- •2. Исторический подход в экологии. Аутэкологический подход в экологии. Популяционный подход. Биоценотическо-экосистемный подход в экологии. Эволюционный подход в экологии.
- •3.Эмпирические методы исследований. Виды экспериментов экологии.
- •4. Специфика экологических исследований животного и растительного мира. Проведение исследований на уровни особи, популяции, вида и сообщества.
- •5. Картографический метод при изучении популяций и сообществ. Обилие, относительное обилие, классы (категории) обилия по Ренконену.
- •6.Коэффициенты фаунистического и флористического сходства. Климограммы и биоклимограммы. Определение индекса климатического эффективного увлажнения, гидротермического коэффициента и т.Д.
- •7. Изучение экологической структуры сообществ. Определение общих показателей биологического разнообразия экосистем. Α-, и β-разнообразие.
- •10. Практическая значимость и области применения результатов исследований по экологии растений и животных. Области применения результатов индикации.
- •11. Изучение влияния различных экологических факторов (свет, солнечная радиация, температура, влажность, давление, скорость движения воздуха, активная реакция среды и т.Д.) на состояние растений.
- •12. Экологические преференции и степень благоприятствования (комфортности состояния).
- •13. Метод гербаризации. Описание растительных ассоциаций. Метод пробных площадей и учетных площадок.
- •14. Маршрутные методы исследования растительности. Линейная транссекта, ленточная транссекта, метод «квадрата», и т.Д.
- •16. Методики определения разных составов фитоценоза.
- •17. Методы определения вертикальной структуры фитоценоза.
- •18. Методы определения горизонтальной структуры фитоценоза. Геоботаническое картирование.
- •19. Требования к полевому опыту. Число вариантов. Повторность и повторения. Контрольный вариант.
- •20. Методы изучения биологических ритмов растений (суточных и сезонных). Исследование фотопериодическая регуляции сезонных циклов у растений..
- •21. Специальное оборудование и приборы, используемые для изучения экологии растений.
- •22. Описание травянистой растительности. Определение численности и биомассы травянистой растительности.
- •23. Описание подлеска и древостоя лесной экосистемы. Определение высоты и диаметра ствола. Численность и биомасса подлеска и древостоя.
- •24. Определение фенофазы растений.
- •25.Методы отбора проб беспозвоночных в водных экосистемах.
- •26.Методы отбора проб беспозвоночных в наземных экосистемах
- •28.Анализ проб в лаборатории. Использование оптического оборудования и фототехники.
- •29.Методы учета позвоночных животных.
- •32.Оценка размера популяции.
- •33. Изучение экологической структуры зооценозов. Экологическая ниша. Исследование стациального распределения животных.
- •34. Метод экологического профиля. Установление принадлежности вида к экологической группе.
- •35. Изучение трофической структуры зооценозов. Методы изучения трофической специализации животных в полевых и лабораторных условиях.
- •36. Исследование суточной и сезонной активности беспозвоночных и позвоночных животных. Изучение суточной активности животных при помощи актографа в лабораторных условиях.
- •37. Изучение жизненных форм животных. Определение соотношения различных жизненных форм в таксономических группах животных и зооценозах.
- •38. Использование морфометрических показателей в экологии животных
- •39. Изучение миграций животных. Картирование путей перемещения животных. Маркировка животных
- •40. Исследование различных типов и видов биотических отношений животных и растений (фитофагия, симбиотические отношения, квартиранство и т.Д.)
- •41. Специальное оборудование и приборы, используемые для изучения экологии животных
- •42. Наблюдение за жизненными циклами позвоночных
- •43. Изучение жизненных циклов насекомых и других беспозвоночных в лабораторных условиях. Влияние различных экологических факторов на развитие насекомых
- •44. Видовой состав. Видовое богатство. Учет беспозвоночных (насекомых) лесной подстилки (почвы)
- •45. Учет беспозвоночных водной экосистемы
- •46. Учет позвоночных (птиц) в лесу.
- •47. Индекс видового разнообразия Симпсона. Индекс выравненности Симпсона.
24. Определение фенофазы растений.
Растения каждого фитоценоза в определённое время находятся в различных фазах развития (фенофазах). Сравнение фенологических фаз одних и тех же видов в разных местообитания позволяет сделать выводы о том, какие условия благоприятны тому или иному виду растений.
Для обозначения фенофаз используются специальные обозначения, удобные при полевых работах, особенно когда изучается большое число объектов.
Фенофазы |
Значковые обозначения |
Вегетация до цветения |
– |
Бутонизация |
^ |
Зацветание |
) |
Полное цветение |
О |
Отцветание |
( |
Созревание семян, спор |
+ |
Семена и споры высыпаются |
# |
Вегетация после цветения и спороношения |
|
25.Методы отбора проб беспозвоночных в водных экосистемах.
Выбор точек (мест) отбора проб в реке является начальным моментом всех гидро- биологических исследований. Для этой цели выбирают наиболее типичные (средние по всем показателям) участки реки или водоема с благоприятными кислородными условиями: в при- брежной зоне и на отмелях, заросших высшей водной растительностью. Нежелательно отбирать пробы в зоне выхода подземных вод, в застойных микроучастках реки или водоема и на других неблагоприятных участках. Пробы бентоса, отобранные с глубинной части реки также нежелательны, т.к. характеризуют не столько качество воды, сколько загрязненность донных отложений, которые по химическому составу могут существенно отличаться от воды в водоеме в целом. В горных и предгорных реках наилучшим субстратом для отбора проб являются каменисто-галечниковые грунты. При их отсутствии (а также на равнинных реках) пробы необходимо отбирать с погруженных в воду макрофитов (высшей водной растительности).
Техника отбора проб. Наиболее удобным и универсальным орудием лова макрозообентоса является скребок, представляющий собой надетую на палку металлическую рамку с режущей кромкой, к которой пришит мешок из капрона. Применение скребка позволяет отбирать как качественные, так и количественные пробы со всех видов субстратов, включая такие специфические субстраты, как погруженные обросшие борта паромов, стенки гидротехнических сооружений, сваи мостов и т.п. Техника отбора проб с помощью скребка имеет ряд особенностей. Работу необходимо выполнять стоя в воде. При отборе проб на реке скребок устанавливается ниже по течению относительно субстрата, с которого ведется отбор, чтобы организмы вместе с взмученными частицами грунта или фрагментами субстрата попадали внутрь сита скребка с течением. В реке с сильным течением следует ворошить грунт ногой, продвигаясь в нем боком и располагая скребок ниже по течению. При отборе проб с густых зарослей макрофитов, следует погрузить скребок в их гущу и резкими, энергичными движениями «прокосить» заросли. После каждого отбора скребок следует вынимать из воды и содержимое осторожно выкладывать в кювету или тазик, наполнен- ный чистой водой из реки, выворачивая си- то скребка наизнанку. Всех животных, ви- димых неворуженным глазом следует собирать и пересаживать в широкогорлую банку для сбора и транспортировки проб на базу. Благодаря активным движениям даже мелкие объекты хорошо видны в белой кювете. При выполнении подобных исследований всех животных, пойманных на разных участках реки, можно объединить в одну банку.