- •Введение
- •1. Обзор литературы
- •Подготовка материала к исследованию. Отбор проб
- •Отбор проб вегетативной массы отдельных растений
- •Отбор проб с небольших делянок
- •Отбор проб с более крупных площадей
- •1.1.4. Подготовка проб кормовых растений к анализу
- •1.2. Методы определения содержания углеводов в растениях
- •1.3. Методы определения хлорофилла в растениях
- •1.4. Методы качественного определения аскорбиновой кислоты в растениях
- •1.5. Методы качественного определения некоторых биологически активных веществ растений
- •1.5.1. Определение алкалоидов
- •1.5.2. Определение сапонинов
- •1.6. Применение стимуляторов роста растений
- •1.7. Методы определения содержания органических кислот в растениях
- •2. Материал и методика исследований
- •2.1. Объект исследования
- •2.2. Методы исследования
- •3. Результаты исследования и их обсуждение
- •3.1. Качественное определение некоторых биологически активных веществ в Eichornia crassipes
- •3.2. Определение общей кислотности Eichornia crassipes
- •Общее содержание органических кислот в
- •3.3. Влияние стимуляторов роста растений (янтарной кислоты) на содержание хлорофилла в Eichornia crassipes
- •– Без применения янтарной кислоты;
- •Определение содержания хлорофилла.
- •3.4. Влияние стимуляторов роста растений (янтарной кислоты) на содержание альдоз (глюкозы) в Eichornia crassipes
- •Результаты определения альдоз по Вильштеру и Шудлю в е. Crassipes с применением стимулятора роста (янтарная кислота).
- •Результаты определения альдоз по Вильштеру и Шудлю в е. Crassipes без применения стимулятора роста.
- •4. Выводы и практическое применение
- •5. Список использованной литературы
- •Сравнение содержания глюкозы в е. Crassipes с применением янтарной кислоты и без нее
1.3. Методы определения хлорофилла в растениях
Под названием хромопротеиды объединяют все цветные белки. Типичным представителем хромопротеидов является гемоглобин крови. Сходным по структуре с гемом гемоглобина крови и других сложных белков (ферментов) является хлорофилл растений, который связан также с белком.
Хлорофилл принадлежит к группе жирорастворимых пигментов, он растворяется в жирах и органических растворителях. Хлорофилл, как показали работы К. А. Тимирязева и его последователей, играет огромную роль в процессе ассимиляции углекислого газа. Процесс фотосинтеза представляет собой окислительно-восстановительное взаимодействие углекислого газа и воды, идущее в присутствии хлорофилла, который поглощает энергию солнечных лучей. Фотосинтез настоящее время является главным источником образования органических веществ на Земле.
К. П. Петров в своей работе «Методы биохимического анализа сырья» приводит метод определения хлорофилла по Т. Н. Годневу. Данный способ анализа заключается в выделении хлорофилла из зеленой части растения 96%-ным раствором этилового спирта и измерении оптической плотности вытяжки [17].
Также количественно хлорофилл можно определить с помощью методов хроматографии (по Сапожникову). Разделение смеси пигментов основывается на селективной абсорбции фильтровальной бумаги. Когда по бумаге под действием капиллярных сил движется раствор, молекулы его разделяются на две фазы в соответствии с их коэффициентом разделения (подвижная и неподвижная фазы).
Чем больше растворимость пигмента в мобильной фазе, тем дальше он продвинется по хроматографической бумаге вместе с растворителем. В ходе исследования проводят такие операции, как экстракция, извлечение, элюация и количественное определение пигмента [4, 18].
В некоторых источниках подробно описывается спектрофотометрический метод количественного измерения этого хромопротеида. Спектрофотометрический анализ — наиболее точный количественный метод определения содержания пигментов листа. Как и на фотоэлектроколориметре, концентрация пигментов на спектрофотометре определяется по оптической плотности. Однако в отличие от первого спектрофотометр позволяет выполнять анализ смесей веществ с близкими максимумами поглощения, что достигается за счет использования монохроматора, вследствие чего удается установить содержание хлороиллов и каротиноидов в вытяжке без предварительного разделения. Плотность экстракта на спектрофотометре измеряют при длинах волн, соответствующих максимумам поглощения хлорофиллов а и b в красной области спектра и при длине волны абсорбционного максимума каротиноидов. При этом учитывают, что положение максимума поглощения несколько меняется в зависимости от используемого растворителя. Концентрацию пигментов рассчитывают по уравнениям [4, 23].
Достаточно эффективно и удобно определение концентрации хлорофилла на фотоэлектроколориметре (ФЭКе). Для установления концентрации окрашенных растворов на фотоэлектроколориметре измеряют разность силы электрических токов, возникающих между двумя фотоэлементами в результате неодинаковой интенсивности световых потоков, прошедших через растворитель и раствор [4, 23].