- •Министерство здравоохранения рф
- •Оглавление
- •Тема 1. Морфология микроорганизмов. Микроскопический метод исследования микроорганизмов. Простые и сложные методы окраски бактерий Перечень конкретных учебно-целевых вопросов
- •Информация к занятию Этапы развития микробиологии
- •Предмет и задачи медицинской микробиологии.
- •Организация работы и оборудование микробиологической лаборатории, правила работы в ней.
- •Аппаратура, используемая в микробиологической лаборатории:
- •Устройство светового микроскопа. Сущность и техника иммерсионной микроскопии. Правила работы с микроскопом.
- •Морфология бактерий
- •Самостоятельная работа студентов
- •Правила работы в микробиологических лабораториях.
- •3. Освоение техники микроскопии с иммерсионным объективом:
- •Разрешающая способность иммерсионного микроскопа – 0,2-0,4 мкм.
- •5. Освоение техники приготовления мазка из агаровой культуры бактерий и окраски его простым способом.
- •Педиатрические аспекты
- •Тема 2. Морфология микроорганизмов. Структура бактериальной клетки Перечень конкретных учебно-целевых вопросов
- •Информация к занятию
- •Самостоятельная работа студентов
- •Тема 3. Морфология и классификация бактерий, спирохет, риккетсий, хламидий, микоплазм и актиномицетов.
- •Перечень конкретных учебно-целевых вопросов
- •Информация к занятию
- •Методы микроскопического исследования
- •Самостоятельная работа студентов
- •3. Выявление подвижности протея методом «раздавленной капли».
- •Информация к занятию
- •Самостоятельная работа студентов
- •2. Знакомство с методами асептики, антисептики, дезинфекции и стерилизации.
- •Тема 5. Физиология бактерий. Дыхание и размножение бактерий. Методы культивирования аэробов и анаэробов Перечень конкретных учебно-целевых вопросов
- •Рост и размножение микроорганизмов.
- •Дыхание бактерий
- •Самостоятельная работа студентов
- •2. Выделение чистой культуры анаэробных бактерий из почвы (демонстрация):
- •Тема 6.Физиология бактерий. Ферменты бактерий. Выделение чистых культур аэробных и анаэробных бактерий Перечень конкретных учебно-целевых вопросов
- •Информация к занятию Ферменты бактерий и методы их определения
- •Самостоятельная работа студентов
- •Тема 7. Ферменты бактерий. Бактериологический метод исследования. Итоговое занятие по теме "морфология и физиология микробов» Самостоятельная работа студентов.
- •Тема 8. Вирусы бактерий (бактериофаги) Перечень конкретных учебно-целевых вопросов
- •Информация к занятию
- •Самостоятельная работа студентов
- •Тема 9. Генетика микроооганизмов. Перечень конкретных учебно-целевых вопросов
- •Информация к занятию
- •Самостоятельная работа студентов
- •Тема 10. Экология микроорганизмов. Микр0флора организма человека. Микробиологические основы химиотерапии инфекционных болезней. Перечень конкретных учебно-целевых вопросов
- •Информация к занятию
- •Самостоятельная работа студентов
- •Педиатрические аспекты темы
- •Тема 11. Экология микроорганизмов. Микробиология воды, воздуха, почвы, пищевых продуктов Перечень конкретных учебно-целевых вопросов
- •Информация к занятию Распространение микробов в природе
- •Самостоятельная работа студентов
- •Самостоятельная работа студентов
- •Педиатрические аспекты темы
- •Тема 12. Учение об инфекции. Факторы патогенности бактерий. Роль макроорганизма, внешней среды и социальных условий в развитии инфекции. Формы инфекции Перечень конкретных учебно-целевых вопросов
- •Информация к занятию
- •Самостоятельная работа студентов
- •1. Освоение основных способов заражения лабораторных животных:
- •2. Изучение факторов патогенности микробов на примере St.Aureus.
- •Самостоятельная работа студентов.
- •Педиатрические аспекты темы
- •Тема 13. Учение об иммунитете. Виды иммунитета. Неспецифическая резистентность. Серологические реакции Перечень конкретных учебно-целевых вопросов
- •Информация к занятию
- •Самостоятельная работа студентов
- •Педиатрические аспекты темы
- •Тема 14. Учение об иммунитете. Серологические реакции. Антигены и их характеристика. Перечень конкретных учебно-целевых вопросов
- •Информация к занятию
- •Самостоятельная работа студентов
- •Педиатрические аспекты темы
- •Тема 15. Учение об иммунитете. Клетки иммунной системы. Иммунный статус организма человека и методы его оценки. Современные иммунологические методы Перечень конкретных учебно-целевых вопросов
- •Информация к занятию
- •Методы оценки иммунного статуса организма человека.
- •Самостоятельная работа студентов
- •Педиатрические аспекты темы
- •Тема 16. Учение об иммунитете. Специфическая профилактика и лечение инфекционных заболеваний. Диагностические биопрепараты. Аллергены Перечень конкретных учебно-целевых вопросов
- •Информация к занятию Медицинские иммунобиологические препараты для профилактики и лечения инфекционных болезней
- •Иммунные сыворотки и иммуноглобулины
- •Самостоятельная работа студентов
- •Педиатрические аспекты темы
- •Тема 17. Учение об инфекции и иммунитете. Практические аспекты иммунологии. Контрольное занятие (тестовый контроль и устное собеседование) Рекомендуемая литература
Самостоятельная работа студентов
1. Освоение основных способов заражения лабораторных животных:
а). Подкожное введение. Двумя пальцами левой руки поднимают кожу в области спины и в образовавшуюся складку правой рукой вкалывают иглу шприца, отклоняют ее в сторону и медленно вводят материал в объеме 0,5 мл. Складку кожи отпускают, на место инъекции накладывают ватный тампон, смоченный дезинфицирующим раствором, быстро вынимают иглу шприца.
б). Внутримышечное введение. Иглу шприца вводят в толщу мышщ задней лапки, направляют под тупым углом к поверхности мышцы. Вводят 0,2 мл исследуемого материала.
в). Внутрибрюшинное введение. Мышей держат головой вниз, чтобы кишечник сместился книзу от места инъекции. Производится прокол брюшной стенки в подвздошой области, при этом ощущают провал иглы в брюшную полость. Медленно вводят 0,5 мл заразного материала.
2. Изучение факторов патогенности микробов на примере St.Aureus.
а). Гемолизин. Произведен посев культуры стафилококка на кровяной МПА. Гемолизин определяют по образованию зон разрушения эритроцитов вокруг колоний.
б). Плазмокоагулаза. Чистая культура стафилококка внесена в 1 мл стерильной плазмы крови. Реакция учитывается после инкубации при 370С в течение 2 часов. При наличии у штамма стафилококка плазмокоагулазы наблюдается коагуляция плазмы.
в). Дермонекротоксин. Кролику внутрикожно вводят 0,2 мл 2х-миллиардной взвеси стафилококка. При наличии некротоксина на месте инъекции образуется инфильтрат с последующим некрозом ткани.
3. Освоение биологического метода диагностики.Выполнить биопробу с целью диагностики инфекционного заболевания. Исследуемый материал введен белой мыши внутрибрюшинно в объеме 0,5 мл. Провести вскрытие и бактериологическое исследование трупа белой мыши, павшей от экспериментальной инфекции.
Способы введения исследуемого материала животным могут быть следующими: подкожный, внутрикожный, накожный, внутримышечный, внутрибрюшинный, внутривенный, пероральный (через рот), иптраназальный (через нос), интрацеребральный (в мозг) и др.
Подкожный способ введения. Кроликам материал вводят под кожу спины или другой части тела, морским свинкам - под кожу живота или бока, мышам и крысам - под кожу спины или затылка.
Для подкожного введения кожу в месте введения предварительно освобождают ножницами от волос и смазывают дезинфицирующим раствором, затем захватывают двумя пальцами руки и у основания образовавшейся складки вкалывают иглу шприца, медленно вводят ее до половины, чуть отклоняя в сторону, чтобы не вылился вводимый материал. Затем складку кожи отпускают накладывают на иглу вату, смоченную спиртом или йодной настойкой, и быстро вынимают иглу.
Впутржожный способ введения. Инъекцию делают тонкой иглой (№18-20). Удобно использовать туберкулиновый шприц. Кожу, освобожденную от шерсти, растягивают большим и указательным пальцами; иглу вводят под острым углом срезом вверх. Правильно введенная игла просвечивает сквозь эпидермис. Исследуемый материал вводят медленно (обычно в объеме 0,1 мл); на месте введения образуется пузырек с поверхностью, напоминающей лимонную корочку.
Внутримышечное введение. Кроликам и морским свинкам материал вводят чаще всего в мышцу задней лапы, птицам - в мышцы груди.
Виутрибрюшинное введение. Животное удерживают в вертикальном положении головой вниз, чтобы внутренние органы переместились к диафрагме. Иглу вводят в нижнюю часть живота. Для инъекций применяют короткие иглы. Момент проникновения иглы в брюшную полость воспринимается как "провал". Предельные дозы введения: мышам - 1; свинкам - 5; кроликам - 10 мл.
Внутривенное введение. Кроликам материал вводят в краевую вену уха, мышам - в вену хвоста, морским свинкам - в сердце, птицам (курам, голубям) - в вену, расположенную на внутренней поверхности крыла, которая хорошо видна после выщипывания перьев. Участок кожи, вокруг расположения вены для лучшего ее наполнения следует предварительно протереть ватой, смоченной ксилолом или теплой водой. Нельзя допускать попадания пузырьков воздуха в шприц, т.к. это может стать причиной газовой эмболии.
Введение через рот. Исследуемый материал примешивают к кор му либо вводят через гибкий резиновый катетер или зонд. Есть и другие способы, когда материал вводят в пищевод с помощью шприца с иглой, имеющей на конце оливу, или закапыванием в рот, причем каждую следующую каплю вводят только после того, как животное проглотило предыдущую.
Введение через нос. Животному дают легкий наркоз, при этом инфекционный материал глубоко проникает в легкие. При глубоком наркозе дыхание поверхностное, материал плохо втягивается. Предельные дозы: для мышей - 0,03-0,05; крыс - 0,05-0,1; свинок и кроликов - до 2 мл.
Введение в мозг. Мелким животным (крысам и мышам) материал вводят туберкулиновым шприцем с тонкой иглой, ограниченной металлической муфтой, на глубину 1,5 - 2 мм в количестве 0,01 - 0,02 мл. Мышь удерживают рукой так, чтобы большим и указательным пальцами можно было оттягивать кожу головы к затылку, а мизинцем и безымянным пальцами фиксировать хвост. Место инъекции смазывают йодом, укол делают на уровне средней трети линии, соединяющей внутренний угол глаза с основанием уха. Материал вводят медленно, чтобы не вызвать резкого повышения внутричерепного давления. Предельная доза для морских свинок - 0,1 мл; кроликов - 0,3 мл; более крупных животных - 0,5-0,8 мл.
Вскрытие лабораторных животных и взятие материала для бактериологического исследования
Павшие или заболевшие животные должны быть вскрыты. Больных свинок и мышей усыпляют с помощью эфирного наркоза. Кроликов умерщвляют путем введения 5 см3 воздуха в ушную вену. Вскрытие делают на специальном столе, соблюдая правила асептики. Перед работой надевают халат и резиновые перчатки. На столе должны быть: доска мягкого дерева, два скальпеля, два пинцета (хирургический и анатомический), ножницы прямые и купферовские, бактериологическая петля, банка с ватой, стекла предметные, горелка, стакан со спиртом и ватой па дне для инструментов, 2% и 5% раствор лизола, а также стерильные пробирки, чашки Петри, ватные тампоны, пипетки пастеровские, физиологический раствор и набор готовых питательных сред в чашках и пробирках.
Перед вскрытием шерсть животного обмывают ватным тампоном, смоченным 2% раствором лизола, труп укладывают на доску, покрытую стерильной бумагой, животом вверх. Лапки широко раздвигают и прикалывают к доске иглами или привязывают к крюч кам по углам доски. После фиксации животного осматривают наружные покровы и разрезают кожу от лобка до нижней челюсти. По направлению передних и задних лапок кожу рассекают боковыми надрезами. Скальпелем отсепаровывают кожу от подкожной клетчатки, осматривают паховые и подмышечные лимфатические узлы. Из измененных лимфатических узлов готовят четыре мазка-отпечатка и производят посев на питательные среды. После этого приступают к вскрытию грудной и брюшной полостей, остерегаясь попадания дезинфицирующего раствора внутрь.
Грудную полость вскрывают, подняв мечевидный отросток пинцетом, ножницами перерезают ребра в области хрящей. Осматривают грудную полость и при наличии изменений в органах из части их делают мазки-отпечатки и посевы на питательные среды. Из легких готовят три мазка-отпечатка. Обязательно исследуют кровь из сердца, для чего верхушку его прижигают раскаленным скальпелем и в этом месте, проколов мышцу стерильной пастеровской пипеткой, набирают кровь, готовят мазок и высевают на питательные среды.
Брюшную полость вскрывают, придерживая пинцетом переднюю брюшную стенку, и ножницами рассекают ткани от лобка до диафрагмы, а боковыми надрезами к паху и у диафрагмы широко открывают брюшную полость, сохраняя неповрежденным кишечник.
При осмотре органов брюшной полости особое внимание обращают на слизистую и печень. Из этих органов готовят мазки-отпечатки ( из селезенки - 2, а из печени -1) и делают посевы в соответствующие среды.
Черепную коробку после удаления кожного покрова головы, вскрывают. Череп смазывают йодом и мелкой пилкой распиливают на уровне верхнего края глазницы, боковых затылочных костей и по наружному краю лобных костей.
Крышку черепной коробки удаляют и производят посев из мозга. Головной мозг извлекают после пересечения спинного мозга на уровне большого затылочного отверстия.
После вскрытия труп животного сжигают или автоклавируют, а при невозможности это сделать заливают на сутки 5% лизолом или 5% карболовой кислотой. Инструменты тщательно очищают от крови и стерилизуют кипячением в течение 40 мин, а доску для вскрытия заливают дезинфицирующим раствором.
Мазки-отпечатки на предметных стеклах фиксируют в смеси Никифорова 10-15 мин, окрашивают и изучают. Посевы помещают в термостат.
С этой целью после осмотра трупа животное прикрепляют к препаровальной доске, располагая его при этом брюшной стенкой вверх; кожу обрабатывают дезинфицирующим раствором. Н рабочем столе должны находиться доска или кювета, залитая парафином, спиртовка, сосуд со спиртом, инструментами (ножницы, скальпель, пинцеты и др.) и ватой на дне, стерильные ватные тампоны, бактериологическая петля, стерильные пастеровские пипетки, предметные стекла, необходимые питательные среды.
Во избежание загрязнения содержимым кишечника сначала вскрывают кожу, тупо отсепаровывая ее от подкожной жировой клетчатки. Рассматривают место инъекции и регионарные лимфатические узлы. Пинцетом захватывают мечевидный отросток грудины, подтягивая его вверх. Вырезают грудину вместе с прилегающими отрезками ребер и ключицы. После вскрытия грудной полости раскаленным скальпелем прижигают верхушку сердца и стерильной пастеровской пипеткой прокалывают миокард. При этом в капилляр пипетки поступает кровь из сердца. Проводят посев крови на МПБ. Затем вскрывают брюшную полость, рассматривают внутренние органы, производят посевы-отпечатки из органов на сектора чашки Петри с МПА: прижигают поверхность органа раскаленным скальпелем, отрезают кусочек и делают посев-отпечаток на пластинчатый МПА из печени, почек, легких и селезенки. Параллельно готовят мазки-отпечатки, для чего кусочком органа прикасаются поверхностью разреза к предметному стеклу. Мазки фиксируют в пламени спиртовки, окрашивают по Граму, микроскопируют; посевы отправляют в термостат.
Во время вскрытия необходимо следить за тем, чтобы заразный материал не попадал на стол. Категорически запрещается класть на стол инструменты, применяющиеся для вскрытия трупа. После вскрытия рабочее место убирают и дезинфицируют. Труп животного помещают в дезинфицирующий раствор, сжигают или автоклавируют. Доску или кювету протирают спиртом и прожигают или заливают на сутки дезинфицирующим раствором. Инструменты стерилизуют кипячением или автоклавированием. Ход исследования оформляется протоколом.