- •Химия окружающей среды
- •Химия окружающей среды
- •Оглавление
- •Введение
- •Состав атмосферы вблизи земной поверхности
- •Порядок выполнения работы
- •Порядок выполнения работы:
- •Требования к отчету
- •Лабораторная работа № 3 Определение концентрации аммиака в воздухе помещения
- •Порядок выполнения работы
- •Требования к отчету
- •Вопросы для самоподготовки
- •II. Химия гидросферы Лабораторная работа № 4 Определение рН, кислотности и щелочности воды
- •Порядок выполнения работы
- •Требования к отчету
- •Лабораторная работа № 5 Определение сухого и прокаленного остатков и жесткости воды
- •Порядок выполнения работы
- •Требования к отчету
- •Лабораторная работа № 6 Определение содержания анионов в поверхностных водах
- •Порядок выполнения работы
- •Требования к отчету
- •Лабораторная работа № 7 Определение окисляемости природных вод
- •Порядок выполнения работы
- •Требования к отчету
- •Вопросы для самоподготовки
- •III. Химия литосферы Лабораторная работа № 8 Катионообменная способность почв
- •Порядок выполнения работы
- •Требования к отчету
- •Лабораторная работа № 9 Определение содержания в почве подвижного алюминия
- •Порядок выполнения работы
- •Требования к отчету
- •Лабораторная работа № 10 Определение содержания гумусовых веществ в почве
- •Порядок выполнения работы
- •Требования к отчету
- •Лабораторная работа № 11 Определение нитрифицирующей способности почвы
- •Порядок выполнения работы
- •Требования к отчету
- •Лабораторная работа № 12
- •Определение содержания сероводорода в почве,
- •Загрязненной нефтепродуктами
- •Порядок выполнения работы
- •Вопросы для самоподготовки
- •IV. Миграции элементов и соединений в биосфере Лабораторная работа № 13 Исследование фотосинтезирующей деятельности высших растений
- •Последовательные стадии фотосинтеза
- •Порядок выполнения работы
- •Требования к отчету
- •Лабораторная работа 14 Изучение влияния токсичных соединений на фотосинтез водорослей
- •Порядок выполнения работы
- •Требования к отчету
- •Вопросы для самоподготовки
- •Лабораторная работа № 15 Определение содержания нитратов в растительных объектах
- •Порядок выполнения работы
- •Требования к отчету
- •Санитарно-гигиенические нормы и допустимые уровни нитратов в растительных продуктах
- •Вопросы для самоподготовки
- •Лабораторная работа № 16 Оценка радиоактивности объектов окружающей среды
- •Основные величины и единицы измерения ионизирующего излучения
- •Порядок выполнения работы
- •Требования к отчету
- •Вопросы для самоподготовки
- •Лабораторная работа № 17 Уменьшение содержания хлорофилла в листьях растений – биоиндикационный признак неблагоприятных условий среды
- •Порядок выполнения работы
- •Требования к отчету
- •Результаты анализа
- •Вопросы для самоподготовки
- •Характеристика индикаторов
- •Важнейшие индикаторы
- •Распределение нитратов в растениях, мг/кг сырой массы
- •Величины хпк, бпк5 и рН в водоемах с различной степенью загрязненности
- •Накопление радионуклидов в биологических объектах
- •Основные термины и определения
- •Библиографический список
- •Химия окружающей среды
- •280201 – Охрана окружающей среды и рациональное
- •308012, Г. Белгород, ул. Костюкова, 46
Порядок выполнения работы
Метод основан на извлечении хлорофилла из листьев растворителями (спирт, ацетон) и определении его количества на фотоэлектроколориметре или спектрофотометре. При работе с сухим материалом берут навеску 0,5-1 г, со свежим – 1-2 г. Навеску растительного материала (исключая жилки) тщательно измельчают в фарфоровой ступке с битым стеклом. Извлечение хлорофилла из сухого материала можно производить 90%-ным спиртом или 80-85%-ным ацетоном, а из свежего – 96-98%-ным спиртом или абсолютным ацетоном. К растертому растительному материалу прибавляют немного растворителя и материал продолжают растирать вместе с растворителем.
Жидкость из ступки сливают в колбу объемом 50 см3. В ступку приливают 4-5 мл растворителя и вновь растирают в течение минуты, затем опять сливают в колбу. Эту манипуляцию повторяют 2-3 раза. Ступку ополаскивают несколько раз растворителем, выливая его в колбу. Промывание ведут до тех пор, пока стекающий раствор не станет бесцветным. Затем экстракт переносят в «пальчики» центрифуги и центрифугируют в течение 5 минут при 3000 об./сек. После чего надосадочную жидкость переносят в колбу на 100 см3 и вытяжку доводят до черты растворителем. Колориметрирование раствора производят на ФЭКе с красным светофильтром. Если жидкость окрашена в интенсивно зеленый цвет, ее необходимо разбавить, так как при больших концентрациях величины на ФЭКе могут выходить за пределы разрешающей способности прибора.
Для пересчета хлорофилла на стандартные величины используют раствор Гетри, который готовится следующим образом: в мерную колбу емкостью 100 мл точно отмеривают растворы (1%-ный раствор CuSO4·5Н2О – 28,5 мл, 2%-ный раствор К2Сг207 – 50 мл, 7%-ный раствор NH4ОH – 10 мл), доводят дистиллированной водой до метки и перемешивают. Раствор Гетри по окраске колориметрически эквивалентен раствору кристаллического хлорофилла по содержанию последнего 85 г/л.
Методом разбавления стандартного раствора строят калибровочную кривую, где по оси абсцисс откладывают содержание хлорофилла (мг/л), а по оси ординат – оптическую плотность. Калибровочную кривую строят от концентрации 0,085 мг/л (1 мл исходного раствора и 99 мл воды) до 0,85 мг/л (10 мл исходного раствора и 90 мл воды). Измерения на ФЭКе производят несколько раз, затем вычисляют среднее.
Требования к отчету
По полученным данным определяют концентрацию хлорофилла в опытных образцах по калибровочной кривой. Затем вычисляют количество хлорофилла в мг/г листа (по сырой или сухой массе). В насаждениях сосны оно колеблется от 0,08 до 0,14 мг/г. Можно также выразить количество хлорофилла в процентах (0,3-1,3% абсолютно сухой массы листа). Схема записи результатов анализов приведена ниже (табл. 5).
Таблица 5
Результаты анализа
Опыт |
Навеска, мг |
Объем вытяжки, мл |
Показания ФЭКа |
Количество хлорофилла по калибровочной кривой, мг/100 мл |
Содержание хлорофилла в листьях |
||
мг/г |
% |
||||||
|
|
|
|
|
|
|
|