроскопе «ЛЮМАМ-АИ1» (Россия) при длине возбуждения 360 нм и эмиссии 470 нм. Подсчитывали % лимфоцитов, имеющих выраженную фрагментацию хроматина.
Методы оценки состояния ожоговой раны. Для оценки состояния дефекта кожи после ТТ исследовали его дно, края, окружающую кожу, а также характер грануляционной ткани в дне, наличие налетов и их характер (фибринозные, гнойные); наличие краевой и очаговой эпителизации; наличие отделяемого; отёк; состояние окружающей кожи. Наиболее важным показателем заживления ожоговой раны является ее эпителизация. Для оценки динамики эпителизации измеряли площадь раневого дефекта методом контактной планиметрии с использованием прозрачной полиэтиленовой пленки, которую предварительно подвергали антисептической обработке. Пленку накладывали во время перевязки, обводили контур дефекта на пленке маркером. В дальнейшем сопоставляли пленку с листом миллиметровой бумаги и, перенося контур, подсчитывали площадь дефекта. Планиметрическое исследование выполнялось на 1, 3, 7, 14, 21, 28 сутки после термической травмы.
Скорость эпителизации (VS ) рассчитывалась по формуле :
VS = S − Sn / t, где
S — начальная площадь раны до лечения (в дальнейшем, площадь при предыдущем измерении); Sn — площадь при последующем измерении;
t — число дней между измерениями [4].
При этом площадь раны в последующих измерениях определяли в %, принимая за 100% площадь ожоговой раны до лечения, результат выражали в % за сутки.
Для гистологического исследования кусочки кожи забирали в 10% нейтральный формалин, затем его обезвоживали и заливали в парафин по общепринятой методике. С парафиновых блоков изготавливали срезы толщиной 5мкм. Депарафинированные срезы окрашивали гематоксилином и эозином для обзорной микроскопии. Микроскопическое изучение гистологических срезов проводили на микроскопе «Leika DMRXA» (Германия). Морфометрические исследования осуществляли с помощью компьютерной программы анализа изображений «Image Scope M» (Россия, Москва), проводящий цифровые преобразования изображения гистологических структур и компьютеризированный подсчет параметров выбранных объектов. Морфометрически были оценены высота эпителиального слоя, количество клеток в нем, клеточный состав инфильтрата дермы.