- •Глава 1. Вступ до генетики поведінки тварин.
- •Глава 7. Феногенетика поведінки птахів.
- •Глава 8. Генетика поведінки ссавців.
- •Глава 1. Вступ до генетики поведінки тварин.
- •Варіант батареї тестів для фенотипування тварин
- •Глава 2. Шляхи реалізації генетичної інформації на рівні поведінки.
- •2.1. Генетика морфологічних особливостей нервової системи та їх зв'язок з мінливістю ознак поведінки.
- •2.2. Зв'язок поведінки з деякими біохімічними показниками.
- •2.3. Гормональна регуляція мінливості ознак поведінки та ендокринологічна генетика.
- •Глава 3. Генетика поведінки бактерій.
- •3.1. Генетичні засади соціальної поведінки бактерій.
- •3.2. Генетика хемотаксису бактерій.
- •3.3. Самоідентифікація та взаємне упізнавання бактерій.
- •Глава 4. Генетика поведінки одноклітинних тварин.
- •4.1. Особливості поведінки одноклітинних тварин.
- •4.2. Генетика поведінки інфузорій.
- •4.3. Генетика поведінки Dictyostelium discoideum.
- •Глава 5. Генетика поведінки безхребетних тварин.
- •5.1. Генетика поведінки круглих черв’яків.
- •5.2. Генетика поведінки молюсків.
- •5.3. Генетика поведінки комах.
- •5.3.1. Комахи як об’єкт генетики поведінки.
- •5.3.2. Вплив окремих генів на поведінку комах.
- •5.3.3. Деякі аспекти генетики поведінки суспільних комах.
- •5.3.4. Генетичні засади нейрогуморальної регуляції поведінки комах.
- •5.3.5. Еволюційні аспекти поведінки комах.
- •Глава 6. Генетика поведінки дрозофіли.
- •6.1. Історія вивчення поведінкових мутацій дрозофіли.
- •6.2. Зорові мутації дрозофіли.
- •6.3. Мутації рухової системи в дрозофіли.
- •6.4. Температурочутливі мутації в дрозофіли
- •6.5. Мутації, що порушують циркадні ритми в дрозофіли
- •6.6. Мутації, що змінюють статеву поведінку дрозофіли.
- •6.7. Використання мозаїків для виявлення структур, що порушені при поведінкових мутаціях.
- •6.8. Метод локалізації фокуса дії мутації на карті презумптивних органів дрозофіли.
- •6.9. Селекційно-генетичний метод в аналізі поведінки дрозофіли.
- •Глава 7. Феногенетика поведінки птахів.
- •7.1. Птахи як об'єкт генетичного аналізу поведінки.
- •7.2. Середовищна модифікація деяких форм уродженої поведінки птахів.
- •7.3. Імпринтинг і його роль у постнатальному онтогенезі виводкових птахів.
- •7.4. Гібридологічний аналіз поведінки птахів.
- •7.5. Окремі гени й ознаки поведінки птахів.
- •7.6. Еволюційна модифікація поведінки птахів.
- •Глава 8. Генетика поведінки ссавців.
- •8.1. Генетика поведінки собак.
- •8.2. Генетика поведінки гризунів.
- •8.3. Генетика поведінки кішок.
- •Таблиця ___ Типи спадкування деяких ознак і аномалій у кішок
- •8.4. Генетика поведінки коней і великої рогатої худоби.
- •8.5. Генетика поведінки лис.
6.4. Температурочутливі мутації в дрозофіли
На початку 70-х років ХХ століття Д. Сузуки і його група почали вивчати температурочутливі мутації, що викликають параліч. Завдяки ефективній системі добору мутантів ученим за порівняно короткий строк вдалося випробувати багато сотень тисяч особин і одержати досить представницьку вибірку індукованих етилметансульфонатом зчеплених зі статтю мутацій. При випробуванні на алелізм ці мутації розподілилися по декількох локусах у Х-хромосомі, з яких найбільший інтерес представили три: paralytic ts, shibire ts і stoned. Індекс ts указує на температурочутливість мутацій у цих локусах, що виражається в тому, що при температурах понад 29°С мутантні особини впадають у стан паралічу.
Мутанти по локусу shibire ts (shi ts) відрізняються швидкою й сильною реакцією на дію високої температури. При перенесенні їх у температуру 29°С вони впадають у параліч у перші 2 хв і, не виходячи із цього стану, через 12 годин гинуть. Ряд алелів shits обумовлюють температурочутливість на всіх стадіях розвитку — від яйця до імаго.
Вплив підвищеною температурою в певні моменти розвитку (чутливі періоди) призводить до характерних фенотипових дефектів очей, крил, лапок і щетинок.
Про нейрологічну природі мутантів shits свідчать досліди по застосуванню нейротоксина ТТХ (тетродотоксин). При температурі 22°С мухи shitsl виявляють стійкість до ТТХ в 3 рази більшу, ніж мухи дикого типу. Ін'єкція ТТХ безпосередньо в голову впливає на ЕРГ нормальних мух, а на мух shits не впливає. Оскільки ТТХ специфічно блокує натрієвий канал при виникненні потенціалів дії, Л. Келлі припустив, що мутації в локусі shits змінюють компоненти даного механізму.
Л. Зондергаард одержав за допомогою ЕМС чутливу до зниженої температури зчеплену зі статтю домінантну мутацію Ocdts. Уже при температурі 18°С дана мутація викликає гальмування активності й параліч, подібно тому, як це відбувається в мух дикого типу при температурі 8°С й нижче. Один з ефектів мутантного гена Ocdts полягає в підвищенні енергії активації мітохондріальної сукцинатцитохромредуктази при температурі нижче 180С.
О. Сіддікі й С. Бензер інидукували дві паралітичні мутації в локусі comatosets. Мутанти comts, крім чутливості до високої температури, подібно до мутантів parats виявилися чутливими також до знижених температур. Параліч у них наступає при зниженні температури до 12—10°С.
Порівняння електрофізіологічних параметрів мускулатури, що бере участь у забезпеченні польоту, при внутрішньоклітинному відведенні мембранних потенціалів у мутантів parats, shits і comts виявило чіткі відмінності між ними, що свідчать про різний характер генетично контрольованих ушкоджень.
6.5. Мутації, що порушують циркадні ритми в дрозофіли
Для мух дикого типу D. melanogaster характерна закономірна циклічність життєвих процесів, таких як час виходу імаго з лялечок або добова рухова активність дорослих особин. У їхній основі лежить генетично контрольований ендогенний ритм нейросекреторної і гормональної активності, що здійснюється в природніх умовах при чергуванні періодів темряви й світла.
В умовах 12-годинного світлового дня більшість мух лупиться на зорі, у перші години ранку. Цей ритм зберігається навіть в умовах постійної темряви, якщо лялечки коли-небудь зазнали впливу світла.
Морфологічні мутації L4 і G1, що призводять до порушення оптичних ділянок, водночас збивають і нормальні циркадні ритми.
У лабораторії С. Бензера при впливі ЕМС (етилметансульфонат) отримано три зчеплені зі статтю рецесивні мутації, що змінюють добову циклічність виходу імаго: per0, pers, perL. Усі три мутації локалізовані на короткій ділянці Х-хромосоми. Мутація null-period-arhythmic (per0) обумовлює більш-менш рівномірний розподіл частот виходу імаго протягом доби. Мутація short-period (pers) контролює цілком чіткий ритм, але не при 24-годинному, а при 19-годинному циклі. Нарешті, мутація long-period (perl) подовжує цикл виходу імаго до 28 годин.
Усі розглянуті мутації одночасно впливають на рухову активність дорослих мух.