- •Лабораторный практикум по общей биологии
- •Содержание
- •Введение
- •Правила оформления отчетов по лабораторным работам
- •Порядок проведения занятия
- •Техника безопасности
- •Устройство световых микроскопов и техника микроскопирования. Особенности строения клеток прокариот и эукариот
- •Вопросы и задания для самоподготовки
- •Работа 1.1. Изучение устройства светового микроскопа
- •Работа 1.2. Установка света
- •Работа 1.3. Освоение правил работы с микроскопом
- •Работа 1.4. Изучение строения прокариотических клеток
- •Работа 1.5. Изучение строения клеток пленки лука
- •Работа 1.6. Микроскопия клеток крови лягушки
- •Материалы, представляемые в отчете по лабораторной работе
- •Тема 2 особенности строения животных и растительных клеток. Ультрамикроскопическая организация клеток прокариот и эукариот
- •Вопросы и задания для самоподготовки
- •Работа 2.1. Микроскопия хлоропластов в клетках водных растений
- •Работа 2.2. Микроскопия хромопластов в клетках мякоти томата
- •Работа 2.3. Микроскопия клеток крови человека
- •Работа 2.4. Изучение электронограмм животных и растительных клеток
- •Материалы, представляемые в отчете по лабораторной работе
- •Тема 3 размножение организмов. Деление клеток. Митоз. Мейоз
- •Вопросы и задания для самоподготовки
- •Работа 3.2. Приготовление давленых препаратов корешков растений
- •Работа 3.3. Изучение морфологии делящейся клетки, выявление фаз митоза
- •Работа 3.4. Изучение почкования у дрожжевых грибов
- •Работа 3.5. Изучение спорообразования у плесневого гриба мукор
- •Материалы, представляемые в отчете по лабораторной работе
- •Закономерности явлений наследственности.
- •Дрозофила как объект генетических
- •Исследований
- •Вопросы для самоподготовки
- •Работа 5.1. Изучение особенностей строения и жизнедеятельности дрозофилы (Drosophila melanogaster)
- •Работа 5.2. Изучение морфологических особенностей дрозофил мутантных линий
- •Материалы, представляемые в отчете по лабораторной работе
- •Тема 5 закономерности явлений изменчивости. Статистическое изучение модификационной изменчивости
- •Вопросы для самоподготовки
- •Работа 6.1. Составление вариационного ряда. Вычисление средней арифметической и коэффициента вариации
- •Материалы, представляемые в отчете по лабораторной работе
- •Правила произношения латинских терминов
- •Особенности произношения некоторых звуков в латинском языке при сочетании их с другими звуками
- •Iris – ирис (ирис),
- •Iberis – иберис (иберис).
- •Долгота и краткость слогов
- •Правила ударения
- •Несколько латинских пословиц и выражений
- •Список литературы Обязательная:
- •Дополнительная:
Тема 3 размножение организмов. Деление клеток. Митоз. Мейоз
Цели занятия:
-
Изучить основные формы бесполого и полового размножения.
-
Изучить митотический цикл клетки, научиться различать фазы митоза на временных препаратах клеток корешков растений.
-
Изучить структурные особенности метафазных хромосом.
-
Изучить основные стадии мейоза.
Вопросы и задания для самоподготовки
-
Формы бесполого размножения, их особенности и значение.
-
Формы полового размножения, их особенности и значение.
-
Виды деления клеток (бинарное, митоз, амитоз, мейоз).
-
Клеточный, или митотический цикл, его фазы и периоды.
-
Митоз, фазы митоза, его биологическое значение.
-
Строение метафазных хромосом, их классификация.
-
Мейоз, основные фазы I деления.
-
Мейоз, основные фазы II деления.
-
Отличия митоза от мейоза.
-
Биологическое значение мейоза.
-
Образование мужских и женских половых клеток, характеристика основных стадий, сходство и различие.
-
Место мейоза в жизненном цикле организмов.
Оборудование и материалы:
-
Микроскопы, предметные и покровные стекла, препаровальные иглы, пинцеты, стаканчики с дистиллированной водой, деревянные палочки (спички).
-
Свежевыращенные или фиксированные корешки лука, чеснока.
-
Стаканы с суспензией пекарских дрожжей.
-
Чашки Петри с культурой плесневого гриба мукор.
РАБОТА 3.1. Изучение митотического цикла клетки
Митоз (от греч. myton – нить) – это основной способ деления соматических клеток эукариот. Впервые описан профессором Московского университета И.Д.Чистяковым в 1874 году. Митоз в совокупности с интерфазой составляет митотический, или клеточный цикл.
Рисунок 3 - Митотический цикл диплоидной клетки (схема):
G1 - пресинтетический (постмитотический) период; S - синтетический период; G2 - постсинтетический (премитотический) период; митоз (П – профаза, М – метафаза, А – анафаза, Т – телофаза); n - гаплоидный набор хромосом; 2n - диплоидный набор хромосом; 4n - тетраплоидный набор хромосом; с – количество ДНК, соответствующее гаплоидному набору хромосом (вне круга показаны изменения хромосом в различные периоды жизненного цикла клетки).
ЗАДАНИЕ. По рис.3 изучите митотический цикл диплоидной клетки, перерисуйте схему в альбом.
Работа 3.2. Приготовление давленых препаратов корешков растений
ПОДГОТОВКА К ЗАНЯТИЮ (ОСУЩЕСТВЛЯЕТСЯ ЛАБОРАНТОМ)
За 5-7 дней до начала занятий прорастите в стаканчике с водой несколько (2-3) головок репчатого лука и чеснока. Когда длина корешков достигнет 7-10 мм, отрежьте ножницами кончики корешков длиной около 5 мм. Поместите корешки в модифицированный фиксатор Карнуа (ледяная уксусная кислота и этанол в соотношении 1:3) на 3-4 часа. По истечении этого времени перенесите корешки в стакан с водой, перемешайте его содержимое стеклянной палочкой в течение нескольких минут, выньте корешки из воды и поместите во флакончик, содержащий 70%-ный раствор этанола, для хранения. Флакончик закройте корковой пробкой и поставьте в холодильник. В таких условиях корешки могут храниться до года и более.
За сутки до занятий поместите корешки на 10-15 минут в смесь концентрированной соляной кислоты и метанола (в соотношении 1:1) для размягчения (мацерации). Смесь осторожно слейте, а корешки промойте водой в течение 5 минут. Промытые корешки поместите в пенициллиновый флакончик с красителем (ацетоорсеин или ацетокармин) на 18-20 часов.
Предметные и покровные стекла должны быть заранее тщательно обезжирены хромовой смесью, промыты дистиллированной водой и высушены. Заблаговременно приготовьте красители по следующей прописи:
АЦЕТООРСЕИН. В стеклянную колбу объемом 150-200 мл наливают 45 мл ледяной уксусной кислоты, вставляют стеклянную воронку и помещают колбу в водяную баню на электроплитке с асбестовой пластинкой. В горячую уксусную кислоту осторожно через воронку вносят 1 г орсеина, растворяют его, покачивая колбу, охлаждают раствор и добавляют 55 мл дистиллированной воды. Раствор хорошо перемешивают, фильтруют. Готовый краситель хранят в холодильнике в склянке с притертой пробкой.
АЦЕТОКАРМИН. В стеклянную колбу объемом 150-200 мл наливают 55 мл дистиллированной воды, добавляют 45 мл ледяной уксусной кислоты и 2-5 г кармина. В колбу вставляют стеклянную воронку. Затем колбу ставят на водяную баню или электроплитку, спираль которой закрыта асбестовой пластинкой. Раствор кипятят в течение 30-60 минут, охлаждают и фильтруют. Готовый краситель переливают в склянку с притертой пробкой и хранят в холодильнике неограниченное время.
ВЫПОЛНЕНИЕ РАБОТЫ
Препаровальной иглой извлеките из красителя корешок лука или чеснока, поместите его на предметное стекло в каплю красителя и накройте покровным стеклом, слегка надавив. Кончиком спички или деревянной палочки круговыми движениями (по спирали от центра к периферии) осторожно (!) раздавите корешок, стараясь распределить клетки равномерно в один слой, не смещая покровное стекло. Препарат поместите на предметный столик микроскопа и рассмотрите сначала при малом (с объективом х9), а затем при большом (с объективом х40) увеличении. Отыщите фазы митотического цикла.
ЗАДАНИЕ. Самостоятельно приготовьте несколько давленых препаратов из корешков лука и чеснока, подготовленных и окрашенных накануне.