- •28 Июня 2004 г., протокол № 11
- •Введение
- •Занятие 1
- •Метод чистых культур
- •Выделение фитопатогенных грибов
- •Получение моноспоровых культур
- •Поддержание и хранение чистых культур
- •Задание:
- •1. Подготовить и простерилизовать чашки Петри и пробирки.
- •2. Установить вид патогена на пораженном органе растения, используя определители.
- •3. Продезинфицировать и поместить пораженные части растения во «влажную камеру». Занятие 2
- •Задание:
- •Занятие 3
- •I. Конидиеносцы (по Литвинову, 1969)
- •1. Характер расположения
- •2. Степень дифференциации
- •3. Тип ветвления
- •2. Мицелий и его производные
- •3. Споры вегетативного размножения (по н.А. Наумову, 1952)
- •Измерение объектов при микроскопировании
- •Задание:
- •1. Установить цену деления окуляр-микрометра.
- •2. Описать морфологические структуры и культуральные свойства изучаемых микромицетов по приведенному плану. Занятие 4
- •Измерение линейного роста колоний
- •Определение интенсивности плодоношения и спорообразования грибов
- •Определение жизнеспособности патогена
- •Задание:
- •1. Изучить динамику роста фитопатогенных микромицетов на различных питательных средах.
- •2. Изучить влияние температуры на развитие фитопатогенных микромицетов.
- •Занятие 5
- •Задание:
- •1. Выявить in vitro типы взаимоотношений фитопатогенных грибов и грибов рода Trichoderma.
- •Занятие 6
- •Задание:
- •1. Изучить влияние бактерий из родов Bacillus и Pseudomonas на рост и спорообразование фитопатогенных микромицетов.
- •Литература
- •Содержание
- •220050, Минск, проспект Франциска Скорины, 4.
- •220064, Минск, ул. Курчатова, 10.
Задание:
1. Установить цену деления окуляр-микрометра.
2. Описать морфологические структуры и культуральные свойства изучаемых микромицетов по приведенному плану. Занятие 4
Тема: Изучение вегетативных и репродуктивных функций грибов.
Цель: Ознакомиться с особенностями роста и развития грибов под влиянием различных факторов среды и условий культивирования.
Для роста грибов необходимые следующие факторы:
– источники питания (натуральные и искусственные);
– неорганические соединения, содержащие Na, K, Ca, Mg, S, Fe, P, C, H, N;
– микроэлементы: Mn, B, Co, Mo, Zn;
– стимуляторы роста;
– условия оптимальных температур, кислотности, влажности, освещенности, степени аэрации и др.
Грибы, являющиеся облигатными паразитами, факультативными сапротрофами, культивируются на живых растениях или их частях (ржавчинные, мучнисторосяные, пероноспоровые).
Естественные питательные субстраты неопределенного состава, искусственные субстраты определенного состава содержат необходимые элементы в усвояемой форме. Используют кусочки овощей, плодов, мелко нарезанные ветви и стебли растений, зерно в натуральном виде или в виде экстрактов, настоев или отваров (пивное сусло, дрожжевая вода, кукурузный, картофельный экстракты), добавляемые к искусственным питательным средам.
Питательные вещества усваиваются микроорганизмами только при определенной кислотности питательной среды, так как проницаемость оболочки клеток зависит от этого фактора. Большинство грибов развивается при pH 4,5-6,0. Реакция среды в процессе роста культуры грибов может значительно изменяться. Каждая стадия развития гриба (прорастание спор, рост мицелия, спорообразование) требует определенных значений pH. Грибы одних родов вызывают подщелачивание среды (Fusarium), другие – подкисляют среду (Phytophthora).
Температура выращивания. Минимальная температура для развития грибов – 0-5 °С, оптимальная температура отличается в зависимости от вида. Например, для грибов р. Fusarium – 28-30 °С, Phytophthora infestans – 15-20 °С, Botrytis cinerea – 24-25 °С.
Освещенность. При недостаточном освещении наблюдается задержка спорообразования. При УФ-освещении прекращается рост и ферментативная активность грибов. Прямые солнечные лучи отрицательно влияют на рост грибов и их активность при длительном хранении.
Измерение линейного роста колоний
Для определения линейного роста измеряют диаметр колонии (от места посева до конца зоны роста мицелия), растущих на плотной среде, обычно в чашках Петри с одинаковым слоем среды, через определенные промежутки времени. В некоторых случаях измерение производят в специальных пробирках с застывшим горизонтальным слоем плотной среды равномерной толщины.
Изучаемый гриб высевают в центр поверхности плотной питательной среды по возможности немногочисленым инокулюмом всегда одной плотности, особенно при изучении влияния условий культивирования на рост колоний.
Диаметр колонии измеряют в двух взаимноперпендикулярных направлениях в двух-трех повторностях через определенные промежутки времени (каждые 24 ч). Количество измерений зависит от скорости роста гриба, оно больше у быстрорастущих видов. Результаты измерений изображают графически в равномерной или логарифмической шкале.
Линейный рост гриба определяют на благоприятной среде при изучении влияния различных факторов среды.
Радиальная скорость роста колонии вычисляется по формуле:
(2)
где Kr – радиальная скорость роста колонии, мм/ч;
r – радиус колонии в данный момент времени, мм;
r0 – радиус колонии в начальный момент времени, мм;
t – время от момента посева до того момента, когда радиус колонии достигнет r, час.