- •Порядок проведения занятия
- •Техника безопасности
- •1. Цели занятия
- •2. Вопросы и задания для самоподготовки
- •3. Оборудование и материалы
- •4. Общие сведения
- •5. Ход работы
- •6. Литература по теме занятия
- •Содержание
- •Методы культивирования анаэробов. Выделение и культивирование сульфатвосстанавливающих бактерий
- •Дисц. «Частная микробиология и систематика микроорганизмов» Киров 2005
- •Порядок проведения занятия
- •Техника безопасности
- •1. Цели занятия
- •2. Вопросы и задания для самоподготовки
- •4. Общие сведения
- •5. Ход работы
- •6. Литература по теме занятия
- •Содержание
- •Цианобактерии. Методы исследований. Выделение. Микроскопирование. Изучение особенностей строения клеток.
- •Дисц. «Частная микробиология и систематика микроорганизмов» Киров 2005
- •Порядок проведения занятия
- •Техника безопасности
- •1. Цели занятия
- •2. Вопросы и задания для самоподготовки
- •5. Ход работы
- •6. Литература по теме занятия
- •Содержание
- •Изучение бактерий окисляющих органические вещества. Выделение уксуснокислых бактерий. Окрашивание. Микроскопия. Индикация уксусной кислоты.
- •Дисц. «Частная микробиология и систематика микроорганизмов» Киров 2005
- •Порядок проведения занятия
- •Техника безопасности
- •1. Цели занятия
- •2. Вопросы и задания для самоподготовки
- •4. Общие сведения
- •5. Ход работы
- •6. Литература по теме занятия
- •Содержание
- •Порядок проведения занятия
- •Техника безопасности
- •1. Цели занятия
- •2. Вопросы и задания для самоподготовки
- •3. Оборудование и материалы
- •Микроскоп биологический мбр-3 или аналогичный
- •Спиртовка.
- •4. Общие сведения
- •5. Ход работы
- •6. Литература по теме занятия
- •Содержание
- •Порядок проведения занятия
- •Техника безопасности
- •1. Цели занятия
- •2. Вопросы и задания для самоподготовки
- •3. Оборудование и материалы
- •4. Общие сведения
- •5. Ход работы
- •6. Литература по теме занятия
- •Содержание
- •Порядок проведения занятия
- •Техника безопасности
- •1. Цели занятия
- •2. Вопросы и задания для самоподготовки
- •5. Ход работы
- •6. Литература по теме занятия
- •Содержание
- •Выделение спорообразующих бактерий. Методы окраски спор
- •Дисц. «Частная микробиология и систематика микроорганизмов» Киров 2005
- •Порядок проведения занятия
- •Техника безопасности
- •1. Цели занятия
- •2. Вопросы и задания для самоподготовки
- •3. Оборудование и материалы
- •Микроскоп биологический мбр-3 или аналогичный
- •Спиртовка.
- •4. Общие сведения
- •5. Ход работы
- •6. Литература по теме занятия
- •Содержание
5. Ход работы
Для изучения актиномицетов рекомендуется использовать их колонии, выращенные на КАА или среде Чапека. Перетертую и просеянную навеску почвы в количестве 10 г переносят в стерильную ступку, где ее увлажняют до пастообразного состояния. добавляя 2-3 мл стерильной дистиллированной воды, растирают. После растирания почву с помощью стерильной дистиллированной воды оставшейся от 90 мл переносят в сухую стерильную колбу, получают первое разведение. Затем почвенную суспензию в колбе встряхивают в течение 5 мин, дают отстояться 30 с и далее стерильной пипеткой переносят 1 мл почвенной суспензии из колбы в пробирку с 9 мл стерильной дистиллированной воды, получают второе разведение и т.д. На агаровые пластинки в чашках Петри высевают по 1 капле или по 0,1 мл почвенной суспензии из 3—4-го разведения и тщательно растирают ее стеклянным шпателем по всей поверхности агаровой пластинке. Засеянные чашки Петри переворачивают средой вверх и помещают в термостат при температуре 28-30 оС.
Через 8—10 суток на поверхности среды вырастают колонии актиномицетов. Пробиркой с ровным краем вырезают блок среды с колонией актиномицета, переносят его на предметное стекло и микроскопируют при малом увеличении микроскопа. Составляют описание колонии.
Для приготовления прижизненного препарата часть колонии с кусочком агара переносят на второе предметное стекло в каплю 70—80%-ной уксусной кислоты или 60%-ного этанола со следами аммиака. Следует учесть, что колонии актиномицетов не смачиваются водой. Материал из колонии актиномицета распределяют препаровальными иглами, накрывают покровным стеклом и микроскопируют, пользуясь объективом ВИ-40, микроскопическую картину зарисовывают. На препарате видны обрывки мицелия и спороносные гифы.
Для изучения типа спорообразования, формы и размеров спор следует приготовить постоянные препараты — отпечатки колонии актиномицета. Для приготовления препарата-отпечатка покровное стекло плотно прижимают к поверхности колонии актиномицета. Отпечаток высушивают на воздухе, фиксируют на пламени, окрашивают фуксином или генцианвиолетом и промывают водой. Покровное стекло помещают на предметное стекло в каплю воды отпечатком вниз. Препарат микроскопируют, пользуясь объективом МИ-90. В поле зрения микроскопа хорошо видны обрывки мицелия, строение спороносцев, тип спорообразования, форма и размеры спор.
6. Литература по теме занятия
Гусев М.В., Минеева Л.А. Микробиология. - М.: Академия, 2003.
Определитель бактерий Берджи. – Под ред. Дж. Хоулта, в 2-х томах. - М.: Мир, 1997.
Асонов Н.Р. Микробиология. – М.: Колос, 2001.
Градова Н.Б., Бабусенко Е.С. Лабораторный практикум по общей микробиологии. - М.: РХТУ, 1998.
Бакулин М. К. Получение накопительных культур микроорганизмов различных таксономических групп. - Киров, 1997.
Теппер Е.З. Практикум по микробиологии: Учебное пособие для вузов.- М.: Дрофа, 2004.