- •Исследование каталитических свойств протеолитических ферментов
- •Исследование зависимости скорости ферментативной реакции от времени
- •Исследование зависимости активности фермента от
- •Исследование влиянии ингибитора металлопротеииаз на активность ферментного препарата
- •Техника безопасности
- •Лабораторная работа № 2 солевое фракционирование белков
- •Ход работы
- •Получение клеточного экстракта дрожжей
- •Фракционирование клеточного экстракта
- •Обработ ка экспериментальных данных
- •Техника безопасности
- •Разделение белков методом ионообменной хроматографии
- •Подготовка сорбента
- •Заполнение колонки и внесение образца
- •Элюция белков с колонки
- •Регенерация колонки
- •Обработка экспериментальных данных
- •Техника безопасности
- •Определение молекулярной массы белка методом гель-хроматографии
- •I лкие компоненты не проникаюл в фанулы гелевой фазы и выхолят из колонки первыми. Более мелкие молекулы, способные проникать внутрь
- •Заиолнс'ние колонки
- •Определение объемов элюции калибровочных белков
- •Определение объема элюции исследуемого белка
- •Техника безопасности
Ход работы
Получение клеточного экстракта дрожжей
Цитохром Р45о является внутриклеточным белком. Чтобы его выделить, необходимо разрушить клетки. Для этого клетки дрожжей, отмытые от среды, тщательно растирают в ступке с кварцевым песком, после чего экстрагируют белки дистиллированной водой (из расчета 5 мл воды на 1 г сырой биомассы).
Неразрушенные клетки и осколки клеточных стенок удаляют центрифугированием при 14 тыс. об/мин в течение 15 мин.
В полученном клеточном экстракте определяют концентрацию общего белка и концентрацию иитохрома Р4?о.
Для выполнения работы но фракционированию белков достаточно знать концентрацию белков в условных единицах, например, в единицах оптической плотности. Поэтому концентрацию общего белка и цигохрома Р45о можно определить спектрофотометрически, измеряя оптическую плотность клеточных экстрактов при длинах волн 280 нм (соответствует максимуму поглощения пептидных связей белков! и 450 нм (соответствует максим\му Hoi лощения железопорфирина в цитохромс Р,5„).
Фракционирование клеточного экстракта
Фракционирование производят в соответствии со схемой, представленной на рис. 3.
Клеточный Измерить:
Экстракт объем. ОДгяо- ОД450
Осажление
сульфатом аммония. 25% насыщения
Центрифуги
рование
г~
Осадок 1
Раствор 1
Измерить:
ОД280, O/Uso
■ Супернатант 1
Осаждение сульфатом аммония. 50% |
. 11ентпиг1ши- |
|
|
|рование |
|
насыщения |
|
•1_ |
Осадок 2■
Раствор 2
Изменить:
ОДгво, О/Ьяо
Супернатант 2
|
Центрифуги рование |
|
том аммония. 75% 1 |
||
насыщения |
|
|
Осадок
3
Измерить:
ОД:»п, ОД 4м|
Супернатаит3
Рис. 3. Схема фракционирования клеточных экстрактов дрожжей
а) К полученному клеточному экстракту добавляют сульфат аммония до 25% насыщения. Тщательно перемешивают и оставляют на 10 ми- нут(формирование осадка). Образовавшийся осадок белков отделяют центрифугированием при 6-8 тыс. об/мин в течение 10 минут. Полученный осадок 1 растворяют в 5 мл дистиллированной воды и измеряют в этом растворе концентрацию цитохрома Р450 и концентрацию общего белка. Значения ОД450 и ОД28о с учетом возможных разведений записывают в таблице .
б) К супернатанту I добавляют сульфат аммония до 50%-ного насыщения и отделяют белки как написано в п.1. Осадок 2 белка растворяют в 5 мл. Измеряют концентрацию цитохрома Р4*, и общего белка. Полученные данные вносят в табл. I.
в) Проводят дальнейшее фракционирование супернатанта 2 при 75%-ном насыщении сульфата аммония.
Полученный осадок 3 растворяют в 5 мл дистиллированной воды и измеряют концентрацию цитохрома P4s,i и общего белка. Данные записывают в табл. .
Результаты фракционирования экстракта
и
1»
с- ! — 2-
4
о
Ю ^
о
<L>
о
Е
с-
й
5
x.-i
Стадия
очистки
i Получение клеточного экстракта
1 Получение осалка 1 : Получение осадка 2 Получение осадка 3