- •Лабораторная работа № 2
- •Методические указания.
- •Методика приготовления неокрашенных препаратов.
- •Методика приготовления препаратов с прижизненной (витальной) окраской.
- •Фиксированные окрашенные препараты
- •Выполнение работы
- •Техника микроскопирования неокрашенных и окрашенных препаратов.
- •Оформление отчета
- •Контрольные вопросы
Методика приготовления препаратов с прижизненной (витальной) окраской.
Для приготовления препарата дрожжей или бактерий с прижизненной (витальной) окраской клеток на предметное стекло наносят крупную каплю суспензии микроорганизмов (как для приготовления препарата «раздавленная капля») и в эту каплю вносят небольшую каплю метиленового голубого по Лефлеру или каплю фуксина Пфейфера. Затем петлей или пипеткой краску перемешивают с суспензией микроорганизмов, кладут на эту каплю покровное стекло и слегка его придавливают. Получают «раздавленную каплю» живых окрашенных микробов, которую микроскопируют так же, как и обычную «раздавленную каплю». В окрашенном виде клетки микробов видны более ясно и четко, чем в неокрашенном, при этом мертвые клетки окрашиваются быстро и хорошо, в результате нарушения клеточной мембраны а живые — плохо пропускают краску через мембрану.
Фиксированные окрашенные препараты
Для приготовления фиксированного препарата покровное стекло не используется. Из капли с внесенной культурой готовят мазок, равномерно размазывая ее петлей или краем покровного стекла на площади 2--4 см . Мазок просушивают на воздухе или слегка нагревая в струе теплого воздуха высоко над пламенем горелки, держа стекло мазком вверх. Нельзя перегревать мазок - клетки микроорганизмов могут деформироваться! Хорошо приготовленный мазок должен после сушки выглядеть на предметном стекле как едва заметный налет.
Фиксация препарата. Высушенный препарат фиксируют.
Цель фиксации: 1) быстро убить микроорганизмы (при медленной гибели клеток синтезируются автолитические ферменты, приводящие к появлению артефактных структур), 2) обеспечить лучшее прилипание препарата к стеклу, предохранив его тем самым от смывания, 3) сделать мазок более восприимчивым к окраске, так как у мертвых клеток нарушена целостность мембран, и, в результате, они прокрашиваются лучше живых.
Для исследования тонкого строения клетки обычно применяют фиксацию различными химическими веществами. Фиксирующую жидкость наносят на мазок, или препарат погружают в фиксатор. Время фиксации зависит от природы используемого вещества. Например, для фиксации препаратов метиловым спиртом или ацетоном достаточно 5 минут, а время фиксирующего воздействия этилового спирта 15-20 минут. Широкое применение в качестве фиксаторов нашли альдегиды, особенно формальдегид и глутаровый альдегид. Для фиксации липидов используется четырехокись осмия (О5О4). После окончания химической фиксации препарат следует осторожно промыть водой.
При исследовании морфологии клеток наиболее часто используется фиксация высокой температурой. Для этого предметное стекло захватывают металлическим пинцетом мазком вверх и три раза проводят через пламя горелки в верхней его части. Приступать к окраске препарата можно через несколько минут, когда стекло с препаратом остынет.
Окраска препарата. Существуют позитивный и негативный способы окраски препаратов. При позитивном способе окраски краситель проникает в клетки микроорганизмов, окрашивая их. При негативном контрастировании краситель заполняет пространство, окружающее клетки, в результате чего микроорганизмы выглядят как светлые частицы на равномерно окрашенном поле. Для простого позитивного окрашивания клеток микроорганизмов чаще всего пользуются анилиновыми красителями: фуксином, генцианвиолетом, метиленовым синим.
Фиксированный препарат помещают на параллельные стеклянные рейки, лежащие на стенках кюветы, и наносят на стекло из пипетки раствор выбранного красителя таким образом, чтобы красителем был покрыт весь мазок. Выдерживают 1-3 минуты, а затем осторожно промывают водой и высушивают, слегка промокая фильтровальной бумагой. Ни в коем случае нельзя тереть бумагой приготовленный препарат во избежание его повреждения.