- •Методические указания по физиологии растений Клетка
- •1 Явление плазмолиза и деплазмолиза
- •2 Определение сосущей силы растительных тканей методом струек (по Шардакову)
- •3 Определение осмотического потенциала клеточного сока методом Уршпунга
- •4 Зависимость набухания семян от характера запасных веществ.
- •5 Определение интенсивности транспирации и относительной транспирации весовым методом.
- •6 Значение пробки для защиты растений от потери воды
- •7 Флюоресценция и химические свойства пигментов листа.
- •Флюоресценция
- •Химические свойства пигментов
- •8 Этиолированные растения. Обнаружение фотосинтеза методом крахмальной пробы (пробы Сакса). Путь с3
- •Путь с4 Хетча и Слэка
- •Фотосинтез по типу толстянковых (сам-метаболизм; «Crassulaceae acid metabolism»)
- •9 Методы определения площади листьев
- •10 Потеря сухого вещества при прорастании семян Гликолиз и брожение
- •11 Определение интенсивности дыхания по количеству выделенного со2 (методом Бойсен-Йенсена)
- •12 Определение дыхательного коэффициента прорастающих семян Электрон-транспортная цепь на мембранах митохондрий, переводящая энергию наd-н, наd(p)-н и янтарной кислоты (сукцината) в энергию атф
- •13 Озоление растительных материалов.
- •14 Влияние солей тяжелых металлов на всхожесть и рост проростков
- •15 Антагонизм ионов
- •16 Значение листа в процессе корнеобразования
- •17 Определение зоны геотропического изгиба у корня и стебля
- •18 Задерживающее и стимулирующее действие гетероауксина на рост корней в зависимости от его концентрации
- •19 Задерживающее влияние света на рост растений
- •20 Развитие проростков пшеницы при выращивании в синем и красном спектре 2 Фоторецепция
- •Действие красного света
- •Фотопериодизм
- •Действие синего света
- •21 Определение жизнеспособности семян
- •22 Влияние высокой температуры на проницаемость цитоплазмы
- •23 Защитное действие сахара на цитоплазму при замораживании
- •24 Определение активности амилаз в прорастающих семенах (по Вольгемуту)
- •25 Обнаружение нитратов в продукции растениеводства Азот
Флюоресценция
Цель занятия: Научиться получать спиртовую вытяжку пигментов из зеленых листьев.
Материалы и оборудование: свежие или сухие листья какого-либо растения; этиловый спирт; бензин; едкий калий или натрий; соляная кислота (концентрированная); уксуснокислый цинк; ступка фарфоровая; пробирки в штативе; воронки; фильтровальная бумага; ножницы; пипетки; спиртовка; спички.
Вводные пояснения
Фотосинтез – процесс образования органических веществ из диоксида углерода и воды с использованием световой энергии. Фотосинтез происходит в хлоропластах, которые окружены двумя белково-липидными мембранами. Хлоропласт включает систему ламеллярных двойных мембран – тилакоидов, образованных внутренней мембраной. В тилакоидах осуществляется световая фаза фотосинтеза, то есть преобразование энергии световых лучей в химическую энергию молекул АТФ и НАДФ•Н2, а биохимические реакции восстановления СО2 и синтеза углеводов происходят в межтилакоидном пространстве.
В мембранах тилакоидов содержатся следующие пигменты: хлорофилл «а» – С55H72O5N4Mg – зеленый с синеватым оттенком; хлорофилл «b» –C55H70O6N4Mg – зеленый с желтоватым оттенком; каротин – С40Н56 – желто-оранжевый; ксантофилл – С40Н56О2 – золотисто-желтый. Эти пигменты не растворяются в воде, но растворяются в органических растворителях (спирте, ацетоне и др.).
По химической природе хлорофилл представляет собой сложный эфир дикарбоновой кислоты хлорофиллина и двух спиртов – метанола СН3ОН и фитола С20Н39ОН. Хлорофиллин содержит порфириновое ядро, состоящее из четырех соединенных друг с другом метановыми мостиками (= СН–) пиррольных колец. В центре порфиринового ядра расположен атом магния, соединенный с атомами азота пиррольных колец. Кроме того, в ядре молекулы хлорофиллина имеется пятое кольцо (циклопентановое), содержащее карбонильную группу. Хлорофилл «b» отличается от хлорофилла «а» лишь тем, что у второго пиррольного кольца вместо метильной группы имеется альдегидная. Благодаря атому азота, порфириновое ядро имеет гидрофильный характер и связано с белковыми молекулами мембран. Для полного извлечения хлорофилла из листьев используют спирт или ацетон, содержащие небольшое количество воды, необходимой для гидролиза хлорофилл-белкового комплекса.
Пигментная система хлоропласта представлена двумя типами пигментов: зелеными – хлорофиллами «а» и «b» и желтыми – каротиноидами. Каротиноиды – группа желтых пигментов, являющихся по химической природе тетратерпеноидами (8 остатков изопрена С5Н8). Каротины – непредельные углеводороды, содержащие два симметрично расположенных иононовых кольца, соединенных длинной углеродной цепью. Среди ксантофиллов, являющихся кислородсодержащими производными каротина, преобладает лютеин, имеющий спиртовую группу в каждом иононовом кольце.
Основным функциональным пигментом является хлорофилл «а», который, за исключением бактерий, обнаружен у всех фотосинтезирующих организмов. Именно хлорофилл «а» служит непосредственным донором энергии для фотосинтетических реакций, остальные пигменты лишь передают поглощенную ими энергию хлорофиллу «а».
Ход работы
Для получения спиртовой вытяжки необходимо 3-4 г сухих или сырых листьев растереть в фарфоровой ступке с углекислым кальцием. Растертую массу залить 10-15 мл этилового спирта, перемешать и фильтровать в пробирку через сухой бумажный фильтр. Полученная спиртовая вытяжка должна быть темно-зеленого цвета. Она представляет собой смесь пигментов – хлорофилла а (С55Н72О5N4Mg), хлорофилла б (С55Н70О6N4Mg), каротина (С40Н56) и ксантофилла (С40Н56О2) и в проходящем свете имеет ярко-зеленую окраску.
За пробирку поместить черную бумагу или какой-нибудь черный предмет и рассмотреть вытяжку в отраженном свете – она будет красного цвета, так как хлорофилл обладает способностью к флуоресценции, то есть, поглощая энергию света, он излучает ее с измененной длиной волны.
Задание 1. Сделать спиртовую вытяжку.
Задание 2. Провести опыт выявляющий способность хлорофилла к флуоресценции.
Задание 3. Поместить спиртовую вытяжку хлорофилла в колбу с притертой крышкой для дальнейшего изучения его свойств.