- •50. Применение спектрофотометрии в точной колориметрии.
- •51. Спектрофлуориметрия. Природа флуоресцентных спектров. Особенности флуориметра.
- •52. Преимущества и недостатки флуориметрии по сравнению со спектрофотометрией.
- •53. Применение спектрофлуориметрии. Качественный анализ и количественный.
- •54. Флуоресцентные методы анализа структуры белоксодержащих комплексов.
- •55. Инфракрасная спектроскопия. Особенности ик-спектрометра. Источники света и ик-спектроскопия. Монохроматоры и детекторы.
- •56. Качественный анализ: идентификация веществ и расшифровка структуры.
50. Применение спектрофотометрии в точной колориметрии.
Основное применение спектрофотометров в лаборатории — точная колориметрия, т. е. измерение количества хромофора, образующегося в ходе реакции. Многие соединения, слабо поглощающие в видимой области, после реакции с другими веществами дают окрашенные продукты, количество которых однозначно связано с концентрацией исходного вещества. Такую цветную реакцию используют для обнаружения этих веществ. При некоторых стандартных условиях и определенных концентрациях вещества проводят реакцию, а затем измеряют поглощение смеси. В качестве сравнения используют ту же смесь, но без исследуемого вещества. При помощи этого контрольного образца изменением щели устанавливают нулевое значение экстинкции. После ряда измерений строят график зависимости поглощения образца от концентрации исследуемого вещества. Теперь, когда нужно определить количество вещества, в стандартных условиях проводят реакцию, измеряют поглощение образца и по градуировочной кривой определяют концентрацию исходного вещества. В биохимии этот способ применяется довольно часто, поскольку во многих случаях удается подобрать такие реакции, когда незначительные количества вещества дают сильное окрашивание.При их проведении необходимо помнить следующее.
1. Измерение поглощения следует проводить в дополнительной для цветной реакции области спектра. Так, если при реакции раствор окрашивается в желтый цвет, нужно измерять поглощение этим раствором синего света.
2. Исследовать цветную реакцию лучше всего в максимуме поглощения — этим достигается наибольшая чувствительность. Если положение максимума неизвестно, его следует определить. Такие предосторожности гарантируют получение хороших результатов даже на малочувствительном приборе.
3. В кювете с контрольным раствором обязательно должны содержаться все компоненты, кроме исследуемого вещества.
4. Контрольный раствор должен быть приготовлен очень тщательно, поскольку от этого зависит получение правильных результатов.
5. Если зависимость линейна, для получения хорошей градуи- ровочной кривой нужно не менее пяти точек. Для нелинейной кривой их нужно существенно больше. Построение градуировочной кривой позволяет исключить точки, поглощение для которых получено ошибочно.
6. Измерение концентрации необходимо проводить дважды, и на кривую наносить оба значения, а не их среднюю величину. Такой способ построения наглядно показывает точность определения концентрации по полученной градуировочной кривой. Кроме того, он позволяет сразу обнаружить неправильные измерения по их сильному отклонению от кривой.
7. Калибровочные кривые, полученные с реагентами разных партий, как правило, не совпадают. Поэтому при смене реагента градуировочную кривую надо получить заново.
8. Наилучшая кривая, проведенная по всем экспериментальным точкам, не обязательно должна точно проходить через нуль. Это связано с тем, что для поглощающего контрольного раствора практически невозможно получить точно такое же соотношение всех компонентов, как для образца.