- •Список сокращений
- •Оглавление
- •Глава 2. Материалы и методы исследования 29
- •Глава 3. Получение криоконсервированной культуры эмбриональных клеток свиной печени для ксенотрансплантации 41
- •Глава 4. Оценка эффективности ксенотрансплантации криоконсервированной культуры клеток эмбриональной печени в коррекции острого токсического повреждения печени 54
- •Глава 5. Структурная оценка влияния ксенотрансплантации культуры эмбриональных клеток печени 69
- •Введение
- •Применение клеток печени для коррекции острой печеночной недостаточности (обзор литературы)
- •1.1 Способы клеточной метаболической поддержки в коррекции печеночной недостаточности
- •1.2. Способы коррекции острой печеночной недостаточности в эксперименте
- •1.2.1. Моделирование острой печеночной недостаточности
- •1.2.2. Механизмы острого токсического повреждения печени при введении сСl4
- •1.2.3.Критерии эффективности метаболической клеточной коррекции опн
- •1.3. Трансплантация гепатоцитов в коррекции острой печеночной недостаточности
- •1.3.1. Способы приготовления гепатоцитов для трансплантации
- •1.3.2. Криоконсервация
- •1.3.3.Приготовление препарата для ксенотрансплантации
- •1.3.4. Способы ксенотрансплантации
- •Глава 2. Материалы и методы исследования
- •2.1 Общая характеристика экспериментального материала
- •2.2.2.1. Культура клеток печени
- •2.2.2.2. Приготовление ткани плаценты для ксенотрансплантации
- •2.2.2.3.Приготовление питательной среды для инъекции
- •2.2.3. Методы лабораторного контроля
- •2.2.3.1.Определение массы печени
- •2.2.3.2.Определение биохимических показателей сыворотки крови
- •2.2.3.3.Исследование показателей системы гемостаза
- •2.2.4.Методы морфологического исследования
- •2.3.Методы статистической обработки
- •Глава 3. Получение криоконсервированной культуры эмбриональных клеток свиной печени для ксенотрансплантации
- •3.1.Технология получения культуры клеток печени
- •3.1.1 Дезагрегация печеночной ткани
- •3.1.2. Оптимизация рН среды для культивации клеток
- •3.1.3 Очистка и культивирование эмбриональных клеток свиной печени
- •3.2.Консервация клеток
- •3.2.1. Приготовление среды для криоконсервации
- •3.2.2. Сравнительная оценка эффективности криоконсервации культуры эмбриональных клеток свиной печени
- •3.3. Получение препарата и ксенотрансплантация
- •Глава 4. Оценка эффективности ксенотрансплантации криоконсервированной культуры клеток эмбриональной печени в коррекции острого токсического повреждения печени
- •4.1.Течение острого токсического повреждения печени на фоне метаболической коррекции
- •4.1.1. Ход эксперимента
- •4.1.2. Летальность в экспериментальных группах
- •4.2. Динамика биохимических показателей при остром токсическом повреждении печени под влиянием ксенотрансплантации криоконсер-вированной культуры эмбриональных клеток печени
- •4.2.1. Уровень альбумина в сыворотке крови
- •4.2.2. Уровень холестерина
- •4.2.3. Уровень билирубина
- •4.2.4. Активность индикаторных ферментов
- •4.3. Динамические изменения некоторых показателей системы гемостаза
- •4.3.1. Уровень фибриногена в плазме крови
- •4.3.2. Вязкость крови
- •4.3.3. Гематокрит
- •4.3.4. Агрегация тромбоцитов
- •Глава 5. Структурная оценка влияния ксенотрансплантации культуры эмбриональных клеток печени
- •5.1. Морфологическое исследование зоны трансплантации
- •5.2. Макроскопическая характеристика печени животных
- •5.3. Характеристика строения печени при световой микроскопии
- •5.4. Ультраструктура гепатоцитов при остром токсическом повреждении печени, корригированном ксенотрансплантацией культуры эмбриональных клеток печени
- •5.5. Содержание днк в ядрах гепатоцитов
- •Заключение
- •Практические рекомендации
- •Список использованной литературы
5.5. Содержание днк в ядрах гепатоцитов
Для уточнения механизмов регенерации печени под влиянием ксенотрансплантации ККП было проведено количественное исследование содержания ДНК в ядрах ГЦ крыс основной и контрольной 1 групп на 2,4 сутки эксперимента. Результаты цитофотометрического исследования представлены в табл. 5.4.
Как видно из таблицы, ОТП привело к появлению ядер с разнообразным количеством ДНК. Относительное количество ядер с диплоидным набором ДНК у животных основной группы существенно (р=0,04) снижалось по сравнению с нормой, а в контрольной группе, напротив, несколько увеличивалось и значимо отличалось от показателя основной группы (р=0,002). К 4 суткам эксперимента количество ядер с диплоидным набором было минимальным у крыс основной группы (р=0,0001), а в контроле преобладало (р=0,002).
Таблица 5.4
Распределение ядер гепатоцитов по содержанию ДНК (%)
Плоидность ядер |
Норма n=6 |
2 сутки |
4 сутки |
||
ОГ (n=8) |
КГ 1 (n=6) |
ОГ (n=7) |
КГ 1 (n=6) |
||
Ди-плоидные 2с |
44,4 42,5-46,3
|
40,1 38,5-41,7 p1=0.04 p3=0.002 |
48,7 46,2-51,2 p1=* |
8,0 6,9-9,1 p1=0.0001 p2=0.0001 p3=0.0001 |
63,0 61,9-64,1 p1=0.002 p2=0.01 |
Тетра-плоидные 4с |
50,0 47,2-52,8 |
33,5 31,8-35,2 p1=0.001 p3=* |
38,4 33,6-43,2 p1=0.008 |
54,0 49,7-58,3 p1=0.04 p2=0.003 p3=0.001 |
31,0 24,0-38,0 p1=0.0001 p2=0.002 |
Окта- плоидные 8с |
5,6 5,0-6,2 |
26,4 25,3-27,5 p1=0.0001 p3=0.002 |
12,9 11,7-14,1 p1=0.0001 |
38,0 37,4-38,6 p1=0.0001 p2=0.0001 p3=0.0001 |
6,0 3,8-8,2 p1=* p2=0.006 |
Примечания: значимость различий определена по критерию Манна-Уитни; * -различия незначимы (р>0,5); р1 – значимость различий показателей по сравнению с нормой; р2 - значимость различий показателей по сравнению с предыдущим в группе; р3 - значимость различий показателей в основной и контрольной группах.
В обеих исследованных группах было отмечено снижение количества тетраплоидных ядер на 2 сутки эксперимента (p<0,01), межгрупповые различия были незначимыми. К 4 суткам в основной группе отмечено существенное повышение удельного веса тетраплоидных ядер по сравнению с нормой (р=0,004), а в группе контроля этот показатель продолжал снижаться и был существенно ниже нормы (р=0,0001) и предыдущего значения (р=0,002).
Октаплоидные ядра встречались в одноядерных ГЦ основной группы на 2 сутки существенно чаще, чем в норме и в контроле (р=0,0001), между тем их количество в контрольной группе также было достоверно выше нормальных значений (р=0,001). К 4 суткам исследования удельный вес октаплоидных ядер продолжал нарастать в основной группе (р=0,0001 по сравнению со 2-ми сутками), а в контроле снижался до нормы и был существенно ниже, чем в основной группе (р=0,006).
Таким образом, при анализе содержания ДНК в ГЦ экспериментальных животных установлены 2 разнонаправленных процесса; при этом в основной группе происходит существенное нарастание октаплоидных ядер с одновременным снижением количества диплоидных и нормализацией уровня тетраплоидных ядер. В контроле отмечено закономерное повышение количества диплоидных ядер с уменьшением процентного соотношения тетра- и октаплоидных.
Резюме
В заключение главы уточним полученные результаты. Установлено, что ксеногенные эмбриональные ГЦ, пересаженные под кожу животного с индуцированной ОПН, частично выживают к 6 суткам после введения без развития перифокальной лейкоцитарной инфильтрации. Ксенотрансплантация ККП препятствует повышению массы печени, характерного для ОТП. При этом на светооптическом уровне определяется восстановление балочной структуры и предотвращение прогрессирующей жировой и гидропической дистрофии паренхимы печени. На протяжении четвертых-шестых суток эксперимента увеличивается количество неповрежденных ГЦ, а удельный вес вакуолизированных ГЦ снижается при стабильном (по сравнению с контролем) количестве непаренхиматозных фагоцитирующих клеток.
Ультраструктурные изменения ГЦ характеризуются нормализацией характеристик цитоплазмы и гранулярного ЭР, нарушение которых характерно для ОТП, а также явлениями повышенной активности ГЦ, что проявляется увеличением числа и объема митохондрий, размеров ядра.
При исследовании содержания ДНК в ядрах ГЦ обнаружено повышение митотической активности с одновременным увеличением количества клеток с октаплоидными ядрами.
Таким образом, саногенный механизм ксенотрансплантации криоконсервированной эмбриональной ККП включает в себя процессы протекции печени при ОТП и стимуляции регенераторной активности. К проявлениям защитных процессов можно отнести:
уменьшение отека органа;
сохранность балочной структуры;
уменьшение жировых включений;
преобладание неповрежденных гепатоцитов;
нормализацию объемной доли гранулярного ЭР;
нормализацию площади цитоплазмы.
Признаками стимуляции внутриклеточных регенераторных процессов в поврежденной печени являются:
увеличение количества митохондрий;
8) увеличение площади ядра;
9) увеличение количества ГЦ с октаплоидным набором ДНК.