- •Общая ботаника
- •Оглавление
- •Тема 1. Оптические приборы, используемые в
- •Морфолого-анатомических исследованиях.
- •Основные приемы приготовления микропрепаратов
- •И работы с ними
- •Работа 1. Оптические приборы, используемые в морфолого-анатомических исследованиях. Работа с постоянными препаратами.
- •Работа 2. Приготовление временного препарата мелких объектов. Изучение морфологии спор плауна (Lycopodium sp.)
- •Работа 3. Приготовление временного тотального препарата. Изучение формы клеток листа мниума (Mnium sp.).
- •Работа 4. Приготовление временного препарата однослойной ткани. Изучение клетки эпидермы сочной чешуи луковицы лука (Allium cepa)
- •Тема 2. Пластиды и запасные вещества растительной клетки
- •Работа 1. Хлоропласты в листе элодеи канадской (Elodea canadensis) или мниума (Mnium sp.)
- •Работа 2. Хромопласты в плоде рябины (Sorbus aucuparia), оболочке соплодия шиповника (Rosa sp.) и корнеплоде моркови (Daucus carota)
- •Работа 3. Запасной крахмал клубня картофеля (Solanum tuberosum)
- •Работа 4. Рафиды в клетках листа зебрины пурпурной (Zebrina purpusii)
- •Тема 3. Ультраструктура растительной клетки
- •Работа 1. Строение оболочек растительных клеток
- •Работа 2. Цитокинез в клетке листа табака (Nicotiana tabacum)
- •Работа 3. Хлоропласты
- •Работа 4. Диктиосомы в паренхимной клетке хвоща (Equisetum hyemale)
- •Работа 5. Митохондрии в клетке листа табака (Nicotiana tabacum)
- •Работа 6. Клетка обкладки проводящего пучка листа кукурузы (Zea mays).
- •Тема 4. Покровные и механические ткани
- •Работа 1. Трихомы и устьица листа герани (Geranium sp.)
- •Работа 2. Устьица на электронных микрофотографиях
- •Работа 3. Колленхима и склеренхима на микрофотографиях
- •Работа 4. Брахисклереиды в плодах груши (Pyrus communis)
- •Тема 5. Проводящие ткани
- •Работа 1. Элементы ксилемы
- •Работа 2. Элементы флоэмы стебля тыквы (Cucurbita maxima)
- •Работа 6. Непучковая проводящая ткань на поперечном срезе ветки липы (Tilia cordata)
- •Тема 6. Корень. Корневые системы
- •Работа 1. Первичное строение корня. Строение корня ириса (Iris germanica)
- •Работа 2. Вторичное строение корня. Строение корня тыквы (Cucurbita pepo)
- •Работа 3. Корневые системы
- •Работа 4. Корнеплод моркови (Daucus carota)
- •Работа 5. Корнеплод редьки (Raphanus sativus)
- •Работа 6. Корнеплод свеклы (Beta vulgaris)
- •Работа 7. Бактериальные клубеньки на корнях бобовых
- •Тема 7. Побег. Побеговые системы
- •Работа 1. Строение побега. Многолетние побеги тополя (Populus sp.) и клена (Acer sp.)
- •Работа 2. Строение почек
- •Работа 3. Групповое расположение пазушных почек
- •Работа 4. Типы ветвления и системы побегов
- •Тема 8. Стебель
- •Работа 1. Морфология стебля
- •Работа 2 . Анатомия стеблей травянистых однодольных растений
- •Работа 3. Анатомия стебля травянистого двудольного растения
- •Работа 4. Анатомия многолетнего стебля древесного растения
- •Тема 9. Лист
- •Работа 1. Анатомия листа камелии (Camellia japonica)
- •Работа 2. Анатомия хвоинки сосны (Pinus sylvestris)
- •Работа 3. Морфология листьев
- •Тема 10-11. Метаморфозы побега
- •Работа 1. Корневище
- •Работа 2. Клубень
- •Работа 3. Луковица
- •Работа 4. Клубнелуковица
- •Работа 5. Усики
- •Работа 6. Колючки
- •Работа 7. Надземные столоны
- •Работа 8. Кладодии и филлокладии
- •Работа 9. Суккулентные побеги
- •Работа 10. Ловчие аппараты насекомоядных растений
- •Тема 12-13. Цветок и соцветие
- •Работа 1. Морфология цветка
- •Работа 2. Андроцей
- •Работа 3. Гинецей
- •Работа 4. Типы соцветий
- •Тема 14-15. Плод
- •Работа 1. Типы плодов
- •Работа 2. Апокарпные плоды
- •Работа 3. Синкарпные плоды
- •Работа 4. Паракарпные плоды
- •Работа 5. Лизикарпные плоды
- •Работа 6. Партенокарпический плод
- •Вопросы к зачету
Работа 1. Хлоропласты в листе элодеи канадской (Elodea canadensis) или мниума (Mnium sp.)
-
Пинцетом оторвать лист и положить в каплю воды под покровное стекло.
-
Рассмотреть лист при слабом увеличении. Схематично зарисовать общую форму листа, указать среднюю жилку и межклетники, заполненные газом.
-
В центр поля зрения поставить область средней жилки и рассмотреть ее при сильном увеличении. Зарисовать одну типичную клетку. Отметить оболочку, вакуоль, постенный слой цитоплазмы и хлоропласты с зернами первичного крахмала. По перемещению хлоропластов пронаблюдать движение цитоплазмы вдоль оболочки.
-
Снять препарат со столика микроскопа, приподнять покровное стекло, прибавить каплю реактива Люголя и снова наложить стекло. Рассмотреть и нарисовать окрасившиеся ядра и зерна крахмала внутри хлоропластов.
Хлоропласты также можно изучать на других однослойных листьях (мниума и др.).
Работа 2. Хромопласты в плоде рябины (Sorbus aucuparia), оболочке соплодия шиповника (Rosa sp.) и корнеплоде моркови (Daucus carota)
-
Скальпелем надорвать кожуру плода рябины, извлечь иглой немного мякоти и распределить ее в капле воды на предметном стекле.
-
При слабом увеличении выбрать несколько клеток, а при сильном увеличении рассмотреть их и зарисовать. Обратить внимание на цвет, число и характерную форму хромопластов (изогнутые, сильно вытянутые, заостренные).
-
Аналогично приготовить временный препарат, рассмотреть и зарисовать хромопласты шиповника. Отметить их преимущественно округлую форму.
-
Рассмотреть постоянный препарат поперечного среза корнеплода моркови. На тонкой части среза отыскать клетки с длинными игольчатыми хромопластами и зарисовать их.
Хромопласты можно также посмотреть в клетках мякоти плода арбуза под стереоскопическим микроскопом.
Работа 3. Запасной крахмал клубня картофеля (Solanum tuberosum)
-
Нанести каплю воды на предметное стекло. Разрезать клубень картофеля, скальпелем перенести немного сока в каплю воды и накрыть покровным стеклом.
-
При слабом увеличении найти а при сильном, изменяя величину диафрагмы, рассмотреть и зарисовать простое крахмальное зерно. Отметить эксцентрическую слоистость. Указать слои, отложенные днем (узкие, плотные, светлые) и ночью (широкие, рыхлые и более темные). На рисунке отразить характерную форму крахмального зерна, положение центра образования, характер слоистости.
-
Найти и зарисовать несколько полусложных и сложных (двойных, тройных) крахмальных зерен.
-
Рядом с покровным стеклом, не поднимая его, нанести каплю реактива Люголя. При малом увеличении проследить возникновение цветной реакции и зарисовать зерна крахмала с разной интенсивностью окраски - от бледно-лиловой до черно-фиолетовой.
Работа 4. Рафиды в клетках листа зебрины пурпурной (Zebrina purpusii)
-
Приготовить предметное стекло с каплей воды. Обернув лист нижней стороной наружу вокруг указательного пальца левой руки, сорвать пинцетом небольшой кусочек эпидермы. Положить их в каплю воды и накрыть покровным стеклом.
-
На слабом увеличении найти и зарисовать высыпавшиеся из поврежденных клеток отдельные игольчатые кристаллы а также клетку с рафидами (пучком параллельных игольчатых кристаллов).