Практические навыки

1. Методы лечения керато-конъюнктивита Кератит – воспаление роговицы. Конъюнктивит – воспаление слизистой глаза. Первая помощь: промывание глаза бледным раствором марганцовки, раствором борной кислоты, альбуцид. Ретробульбарная блокада по Авророву. Область расположения глаза обрабатывают 0,02%-ным раствором фурацилина или 0,1 %-ным раствором этакридина лактата. После подготовки животного вводят инъекционную иглу через верхнее веко ниже свободного края по середине костной орбиты и направляют ее на основание противоположной ушной раковины. Иглу продвигают между глазным яблоком и периорбитой у крупных животных на глубину 6—8 см, у мелких — на 4—5 см, инъецируют теплый 0,5%-ный раствор новокаина крупным животным до 15 мл, мелким 7—10 мл. Затем делают второй вкол иглы через основание середины нижнего века в том же направлении и на такую же глубину и инъецируют такое же количество раствора новокаина. При из­влечении иглы одну четверть этой дозы вводят под конъюнктиву. При необходимости блокаду можно повторить через 4—5 дней. Закладывание за нижнее веко тетрациклиновой мази. Инвазионный кератоконъюнктивит – в августе у телят в условиях ЧР может развиваться телязиоз. При этом в глазу скапливается до 10-12 штук гельминтов 1 см размера. Сначала их с помощью детской спринцовки вымывают из-под третьего века с помощью 1 % хлорофоса, а затем проводят аналогичное лечение.	2. Примерная схема плана эпизоотического обследования хозяйства 1. Общая характеристика хозяйства: топография, климат, специализация, виды и половозрастные группы животных, кормовая база, племенная работа, хозяйственно-экономические связи с другими хозяйствами. 2. Характеристика ВС состояния: наличие ветеринарных объектов, обеспеченность ветеринарными имуществом и медикаментами. 3. Характеристика эпизоотологического состояния: благополучие хозяйства в прошлом, эпизоотологическое состояние др. хозяйств, связи с кот. поддерживаются; выполнение плана противоэпизоотических мероприятий, описание вспышки инфекции. 4. Характеристика проводимых противоэпизоотических мероприятий: дата объявления хозяйства неблагополучным и наложение карантина или ограничений, изоляция и лечение больных, вынужденная вакцинация восприимчивых животных. Проведение вынужденной дезинфекции, способы и вид. Утилизация трупов, условия вынужденного убоя. Методы обеззараживания продуктов. Обеспеченность спецодеждой и спецобувью. Дата последнего случая выздоровления/падежа животных. Полнота проведения заключительных ВС мероприятий. Дата снятия карантина. 5. Выводы: правильность и своевременность постановки DS, предполагаемые источники/пути передачи/распространения. Эффективность мероприятий. 6. Предложения: перечень конкретных доп. мероприятий с указанием сроков выполнения и ответственных лиц.	3. Назовите и покажите секционные инструменты Секционные ножи, скальпели, пинцеты, ножницы (кишечные, реберные, для вскрытия кровеносных сосудов и прямые), пила анатомическая, пила лучковая, молоток-топорик, щипцы-костодержатели, долото.	4. Методика взятия, упаковки и отправки патматериала при подозрении на сибирскую язву. оставьте сопроводительный документ КП: труп вздут, истечения из естественных отверстий крови или кровянистой жидкости, трупного окоченения нет. В лабораторию посылают толстые мазки крови из вен уха свежего трупа место надреза кожи обязательно прижигают. Мазки высушивают на воздухе в тени, не фиксируют. Если нет стекол, то можно нанести несколько капель крови на предварительно обожженные кусочки мела, гипса, пористого угля, сахара. Как исключение допускается посылать на исследование целое ухо, отрезанное с той стороны, на которой лежал труп. В этом случае ухо туго перевязывают в двух местах и отрезают его между бечевками. Место отреза прижигают. Взятый материал заворачивают в пергаментную бумагу и полиэтиленовую пленку, тряпку с дезосредством, упаковывают в металлическую коробку (банку) или плотный ящик и отправляют в лабораторию с нарочным. Наиболее подходящий материал при вынужденном убое животных — селезенка, а при убое свиней — подчелюстные и заглоточные лимфоузлы. Если труп животного разложился, в лабораторию посылают кусочки кожи 10 см или органов. Высушенные мазки кладут в чашку Петри с надписью на упаковке «Мазок не фиксирован!». Посуду с материалом помещают во влагонепроницаемую тару, обвязывают, пломбируют или опечатывают, делают надпись «Верх. Осторожно!» и с сопроводительными документами нарочным отправляют в лабораторию.
5. Необходимые инструменты и мероприятия при разрастании копытец у коров Расчистку копытец начинают с подошвы и проводят копытным ножом. Осторожно срезают с подошвы, а затем старый крошащийся и отслаивающийся рог («мертвый рог») до живого и до обнажения белой линии. Утончать подошву нельзя. Затем копытными ножницами срезают отросшую копытцевую стенку с таким расчетом, чтобы ее подошвенные края выступали над подошвой на 2-3 мм. В процессе обрезки копытцевой стенки рукоятку копытных клещей стараются направлять в сторону подошвы с тем, чтобы не нарушить глазурь на роговом башмаке. Заканчивают обрезку и расчистку выравниванием рашпилем подошвенного края роговой стенки. Обрезку сильно разросшихся копыт можно проводить, подложив под них дубовую доску с помощью топора и кувалды. Профилактика – активный моцион в течение года.	6. Микстуры и экстракты. Технология приготовления Микстуры – смеси жидких или твердых и жидких лекарственных веществ: настоев, настоек, сиропов и т. д. Микстуры могут быть прозрачные, мутные, с осадком. Перед использованием рекомендуется взбалтывать. Должна содержать не менее 3 компонентов. Обычно готовят в склянке, труднорастворимые лекарственные вещества сначала растирают в ступке, у ней же готовят микстуру. Назначают внутрь, дозируют ложками, стаканами. При приготовлении следует учитывать, что необходимо приливать спиртсодержащие жидкости к воде, а не наоборот, иначе мб. осадок. Выписывают полной или в полуразвернутой форме. Экстракт (Extractum) – чаще всего получают путем извлечения спиртом действующих начал из растительного лекарственного сырья. Приготавливают на заводах. В отличие от настоек имеют более высокую концентрацию. Сухие, густые и жидкие экстракты – Extractum fluidum. Жидкие – как настойки, густые – пилюли, суппозитории, сухие – пилюли, порошки, таблетки. Препараты бывают только официнальные, выписывают только сокращенным способом.	7. Взятие, упаковка и отправка патматериала при подозрении на туберкулез От павших или вынужденно убитых животных берут заглоточные, подчелюстные, бронхиальные, средостенные, брыжеечные, печеночные, надвымянные лимфатические узлы; кусочки печени, легких и селезенки; тушки птиц целиком; от живых животных берут молоко и сперму. При взятии патматериала необходимо соблюдать правила личной безопасности. Материал доставляют в лабораторию свежим, в замороженном виде или консервируют в 30-40 %-ном растворе глицерина. Обсемененность патологического материала микобактериями туберкулез может быть незначительной, поэтому для получения достоверных диагностических результатов специальными методами обработки повышают концентрацию возбудителя. К обработке предъявляют ряд требований: она должна обеспечивать гомогенизацию материала, уничтожать сопутствующую микрофлору, быть щадящей для микобактерий туберкулеза и способствовать их концентрации в материале (обогащению). Дополнительные исследования: в/в и офтальмопроба. Туберкулин разводят 1:1, вводят 1 мл/100 кг в 22 ч, при повышении средней Т в 6 ч на 1 град. проба считается положительной.	8. Выполнить проводниковую анестезию нервов тазовой конечности у коровы. Показания Показания: воспалительный процесс на копыте, различные патологические процессы на нижней части конечностей. Для проведения анестезии требуется игла длиной 4-6 см и 20-40 мл 3-4 % раствора новокаина (в зависимости от размеров животного). Новокаин вводят в область прохождения срединного нерва в области связки с плантарной стороны.
9. Взятие крови. Приготовление сыворотки для серологических исследований Кровь берут у моногастричных утром до кормления, у жвачных – через 4 ч после кормления. Кровь для серологических исследований у КРС, овец, лошадей берут из яремной вены в стерильные бактериологические пробирки в количестве 10-15 мл, у свиней – из хвостовой, передней краниальной вен или глазного синуса. У птиц – из подкрыльцовой вены, у кроликов – из краевой ушной вены. В цельной крови определяют общие клинические и гематологические показатели, сахар, кетоновые тела, u, Co, Zn, Mn, Se. Плазма (есть фибриноген) – резервная щелочность, Na, K, P, Mg, каротин, вит. С. Сыворотка (нет) – общий белок и его фракции, остаточный азот, мочевина, Ca, P, I связанный белком, каротин, витамины и т. д. Для отбора проб крови в нее добавляют антикоагулянты: 2-3 капли 1 % гепарина или 3-4 капли трилона Б на 15-20 мл. Пробирки с кровью необходимо выдержать в тепле 1,5-2 ч, затем для отделения от стенок пробирки обвести сгусток стеклянной чистой палочкой или спицей. Для отстаивания сыворотки пробирки помещают в холодильник при температуре 4...6 градусов на 18-20 ч. После ретракции сгустка сыворотку крови переливают в серологические пробирки с резиновыми пробками. При необходимости сыворотку консервируют, добавляя в пробирку несколько крупинок борной кислоты, тиомерсал (1:10 000), или замораживают. Пригодна сыворотка только без гемолиза!	10. Методика трихинеллоскопии свинины Исследование мяса на трихинеллез путем выявления в нем личинок трихинелл. Обязательно для свиней старше 3 недель, кабанов, барсуков, медведей и др. плото- и всеядных животных. Берут навески по 60 (25?) г из ножек диафрагмы в месте перехода мышцы в сухожилие, или из мышечной реберной части диафрагмы, межреберных или шейных мм. Из различных участков каждой пробы кривыми ножницами вырезают 12 кусочков размером с овсяное зерно и раздавливают их между стекол компрессориума до такой степени, чтобы через слой расплющенной мышечной ткани можно было прочитать газетный текст, всего 24 среза от одной туши. Рассматривают на трихинеллоскопе или под микроскопом. Также следует рассматривать прослойки в сале - рассосавшиеся участки мышечной ткани. В зависимости от эпизоотологического состояния района, отбирают 24, 42, 78 и 96 проб. В свином мясе личинки веретенообразной формы, в мм. др. животных – овальной или округлой формы. Дифференцируют от саркоцист и молодых цистицерков. При обнаружении хотя бы одной личинки все части туши, имеющие мышечную, в т. ч. пищевод, прямую кишку и обезличенные мясные продукты направляют на техническую утилизацию.	11. Катетеризация мочевого пузыря у коровы Катетеризацию проводят при диагностике, лечении, при необходимости получения мочи для исследования, удалении содержимого мочевого пузыря, при сужении уретры и для промывания мочевого пузыря. Перед катетеризацией подбирают катетер с соответствующим диаметром. У коров катетеризацию выполняют чаще всего металлическим катетером длиной 30-40 см и толщиной 4-6 мм с изогнутым отростком наконечка. Перед катетеризацией обмывают наружные половые органы. Затем во влагалище вводят чистую и продезинфицированную руку и на нижней стенке находят поперечный валик, расположенный на расстоянии ладони, и указательный палец вводят в слепой мешок, а затем по верхней стенке в отверстие мочеиспускательного канала. Второй рукой стерильный катетер вводят под контролем пальца в отверстие мочеиспускательного канала и далее в мочевой пузырь. Свидетельством правильного введения катетера служит вытекание из него мочи.	12. Болюсы и пилюли. Техника приготовления Болюсы (Bolus) – лекарственная форма более мягкой консистенции по сравнению с пилюлями, консистенции мягкого хлеба. Прописывают ЛВ массой 0,1-40,0 г. В качестве основы используют ржаную муку, зеленое мыло, алтейный корень. Они состоят из формообразующего и лекарственного веществ. Их выписывают дозировано и развернуто без указания точного количества формообразующих в-в (q. s.) сроком на 1-2 дня, т. к. при длительном хранении затвердевают. Назначают главным образом лошадям. Дают болюсодавателем или закладывают рукой под корень языка. Пилюли (Pilula) – дозированные лекарственные формы в виде шариков массой от 0,1 до 0,5 г, приготовленные из однородной пластичной массы. В качестве вспомогательных веществ применяют воду, спирт, глицерин, сахарный сироп, мед, крахмал, сахар, белую глину и т. д. Готовые пилюли посыпают порошком ликодия или крахмалом, а содержащие окислители – белой глиной. Поверхность дб. сухой и гладкой, на разрезе – однородны. Техника: смешивают, твердые размельчают в ступке. Воду и муку добавляют до образования нужной консистенции. Делают палочки, нарезают на равные части. Для приготовления пилюль можно использовать специальный станок.
13. Сакральная спинномозговая анестезия В эпидуральное пространство крестцового отдела позвоночника. При операциях в области наружных половых органов и влагалища, на хвосте, анусе и прямой кишке, для устранения потуг при родах, раскрытия шейки матки, при вправлении сместившихся матки и влагалища, операциях на тазовых конечностях. Иглу вкалывают между первым и вторым хвостовыми позвонками (последний поясничный и первых хвостовой); здесь хорошо прощупывается межпозвоночная щель, легко определяемая сгибанием и разгибанием хвоста. Иглу сначала вводят перпендикулярно к коже, при этом хвост животного должен быть опущен. После прокола кожи иглу направляют вперед под углом 45° к междужковой связке, при проколе которой ощущается своеобразное затруднение. Дальнейшее продвижение иглы приводит к упору ее кончика в стенку позвоночника. В этом случае иглу следует оттянуть на 1—2 мм назад, после чего, присоединив шприц к игле, медленно вводят теплый 2%-ный раствор новокаина из расчета крупным животным 10—15 (30) мл, мелким 4—7 (10) мл - низкая сакральная анестезия, при которой раствор достигает передней части крестцового отдела позвоночника и обезболивает корешки крестцовых нервов (высокая – до 2 поясничного или 1 грудного. При этом обезболиваются и корешки нервов, иннервирующих заднюю часть туловища, включая конечности и область живота. После высокой анестезии тут же выполняют повал. Можно выполнять на лидокаине – ½ дозы.	14. Аллергическое исследование КРС на туберкулез. Учет результатов Туберкулин вводят в область средней трети шеи внутрикожно, быкам-производителям допускается вводить в кожу подхвостовой складки. Шерсть на месте введения выстригают и обрабатывают 70 %-ным спиртом. Вводят в дозе 0,2 мл. Используют ППД-туберкулин для млекопитающих. КАМ-аллерген вводят с другой стороны. Реакция признается положительной, если в месте инъекции туберкулина образуется разлитая (без четких границ с окружающей тканью), тестоватой консистенции. КРС считают реагирующими на туберкулин при наличии вышеуказанных изменений на месте инъекции туберкулина и утолщения кожной складки (по сравнению с толщиной складки неизмененной кожи вблизи места введения туберкулина) на 3 мм и более, кот. устанавливают кутиметром или штангенциркулем. Быков-производителей, туберкулинизированных в подхвостовую складку, считают реагирующими при образовании в месте введения туберкулина воспалительной припухлости и утолщении кожной складки на 2 мм и более. Свиньям вводят в наружную поверхность уха, отступив 2 см от основания, в одно – для млекопитающих, др. – для птиц. Читка – по утолщению места введения.	15. Схема плана профилактических противоэпизоотических мероприятий Включается в себя 4 раздела: 1. Диагностические исследования – туберкулез, бруцеллез, лейкоз, сап, гельминтозы. 2. Вакцинация: сибирская язва, эмкар и др.; инфекционный ринотрахеит, сальмонеллез, эшерихиоз, пастереллез. Проведение вакцинация разбиваю по кварталам. 3. Ветеринарно-профилактические обработки: подкожный овод, чесотка, вши, витаминизация. 4. Ветеринарно-санитарные мероприятия: дезинфекция (2 раза в год), дезинсекция (летом), дератизация (при наличии грызунов).	16. Поставьте патологоанатомический диагноз и дайте заключение по представленному протоколу вскрытия трупа животного Кокцидиоз кролика: 1) наличие серо-белых узелков на стенке тонкой и толстой кишок; 2) изменения в печени; 3) обнаружение ооцист кокцидий при микроскопии содержимого узелков.
17. Проводниковая анестезия верхнечелюстного нерва у коровы Показания: удаление резцов, операции в носовой полости. Техника по Студенцову: иглу вкалывают в точке пересечения 2 линий – от середины лицевого гребня до середины контура челюстного сустава и от наружного края орбиты перпендикулярно лицевой линии. Иглу продвигают на 7-9 см перпендикулярно коже до соприкосновения с костью и вводят 20 мл 2 %-ного раствора новокаина. Чтобы не проколоть поперечные лицевые артерию и вену, их пальпируют. Для того, что не повредить другие нервы и сосуды, находящиеся в клинонебной ямке, избегают повторных движений иглой. Обезболивание достигается во всей области верхней лицевой части головы, включая орбиту. У КРС иглу вкалывают в передненижнем углу височной ямки перпендикулярно коже на глубину 8-9 см до соприкосновения с костью и инъецируют 10-15 мл раствора новокаина. При этом происходит обезболивание ветвей верхнечелюстного и глазничного нервов.	18. Техника надплевральной блокады по Мосину Точка пересечения переднего края последнего ребра с латеральным краем длиннейшей мышцы спины является местом укола. Предварительно кожу, подкожную клетчатку и мышцы в месте введения иглы, особенно у неспокойных и злого нрава животных, инфильтрируют 0,5%-ным раствором новокаина. Затем под углом 30—35° к горизонтальной плоскости вводят иглу и продвигают ее параллельно переднему краю ребра до упора в тело предпоследнего грудного позвонка. Из иглы не вытекает кровь и через нее в плевральную полость не всасывается воздух. Потом с одновременным введением раствора изменяют положение иглы, отклоняя ее вместе со шприцем на 5—10° к сагиттальной плоскости. Благодаря этому конец иглы несколько отходит от тела позвонка и принимает направление, параллельное вентролатеральной поверхности тела позвонка. Равномерно надавливая на поршень шприца, иглу плавно продвигают вперед до момента свободного вхождения раствора новокаина в надплевральную клетчатку. В это время следует убедиться в правильности положения конца иглы. Для этого от иглы отъединяют шприц. Если конец иглы находится в надплевральной клетчатке, инфильтрированной раствором новокаина, то из иглы выходит капля раствора. Показания: абдоминальные операции, гастроэнтерит, перитонит, цистит и холецистит, диспепсия молодняка, гнойно-кат. эндометрит, выпадение матки, н. дистрофии.	19. Настои и отвары, техника приготовления Настои и отвары (Infusument, Decoctum) – водные вытяжки из лекарственного сырья или водные растворы экстрактов, специально приготовленные для этой цели. Это окрашенные, чаще мутные жидкости с ароматным запахом. Перед использованием взбалтывают. Быстро разлагаются -> срок хранения 3-4 дня. Используются внутрь и наружно. Техника: измельчение сырья, настой заливают кипящей водой, а отвар – холодной. Настой держат 15 мин на водяной бане, 45 мин настаивают. Отвар держат на водяной бане 30 мин. Выдерживают 15 мин. Выписывают сокращенным способом.	20. Организация и проведение массовых аллергических исследований на сап Сап (Malleus) – инфекционная болезнь однокопытных, характеризующаяся образованием на слизистых оболочках, коже и во внутренних органах узелков, склонных к казеозному распаду и изъязвлению. КП: мелкие желтоватые узелки с красным ободком на слизистой носа  распад  язвы разной ф. с неравномерными утолщенными краями с эксс-м. Глазная маллеинизация – проводят 2-кратно с интервалом 5-6 дней в здоровый глаз утром 3-4 капли. Реакцию учитывают через 3, 6, 9 и 24 часа. «+» - гнойный конъюнктивит, «шнур». Сомнительная – капля гноя. Отрицательная – легкое покраснение и слезотечение. При сомнительной и отрицательной – повторная проба в тот же глаз. Учет через 3, 6, 9 и 12 часов. П/к: при заболеваниях глаз и неясных результатах глазной пробы. Выводят ср.-сут. Т<38,5C. Маллеин вводят в 22-24 часа в п/к клетчатку в области подгрудка или шеи. Начинают измерять Т с 6 часов, каждые 2 часа до 20 ч, затем на 24 и 36 часу. В течение 20 ч нельзя поить холодной водой. «+» - до 40С и при наличии местной реакции, либо выраженная реакция с подъемом до 39,6С. Сомнительная – выше 39, ниже 39,6 при отсутствии местной реакции, или при 40С при отсутствии местной реакции. «-» - Т не превышает 39С. Внутрикожная маллеинизация проводится для исследования табунных лошадей. Маллеин вводят внутрикожно в области шеи в дозе 0,2 мл. Учитывают через 48 ч. «+» - строго очерченная, тестоватой консистенции, горячая, болезненная припухлость величиной 2х3,5 см и больше.
21. Взятие патматериала для бактериологических исследований Материал берут с учетом клинических признаков болезни, результатов патологоанатомического вскрытия. Материал берут прижизненно или посмертно. Желательно отбирать от животных, не подвергавшихся лечению антибиотиками, в максимально короткие сроки (до 2-3 часов). Исследуемый материал берут стерильно! Трупы мелких животных отправляют целиком. Паренхиматозные органы – каждый орган или фрагмент помещают в отдельную посуду, в нативном виде или консервируют. Трубчатые кости очищают от мм., сухожилий, заворачивают в ткань, смоченную 5 % р-ром фенола, или пересыпают поваренной солью и затем заворачивают в ткань. Гной, пунктаты органов, экссудат берут при помощи стерильного ватного тампона, шприца. Кровь рекомендуют брать при лихорадочных состояниях стерильным шприцем в уоличестве 15-20 мл. Можно отбирать стерильной пастеровской пипеткой с запаиванием кончика. Моча – первую порцию не берут, последующую набирают в стерильную посуду. Мокрота – собирают до приема корма. Из трахеи берут с помощью трахеотубуса. Тампон с материалом упаковывают в пробирку. Секрет молочной железы – кроме первой порции. Кишечник – при исследовании содержимого в лабораторию отправляют перевязанные фрагменты, в остальных случаях – его промывают, помещают в банку со стерильным 30 %-ным водным раствором глицерина или насыщенным NaCl. C регионарными ЛУ. Фекалии берут тампоном и пом-т в проб.	22. Исследование органов дыхания у разных видов животных Носовое истечение: время появления, характер, 1- или 2-стороннее, количество, общий вид, наличие примесей. Дыхание: ритмичность, частота, асимметричность, тип (костальное, абдоминальное, смешанное). Одышка: экспирационная, инспирационная, смешанная. Исследование носа: наружный и внутренний осмотр, пальпация, исследование фонариком и риноскопом. Исследование придачтоных полостей носа, гортани и трахеи: пальпация, болезненность, аускультация. Грудная клетка: пальпация, осмотр, перкуссия. Граница легких у КРС – 8-11 ребро, лошади – 10, 14, 16 ребро, собаки – 8, 10, 11. Специальные исследования: плегафония, пневмография, проба прогонкой и определение насыщения крови кислородом с помощью оксигемометра.	23. Техника аэрозольной дезинфекции помещений Аэрозольный метод широко применяют на п/ф. Эффект не отличается от п/к введения. Наиболее сильный иммунитет вызывается к инфекциям с аэрогенным путем заражения. Иммунитет вырабатывается быстрее чем при п/к введении. Введение вакцин не сопровождается пневмониями. В настоящее время есть сухие пылевые и жидкие вакцины. Пылевые вакцины зависят от влажности воздуха в помещении, поэтому чаще применяют жидкие. Сложность в том, что требуется спец. оборудование и соответствующие условия. Наиболее эффективны при СЯ, бруцеллезе, ящуре, роже и сальмонеллезе свиней, листериозе, болезни Ауеске и классической чуме свиней, чуме плотоядных, пастереллезе кур. Оборудование: герметичные аэрозольные камеры с нужной температурой, влажностью, смотровым окном. Для диспергирования вакцин применяют аэрозольные генераторы ДАК-2, САГ-1, САГ-10, САГ-1РН, ТАН, УВЖ-1. Для сухих пылевых вакцин – ПАВ-61, ПАВ-М, ПАВ-59, по 1 на 500 куб. м, располагают в шахматном порядке. Важна концентрация и степень дисперсности аэрозолей. Их определяют методом улавливания оседающих частиц и другими методами. Без животных: формалин, креолин, смесь 3:1, 10 мл/куб. м, 6 ч. Или 30 г KMnO4 + 45 г формалина + 20 мл воды ставят в кастрюле. В присутствии животных – 3 % Н2О2 100-200 мл/куб. м. Глутаровый альдегид 0,2 % - 100-200 мл/куб. м. Ниртан 3 % водный р-р по 0,5 л/куб. м. Хлор. известь + скипидар 4:1 2+0,5 мл на 1 куб. м.	24. Календарный план работы ветеринарного участка Календарный рабочий план ветеринарной службы с/х предприятия составляют для рационального использования рабочего времени ветспециалистов, лучшей организации их труда. Как правило, такой план составляется на месяц. Приступая к разработке рабочего плана, тщательно изучают годовые планы профилактических противоэпизоотических мероприятий, профилактики незаразных болезней, ветеринарно-санитарных мероприятий и ветеринарной пропаганды, ликвидации инфекционных и инвазионных заболеваний животных. Вет. мероприятия следует планировать только на рабочие дни, а в выходные дни могут проводиться лишь вынужденные мероприятия. План утверждает руководитель предприятия. В плане указывают дату проведения, наименование мероприятия, исполнителя и ответственное лицо. Подписывает его главный ветеринарный врач.
25. Исследование органов пищеварения у жвачных Рубец занимают все левую половину полости тела от диафрагмы до входа в таз, сзади и внизу частично переходит в правую половину: осмотр, пальпация, аускультация, перкуссия; специсследования – зондирование, руменоцентез, руменография – 8-8,5 дв/5 мин. рН рубца 6,8-7,4. Сетка является продолжением преддверия рубца. Лежит впереди рубца, в нижней части брюшной полости и достигает 6-7 ребра и прилегает к диафрагме. Применяют глубокую пальпацию в области мечевидного хряща. При травматическом ретикулите (-перитоните, -перикардите) животные неохотно идут в гору, встают по-лошадиному, опираясь сначала на грудные конечности. Проба Рюгга – нажатие концами пальцев в области заднего склона холки при приведенной в горизонатльное положение лицевой части головы. Проба на болевые ощущения – давление с 2 сторон палкой на область мечевидного хряща. Металл в сетке обнаруживают металлоискателями, магнитным зондом, лейкоциоз, увеличивается СОЭ. Книжка – 7-10 ребра справа – пальпация, аускультация, перкуссия и пункция. Сычуг – правое подреберье и частично в области мечевидного отростка, до 12 межреберного сочленения и нередко выходит из-за реберной дуги.	26. Лабораторная диагностика диктиокаулеза животных Гельминтоларвоскопия – обнаружение личинок гельминтов в фекалиях. Метод Бермана: пробу фекалий заворачивают в марлевую салфетку кладут в стаканчик и заливают водой. Через 6-8 ч пробу вынимают, жидкость отстаивают 15 мин. Сливают надосадочную жидкость, отстаивают 5-10 мин. Пипеткой медленно отсасывают верхний слой воды из наклоненного стаканчика. Осадок наносят на предметное стекло и микроскопируют. Метод Котельникова и Хренова: 400 г сульфата цинка на 1 л воды, р-р усиливает активность диктикаулюсов. Плотные пробы фекалий овец и коз (5 г) кладут в стаканчики с раствором сульфата цинка и разгоняют по кругу палочкой 1-2 мин, не растирая и не размешивая. Через 5-10 мин. пробы вынимают пинцетом, взвесь отстаивают 10-15 мин. Затем мет. петлей с диам. кольца 8-9 мм снимают 6 капель с поверхности взвеси и микроскопируют. Жидкие – 5 г, 20-30 мин. без размешивания. Затем – аналогично. Метод флотации: пробу фекалий в 3 г кладут в стаканчик и тщательно размешивают палочкой, добавляя флотац. р-р порциями до 50 мл. Фильтруют в др. стаканчик, оставляют на 10-20 мин. Снимают мет. петлей 3 капли с разных мест поверхности и микроскопируют. Для устранения деформации гельминтов добавляют глицерин и дисводу.	27. Ветеринарно-санитарные мероприятия перед снятием карантина и ограничений 1. Все оборудование и инвентарь выносится из помещения и подвергается тщательной дезинфекции. 2. Орошение начиная с потолка и кончая навозом после удаления животных и отключения э/энергии с экспозицией 3 ч или до утра. 3. Тщательная механическая очистка. 4. Вторая дезинфекция, помещение плотно закрывают и выдерживают 3-12 ч. 5. Снимают все съемное оборудование, кормушки, полы, пригодные промывают в дезрастворе, после бруцеллеза и туберкулеза сжигают. 6. Верхний слой земли перекапывают на 25 см, перемешивают с сухой хлорной известью 25 % по 5 кг/кв. м. Увлажняют водой и после 12-24 ч выдержки вывозят на недоступное для жив. место. 7. Вместо убранного грунта завозят красную глину, тщат. утрамбовывают и настилают новый пол с расчетом, чтобы не оставалось пустот на густой глиняный раствор. Устанавливают на место деревянные части. 8. Вставляют окна, двери, перегородки, монтируют оборудование и проводят третью заключительную дезинфекцию. 9. В заключение проводят в помещении побелку 20 % взвесью свежегашеной извести. Высушивают до влажности 16 % и оставляют без животных на несколько дней. 10. Проводится бак. контроль на качество санации независимой государственной службой. 11. Одновременно с санремонтом помещений проводятся СГ мероприятия на территории ферм. Ее очищают от мусора и навоза, дезинфицируют хлорной известью с 5 % акт. хлором, 3-4 % формальдегидом, 10 % NaOH 10 кв. м. Почву – как в помещениях. Через 20-25 дней дискуют и выравнивают.	28. Блокады при эндометрите При воспалении новокаин улучшает трофику при воспалении эндометрия, тем самым блокирует воспаление, действует обезболивающе, снимает блокаду иннервации. Относится к патогенетической терапии. 1. Надплевральная новокаиновая блокада по Мосину. 2. Поясничная паранефральная новокаиновая блокада. 3. Блокада по Фатееву. 4. Блокада по Ноздрачеву. 5. Блокада по Башкирову. 6. Блокада по Магде. 7. По Исаеву. По Мосину: 0,5 % новокаин 0,5 мл/кг. Игла 12-18 см с шприцем Жанэ. Отступают от саггитальной линии на ширину ладони под углом 35 град. по направлению к телу позвонка  всасывается воздух в иглу – правильное введение. Иглу вытягивают немного на себя и вводят новокаин с обоих сторон. Повторяют через 48 ч, всего 2-3 раза. Блокада по Фатееву: новокаин с антибактериальным препаратом вводят в прямокишечно-седалищную ямку в дозе 0,5 мл/кг. Блокада по А. Д. Ноздрачеву: используют 0,5 %-ный раствор новокаина в дозе 1 мл/кг, равными порциями слева и справа. Игла длиной 12 см, диам. 0,1 см. Иглу вводят на уровне 3 крестцового позвонка, отступив на 5-7 см от саггитальной линии. После прокола иглу продвигают под углом 55 град. до упора в край позвонков. Затем иглу смещают с краев отростков на себя, ставят более отвесно и продвигают на вглубь на 1-2 см. Глубина вкола 4-8 см. Блокада по Ю. П. Исаеву: иглой длиной 15-20 см делают вкол на равном расстоянии от корня хвоста и ануса, с углом 10 град. вправо, на всю длину, также слева.
29. Приготовьте 150 мл 0,25 %-ного раствора новокаина Новокаин: 375 мг. Хлорид натрия: 1,35 г. Дистиллированная вода: до 150 мл. Rp.: Novocaini 0.375 Natrii chloridae 1.35 Aquae destilllatae ad 150.0 ml M. f. solutio. Sterilisetur! D. S. Внутримышечное. Для инфильтрационной анестезии. Rp.: Novocaini 0.375 Sol. Natrii chloridae 0.9 % - 150.0 ml M. f. solutio. Sterilisetur! D. S. Внутримышечное. Для инфильтрационной анестезии. Готовят физиологический раствор, затем к нему прибавляют новокаин и размешивают.	30. Приготовьте сперму быка, замороженную в гранулах, к применению Марлевый мешочек с гранулами пинцетом с плоскими браншами поднимают в сосуде Дьюара до уровня горлышка, вторым расширяют его и захватывают 1 гранулу. Проверяют температуру в водяной бане, она должна быть равна 40 градусам. Делают 5-6 движений гранулой в воздухе для предотвращения температурного шока. Помещают туда гранулу на 8-10 (5) с до появления вертикального желобка на ней (осаждение на дно). Вынимают и хранят при температуре 18-20 градусов не более 10-15 минут. Подвижность должна быть не ниже 4 баллов. Заправляют шприц-катетер и осеменяют. Качество спермы проверяют на специальных столиках конструкции В. А. Морозова или термостатах, установленных на микроскопах с рабочей температурой 40-41 градус. При активности спермиев быка ниже 4 баллов сперму не используют для осеменения!	31. Оценка годности биопрепаратов к применению 1. Наличие этикетки, номер, серия и контроль. 2. Наличие наставления по применению биопрепарата. 3. Нарушения укупорки флакона. 4. Нарушение целостности флакона, ампулы, пробирки. 5. Отсутствие промерзания в жидких препаратах. 6. Изменение внешнего вида. 7. Наличие посторонних примесей и неразбивающегося при встряхивании осадка. 8. Срок годности препарата. 9. Срок использования вскрытого флакона (ампулы).	32. Приготовить мазок крови на предметном стекле и окрасить На предметное стекло наносят исследуемый материал. Если материал жидкий и находится в бактериологической пробирке (бульонная культура), то из пробиркиего извлекают бактериологической петлей и распределяют по предметному стеклу на площади 2 кв. см, отжигая до и после использования бакпетлю, а края пробирки – до и после открытия. С агаровой культуры – на предметном стекле, смоченном физраствором. Из тканей готовят мазки-отпечатки: стерильно вырезают кусочек органа, поверхностью среза несколько раз касаются поверхности стекла. Мазок высушивают на воздухе. Мазок фиксируют для прикрепления бактериальных клеток к поверхности стекла и инактикации. Физический способ: обратной стороной стекла медленно проводят 2-3 раза над пламенем горелки. Химический: этанол 96 % на 10 мин., ацетон – на 5 мин., смесь этанола и эфира 1:1 на 10 минут. Окраска: фуксин Пфейффера на 2-3 мин., метиленовый синий Леффлера на 3-10 мин. Краску смывают дисводой, препарат подсушивают фильтровальной бумагой или на воздухе и микроскопируют. Окрашивание проводят на мостике над сливной чашкой.
33. Методика проведения контроля качества дезинфекции животноводческих помещений Рассматриваются тип построек и материалов, кормушки, навозоудаление, вентиляция, водоснабжение. Величина площади дезинфекции. Качество механической подготовки объекта. Характер дезсредств, концентрация, температура рабочего раствора, количество использованных средств. Время экспозиции. Окончательный бак. контроль. Смывы берут с 10-20 участков разм. 10х10 см стерильными ватными тампонами, смоченными стер. нейтральными р-рами: формалин ‑ 1-2 % нашатырный спирт, хлорная известь – 0,1 % натрия тиосульфат, др. – стерильной водой. Пробы доставляют в лабораторию в течение 2 ч. Жидкость центрифугируют 20-30 мин. при 3000 об./мин. На среде Хейфеца проверяют активность E. coli – измененеие малинового цвета среды на зеленый. Стаф. – 50 % сах. МПБ. Производят путем бактериологических исследований смывов с поверхности стен, полов, кормушек и т. п. через 2-3 ч после дезинфекции. О качестве дезинфекции при сальмонеллезе, роже свиней, бруцеллезе, чуме свиней, чуме птиц, ящуре (текущая дезинфекция) принято судить по наличию или отсутствию кишечной палочки лактозопозитивной группы, а при туберкулезе, ящуре (заключительная дезинфекция), оспе овец, птиц, лептоспирозе и вирусном гепатите утят – стафилококков. Дезинфекция признается удовлетворительной если нет роста теста микробов при профилактической и заключительной дезинфекции во всех пробах, а при текущей – не менее чем в 90 % проб.	34. Техника ВСЭ мяса Осматривают место зареза, состояние обескровливания. Осматривают и прощупывают губы и язык. Делают разрезы жевательных мм. пластами на всю ширину. Селезенку осматривают снаружи и на разрезе. Легкие – аналогично, вскрывают регионарные лимфоузлы. Сердце дб. разрезано по большой кривизне, изнутри делают 2 надреза (не сквозные) и 1 поперечный. На печени делают 2-3 глубоких разреза, причем 1 должен проходить через портальные ЛУ. Туши свиней обязательно исследуют на трихинеллез. Мясо от вынужденно убитых животных помещают в отдельный холодильник и исследуют после получения результатов лабораторной диагностики. Проба варкой относится к органолептическим и биохимическим исследованиям (запах, цвет, прозрачность бульона, жир на поверхности). Бензидиновая проба – позволяет определить пероксидазу. Если жив. долго болело или было убито в агональном состоянии, то ее нет в мясе. Она расщепляет перекись водорода  бензидин  изменяет цвет от синеватого до бурого. Формольная, или с CuSO4 – для аналогичных целей. При тяжелых пат. процессах в организме накапливаются продукты распада белков – альбумозы, пектоны и полипептиды. Реакция основана на способности формальдегида осаждать эти соединения или образовывать сгусток в бульоне, или же выпадение хлопьев в вытяжке, кот. у здоровых животных слегка мутнеет или остается прозрачной.	35. Техника ВСЭ меда Определяют органолептические показатели: внешний вид, кристаллизация. Определяют содержание воды - зрелость меда и его способность к длительному хранению. В процессе созревания количество воды в меде падает. Пчелы начинают запечатывать мед, когда содержание воды в нем составляет < 20 %  отбер проб меда из запечатанных сот обеспечивает его зрелость. Содержание воды определяют ареометром по табличным данным или с помощью рефрактометра. Примесь сахара – микроскопия мазка. Примеси муки и крахмала – раствором Люголя. Механические примеси – пропускание нагретого меда на водяной бане через мелкое сито. Падевый мед – выделения листоблошек и тли, собранные пчелами. Определение общей кислотности – хависит от содержания в нем различных кислот, солей, белков и СО2. 0,1 н р-р NaOH, 1 % фенолфталеин, жисвода. коническая колба на 250 мл, мерная колба на 100 мл, бюретка, весы, пипетка ан 10 мл. В хим. стаканчик отмеряют 100 мл ! % р-ра меда + 5 капель 1 % спиртового раствора фенолфталеина и титруют 0,1 н раствором NaOH до слабо-розового окрашивания. Окончательный вираж цвета дб. 10 секунд. Количество мл 0,1 н р-ра NaOH будет нормальными градусами кислотности. Норма – 4-5 градусов.	36. Техника ВСЭ молока К продаже допускается молоко и мол. продукты из хозяйств, благополучным по инф. болезням, что подтверждается справкой, выданной ветврачом на срок не более 1 месяца. Не допускается к продаже молоко с снятием жира, добавлением, воды, крахмала, соды, формалина, перекиси водорода. При поствакцинальных осложнениях молоко обезвреживают кипячением 30 мин. и используют в корм животным. Молоко от реагирующих на туберкулин кипятят и используют внутри хозяйства, перерабатывают на топленой масло. Обрат обезвреживают и используют так же. Молоко от животных оздоравливаемых групп пастеризуют 5 мин. при 90 град. и используют внутри хозяйства. Бруцеллез – аналогично. Молоко от оздоравливаемых стад – 85-90 град. 20 секунд с повторной пастеризацией на молокозаводе. Запрещается продавать и вывозить молоко от животных, находящихся в карантинном пункте. Некробактериоз – от условно-здоровых пригодно для использования после кипячения. Мастит – из больных долей уничтожают, из здоровых – на корм скоту после пастеризации 85 град. 30 минут. Гастроэнтерит, эндометрит – кипятят 10 минут и используют внутри хозяйства. Антибиотики – можно использовать молоко только с соблюдением сроков с момента последнего введения в пищу. Молоко при обнаружении ядохимикатов бракуется независимо от их количества. При органолептических пороках молоко уничтожают, предварительно прокипятив.
37. Исследование сердечно-сосудистой системы у животных Сердечный толчок исследуют осмотром и пальпацией: боковой, верхушечный. КРС – 4 межреберье, на 5-7 см выше локтя. У лошади – 4-5 межреберье, ниже плечелопаточного сочленения. Отмечают смещение, усиление/ослабление и увеличение/уменьшение сердечного толчка. Пальпация области сердца: дрожание грудной стенки, болезненность, усиление сердцебиения. Относительная тупость сердца у КРС в 3-4 подреберье, исследовать трудно даже при сильно отведенной конечности. Аускультация: чередование тонов сердца, ослабление первого или второго тонов сердца. Расщепление и раздвоение тонов сердца. Органические и неорганические шумы сердца. Места наилучшей слышимости тонов сердца (puncta optimum): у жвачных митральный клапан исследуют в 4-м межреберье, полулунные клапаны аорты – на 5-7 см ниже плечелопаточного сочленения, полулунные клапаны легочной артерии – 3-е межреберье на уровне нижней трети грудной стенки; 3-створчатый клапанправого желудочка – справа в 4-м межреберье на уровне середины нижней трети грудной клетки. Специальные исследования: УЗИ сердца (ЭхоКГ), ЭКГ, рентген, шунтирование, эндоскопия.	38. Прокол рубца при тимпании Проводят в области левой голодной ямки кровопускательной иглой или троакаром. При газовой тимпании через иглу или гильзу будет свободно выходить газ, а при пенистой их просвет почти тут же закроется пенистой массой и ее отхождение прекращается. Для прокола рубца у крупных животных пользуются троакаром с острым трехгранным стилетом и плотно прилегающей к нему гильзой. При проколе острие троакара направляют к правому локтю. Укол делают резким и сильным толчком. После прокола рубца стилет вынимают и постепенно выпускают газы. Быстрое выведение газов сопровождается отливом крови, анемией мозга, что может вызвать обморок. При закупорке гильзы кормовыми частицами следует протолкнуть их стилетом троакара. Гильзу троакара можно оставлять введенной в стенку рубца на 3-5часов, закрепив ее на брюшной стенке. Через гильзу можно вводить в рубец дезинфицирующие и противобродильные средства 1-2 % креолина, ихтиола, лизола и др. Перед тем, как извлечь троакар из рубца, необходимо промыть гильзу, вставить в нее стилет, прижать брюшную стенку к рубцу и осторожно вынуть троакар.	39. Введение магнитного зонда корове Вводится по нижнему носовому ходу. Рот открывают зевником, прицепляют на конец зонда магнит, вводят в сетку и оставляют там на несколько часов. Извлечение зонда происходит в обратном порядке. Резиновая облатка на конце зонда защищает пищеварительный тракт животного от травмирования инородными металлическими предметами во время продвижения зонда.	40. Введение пищеводного зонда животным Перед введением зонда строптивых лошадей фиксируют. Диаметр 18 мм, внутренний – 12-14, резиновый. Вводят через носовые ходы. Зонд проверяют на проходимость водой и смазывают вазелином. Делают отметки до глотки и до желудка (15-16 ребро). Вводят сначала до глотки, затем используют акт глотания (опускание головы вниз, раскрытие рта). При попадании в пищевод встречается сопротивление. Вводят зонд до метки, свободный конец фиксируют. Содержимое поступает в зонд и вытекает наружу под действием в/б давления. При постановке зонда КРС используют клин Байера. Свиньям вводят через ротовую полость по средством зевника через специальное отверстие, направляя его по твердому небу. Для взрослых свиней используют зонд для лошадей. Крупных свиней зондируют после фиксации за верхнюю челюсть в стоячем положении. Поросят и подсвинков – на фиксационном станке. Зевник фиксируют за обе челюсти тесьмой и прочно завязывают в области затылка.
41. Приготовить 75 г мази камфорной с 3 %-ной концентрацией Существует официнальная камфорная 10 % мазь, которая состоит из 1 части камфоры, 6 частей вазелина и 3 частей ланолина. Rp.: Camphorati 2.2 Vaselini 48.0 Lanolini 24.0 M. f. unguentum D. S. Наружное. Втирать в пораженный участок кожи 2 раза в день.	42. Методика определения микрофлоры теленка Берут пробу кала стерильно из прямой кишки. Его разбавляют физиологическим раствором и омывают поверхность мясопептонного агара. Выдерживают при +37С в течение 30 минут. Жидкость сливают с поверхности, подсушивают. Раскладывают пробы антибиотиков на нее. По уровню роста под пробами антибиотиков определяют чувствительность: если роста нет на диаметре менее 10 мм – низкая чувствительность; 10-15 – средняя; 20 и более – высокая. Классически пробу проводят, делая разведения 1:2, 1:4, 1:8, 1:16, 1:32, 1:64 в пробирках. Далее определяют также.	43. Способы применения дезинсектантов Профилактическая дезинсекиця – создание неблагоприятных условий для жизни насекомых. Истребительная – уничтожение на всех стадиях развития. Методы: биологический – естественные враг (птицы, рыбы, микробы, грибы); физический – высокие и низкие температуры, уборка мусора и навоза, липучки, сетки, ловушки; химический – наиболее распространен. Виды применения: 1) контактный - хлорофос; 2) кишечный; 3) фумигантный – через органы дыхания; 4) репелленты – отпугивание. Могут применяться в виде дустов, аэрозолей, порошков, эмульсий. Фумигантные – аэрозоль и распыление дустов.	44. Диагностические исследование коров на мастит 1. Клиническое исследование на мастит: сбор анамнеза, осмотр, пальпация. 2. Реакция с мастидином или димастином: в норме розовый цвет, изменений консистенции не происходит. Если есть мастит, то проба станет тягучей, образуется сгусток, в некоторых случаях его даже можно приподнять над уровнем чашки. Сомнительная проба – сгущение консистенции. 3. Проба отстаиванием: молоко в количестве 10 мл наливают в пробирку и оставляют в бытовом холодильнике на 16-18 ч. При положительной пробе на дне появляется осадок, а на поверхности присутствует водянистая жидкость. 4. Лейкоцитарная проба – количество лейкоцитов в молоке при мастите увеличивается до 500 000 против 6,2-6,3 тыс. в норме. 5. Для диагностики скрытых маститов используют бромтимоловую пробу, которую проводят при постановке на запуск, через месяц после постановки, в начале и конце послеродового периода. 6. Бактериологическое исследование молока.
45. Проведение предубойного осмотра животных Время предубойного содержания должно соответствовать нормализации обменных процессов и способствовать нормальному созреванию мяса после убоя. Средний срок содержания составляет 2 суток, но может быть увеличен в силу действия различных факторов (длительная транспортировка, неудовлетворительное состояние). Сап лошадей – если не было исследования в хозяйств перед отправкой. Убитых без предварительной маллеинизации в пищевых целях не используют. Проверяют наличие необходимых документов, определяют происхождение скота. Предубойная подготовка проводится на верхнем этаже, рядом с убоно-разделочным цехом. Содержат на голодной диете при неограниченном водопое, прекращают за 3 ч до водопоя. При приеме по массе – не позднее 5 ч после приемки, при доставке до 100 км и выдержано без кормления в хозяйстве. КРС и МРС – не менее 15 ч. Кроликов – не менее 12 ч. Птица – 8-12 ч, водоплавающие – 4-8. Время прекращения кормления животных указывается в документах. Птица без выдержки в хозяйстве убою не подлежит. Лошади – 24 ч после маллеинизации. Утомленных ставят на отдых на 2 суток. Поголовная термометрия проводится за 1-2 ч до убоя. После проводят перегон во временную бухту, затем – в убойный цех. Убой без ограничений – только для здоровых животных. При инвазионных, инфекционных заболеваниях, в агональном состоянии – на санитарной бойне.	46. Исследование овец на трематодозы Эпизоотологические данные (болотная местность), бывают острое и хроническое течение. КП: болезненность печени, желтушность слизистых, исхудание, отеки подчелюстного пространства, подгрудка, низа живота. Диарея. В лаборатории исследуют пробы кала методом Бермана-Орлова, последовательного промывания, Фюллеборна с азотнокислым свинцом при плотности 1,6 г/куб. см. Картина крови. Метод Бермана: примерно 10 г фекалий, завернутых в кусочек марли, помещают в воронку аппарата Бермана, заливают водой с температурой 40 градусов, оставляют при комнатной Т на 3-6 ч фекалии овец или на 6-12 ч (лошади, КРС), затем пробирки разъединяют с резиновой трубкой и сливают в штатив. После встряхивания осадок разливают на предметное стекло и микроскопируют. Метод последовательных промываний: примерно 3 г фекалий, вливают в стакан большое количество воды, размешивают до получения жидкой кашицы. Затем добавляют воду порциями до объема 50 мл при постоянном размешивании. Смесь пропускают через ситечко в др. стакан и отстаивают 10 мин до образования осадка. Затем верхний слой сливают до осадка, добавляют к нему столько же воды и отстаивают 10 минут и повторяют до получения прозрачного надосадочного слоя воды. Последний раз слой сливают, а осадок поочередно разливают на предметные стекла и микроскопируют.	47. Методы диагностики акаропидоза и нозематоза Акаропидоз – возбудитель Acarapis woodi. Локализуется в первой паре грудных трахей. Распространен на пасеках, расположенных вблизи болот, в России и в Европе. Самки > самцов, размер 190х80 мкм, самка развивается 11-16 суток, самец – 10-13. Живут до 40 дней. Питаются гемолимфой. КП: у основания крыльев – некротические очаги. Заболевание протекает хронически, до заражения 50 % семьи проходит 3-5 лет. Диагноз: КП и ПАИ: трахеи пятнистые, ломкие. ЛД: пчел на 10 ч заливают КОН или NaOH, отрывают головку, берут хитиновое кольцо шириной 1 мм и рассматривают в компрессориуме под микроскопом на малом увеличении. Нозематоз – Nosematosis apis, 4,5-7,5х2-3,3 мкм. Поражает эпителиальные клетки средней кишки. Понос, массовая гибель во время зимовки и в 1 месяц после выноса ульев. Пчелы слабеют, ползают перед ульем, у некоторых увеличено брюшко. Большие семьи собирают на 12-50 кг меньше, чем здоровые. Иногда протекает в скрытой форме. Диагноз ставят на основании симптомов болезни результатов микроскопии содержимого кишечника: 5 брюшек растирают в ступке с 5 мл воды, капают на предметное стекло и микроскопируют. Слабая степень заражения – до 100 спор в поле зрения, средняя – до 1000, сильная – более 1000.	48. Приготовить 7 % хлоралгидрат для в/в введения лошади в количестве 150 мл. Техника введения Rp.: Chlorahydrati 10,5 Aq. destillatae ad 150,0 ml M. f. solution. Sterilisetur! D. S. Внутривенное. На одно введение. Вводят осторожно, чтобы не допустить попадания под кожу. Перед введением можно провести инфильтрационную анестезию новокаином места вкола. Первую половину вводят быстрее, чем вторую. Проводят выстригание шерсти, обработку спиртом 70 %, пережимают вену пальцем, производят введение.
49. Исследование туши коровы (свиньи) на цистицеркоз Ц. – остропротекающая болезнь КРС и др. жвачных и челокева. Taeniarchuncus saginatus. Разрезы масеттеров и сердца. Для дифференциации проводят окраску срезов по методу Ямщиков с дополнительной обработкой на предметном стекле р-ром соляной кислоты в течение 1-2 мин. с последующим промыванием дисводой. Срезы рассматривают под малым и средним увеличением микроскопа. Срезы сплющивают в компрессориуме трихинеллоскопа и погружают на 1 мин. в 1-2 мин. в 1 % раствор риванола или 5 % NaOH. Потом срезы переносят в насыщенный раствор метиленового синего голубого на 1-2 мин. Затем срезы промывают горячей водой. Капсулы трихинелл окрашиваются в зеленый цвет, трихинеллы – в синий. Переваривание фарша в искусственном желудочном соке с последующей микроскопией осадка (12-24 ч). СО: направляют на техническую утилизацию в случае обнаружении на 40 кв. см 3 цистицерков мышечную ткань и прямую кишку. Если < 3, то субпродукты утилизируют, а тушу отправляют на промпереработку. У свиней – T. solium. Шпик разрешается обезвреживать перетопкой, замораживанием и посолом. Обеззараженные субпродукты направляют на промышленную переработку. Дифференцируют тонкошейного цистицерка, который чаще располагается под серозной оболочкой органов, а не в толще мм. Его отличают по количеству крючьев (32-48 против 22-32 у свиного цистицерка).	50. Диагностика псороптоза овец и КРС клиническим и лабораторным методами Зудни, накожники и кожееды. Псороптоз (Psoroptosis) – инвазионная болезнь, вызываемая клещами рода Psoroptes, паразитирующими на коже животных. У овец P. ovis, у КРС – P. bovis. Тело удлиненно-овальной формы, длина 0,5-0,8 мм. Хоботок заостренный, имаго имеет 4 пары ног. Активнее размножаются в холодное время года. КП: кожный зуд, воспаление кожи с выделением лимфы, выпадение шерти и желтые корки. У овец по телу распространяется за 2-3 нед., большая часть шерсти выпадает  истощение  смерть. После стрижки признаки пропадают, но клещи размножаются в складках кожи. Летом – слабый кожный зуд, осенью обостряется. У КРС поражаются шея и бока. DS: берут соскобы кожи на границе пораженной и здоровой части кожи. На листе бумаги черного цвета видны невооруженным глазом в виде беловатых подвижных точек. Можно накрыть животное материей, прогреть под лампой, затем материю снять и просмотреть. DDS: стригущий лишай, вшивость, иксодовые клеши, ковыльная болезнь.	51. Методы прижизненной диагностики гельминтозов. Метод Фюллеборна и его применение Исследование фекалий, кровь, секреты, ткани. Методы: гельминтомакроскопии (гельминтоскопия)/ гельминтомикроскопии – обнаружение яиц и личинок с помощью микроскопа. Гельминтоовоскопия – яиц, Гельминтолярвоскопия – личинок. Гельминтоовоскопия осаждением - +10 воды размешать и процедить и отстаивать 10 мин, затем сливают верхнюю жидкость и добавляют новой  микроскопия Флотацией – основано на всплывании яиц в насыщенных р-рах солей. Метод Фюллеборна, метод Калантбян (р-р азотнокислого Na). Комбинированные – Метод Дарлинга центрифугирование смеси, затем добавляют флотационную жидкость из глицерина и NaCl. Метод Щербовича (флотационнаяя жидкостьть – сернокислая магнезия или гипосульфит Na). Метод культивирования личинок. Оставляют под стеклом увлажняя на 10-12 ч. А затем по Ветцеля-Орлова. Метод Фюллеборна: 5 г свежих фекалий помещают в стаканчик и тщательно размешивают с 20-кратным (по объему) количеством насыщенного раствора хлорида натрия, тщательно размешивают и процеживают через ситечко в другой стакан, затем отстаивают в течение 60 минут. После этого проволочной петлей диаметром 3 мм берут 2-3 капельки с поверхности флотационной пленки, помещают на предметное стекло, накрывают покровным и исследуют под микроскопом при среднем увеличении.	52. Мазок крови на предметном стекле На предметное стекло наносят исследуемый материал. Если материал жидкий и находится в бактериологической пробирке (бульонная культура), то из пробиркиего извлекают бактериологической петлей и распределяют по предметному стеклу на площади 2 кв. см, отжигая до и после использования бакпетлю, а края пробирки – до и после открытия. С агаровой культуры – на предметном стекле, смоченном физраствором. Из тканей готовят мазки-отпечатки: стерильно вырезают кусочек органа, поверхностью среза несколько раз касаются поверхности стекла. Мазок высушивают на воздухе. Мазок фиксируют для прикрепления бактериальных клеток к поверхности стекла и инактикации. Физический способ: обратной стороной стекла медленно проводят 2-3 раза над пламенем горелки. Химический: этанол 96 % на 10 мин., ацетон – на 5 мин., смесь этанола и эфира 1:1 на 10 минут.
53. Особенности взятия патматериала для гистологических исследований Согласно наставлениям, на гистологические исследования отправляют материал при подозрении на лейкоз, туберкулез, паратуберкулез, инфекционную анемию лошадей, лептоспироз для окраски по Левадиди. Берут по возможности свежий материал, пока не наступили аутолитические процессы. Для этого берут небольшие пластинки толщиной 0,5-1 см, площадью 3-4 кв. см и так, чтобы в пластинке была как измененная ткань, так и нормальная. Взятый материал тут же опускают в фиксирующий раствор, его объем должен быть в 10-15 раз превышать объем патматериала. Если кусочки органов плавают, то их покрывают 1 слоем марли. Самой доступной и простой жидкостью является 10 %-ный раствор формалина, 96 % спирт-ректификат, жидкость Рюгга, состоящая из 6 частей спирта-ректификата, 3 частей формалина и 1 части уксусной кислоты.	54. Приготовление мазков-отпечатков для ВСЭ и их окраска Мазки-отпечатки из свежего мяса практически не видны, краска в них не впитывается. Фиксированный на пламени мазок окрашивают 1 % арствором генцианового и метилиового фиолетового (2 мин), фиксируют раствором Люголя (1 мин), препарат обрабатывают в течение 30 с спиртом-ректификатом, промывают, окрашивают контрастной краской, например, фукцсином. Вновь промывают, высушивают и просматривают под микроскопом. Одни виды бактерий оказываются окрашенными первой краской – грамположительные, другие обесцвечиваются спиртом и принимают окраску контрольной краски – грамотрицательные. Такое деление бактерий отражает глубокие различия в их биологических свойствах.	55. Акушерская помощь при поперечном положении плода со спинным предлежанием Это редкая патология у коров, меры: 1) причина затягивания родов; 2) оказать акушерскую помощь. Предлежание – это предлежащие органы к выходу из таза. Положение – это отношение спины плода к спине матери. Вначале устраняют сухость родовых путей. Особенно важно установить, какой из поясов (плечевой или тазовый) находится ближе к входу в таз. Помощь акушера заключается в придании плоду правильного положения путем подтягивания тазового пояса и отталкивания передней половины тела или наоборот. Исправить спинное предлежание особенно трудно вследствие скользкости и гладкости предлежащих частей. Для подтягивания плода следует без промедления использовать все имеющиеся в распоряжении акушера крючки и щипцы. После надежного закрепления крючков по возможности ближе к тазу плода плечевой пояс отталкивают рукой. Когда постепенными перемещениями крючков и подтягиванием за хвост плоду удается придать тазовое предлежание, выправляют конечности и извлекают за них плод. Исправлять позицию обычно нет надобности, т. к. поперечное положение бывает преимущественно у мелких плодов. Если у роженицы отмечаются сильные схватки и потуги, то их снимают любой блокадой, использующейся при эндометритах или используют эпидуральную анестезию. Если плод мертв, то целесообразнее сразу же приступить к фетотомии – рассечению плода пополам.	56. Методы искусственного осеменения. Ректо-цервикальный метод Методы осеменения: 1) маточный (свиньи и кобылы); 2) влагалищный (КиМРС). Для коров используют цервикальный метод, т. е. сперму вводят в канал шейки матки на глубину 5-6 см. В 1 дозе дб. 10-15 млн. спермиев. Методы: 1) визоцервикальный – с помощью влагалищного зеркала (визуальный контроль) шприцем-катетером вводится сперма из гранулы в шейку матки (травматический); 2) маноцервикальный – массаж рукой влагалищной части шейки матки, левой рукой вводят шприц-катетер в шейку матки; 3) ректоцервикальный – правой рукой вводят шприц-катетер во влагалище по верхней его стенке, другую руку вводят в прямую кишку, захватывают шейку и направляют в нее конец пипетки (наиболее сложный, но и лучший). Преимущества метода: точно опеределяется состояние полового аппарата самки и ее готовность к осеменению (наличие граафовых пузырьков, регидность матки). Приемы захвата шейки матки: 1) охват рукой с контролем продвижения шприца-катетера мизинцем; 2) захватывают указательным и средним пальцем, а большим контролируют ввод; 3) прижимают рукой ко дну костного таза и под ладонью проводят катетер, контролируя его продвижение большим пальцем руки. После введения шейку матки захватывают всеми пальцами руки и легким вращательными движениями осторожно натягивают на пипетку. Выталкивают сперму вдоль всего цервикального канала. Проводят легкий массаж матки.
57. Организация и проведение массовой иммунизации животных п/к, в/м и энтеральным способами За сутки проводят клинический осмотр. Инструменты стерилизуют кипячением. Животных прививают в строгом соответствии с наставлением по применению препарата, в котором оговорены способ и место введения, доза, кратность вакцинации, возможные побочные реакции и др. Перед вакцинацией определяют годность препарата к применению. Особое внимание обращают на больных, истощенных, ослабленных, беременных животных или находящихся в период нескольких дней после родов. В процессе вакцинации соблюдают правила асептики и антисептики. После вакцинации составляют стандартный акт. За привитыми животными устанавливают наблюдение. При появлении осложнений (в ряде случаев прибегают к соответствующей терапии) или отсутствии эффекта препарат прекращают использовать и предъявляют рекламацию предприятию-изготовителю. Письмо-рекламацию с указанием условий хранения и порядка применения, образцы невскрытого биопрепарата отправляют на предприятие-изготовитель для повторного контроля. Препараты выбраковывают комиссионно, оформляют актом, выбракованные препараты уничтожают в соответствии с указанием на этот счет в наставлениях (как правило, автоклавированием или кипячением). Если не было реакции среди животных, то вакцина может быть неактивной.	58. Приготовить раствор формалина для проведения дезинфекции на 2000 кв. м, 2 %, расход 1 л/к.в м. Составить акт Требуется раствора: 2000 л: формалина – 100 л, вода – 1900 л. Акт: населенный пункт, хозяйство, район, область. Мы, нижеподписавшиеся (ФИО и должность), в присутствии (должность и ФИО представителя фермы) в период с до провели (тип) дезинфекцию по поводу неблагополучия ... помещений, предметов, жижесборников и прочие, проведена (метод и средство) при следующих режимах: концентрация препарата, Т в помещении и в растворе, расход на площадь или объем, закрытым помещение оставлено на .. ч, нейтрализатор и его концентрация при уничтожении остатков. Всего обработано, всего израсходовано. Контроль качества дезинфекции проведен (ФИО, результат исследования, №, заключение). Акт составлен на проведение дезинфекции и списания (наименование препарата и количество). Подписи: _______ /ФИО/ (3 шт.)	59. Организация и проведение лечения при инфекционных болезнях 1. Мероприятия в отношении возбудителя инфекции. 2. Мероприятия по устранению механизмов и факторов передачи возбудителей инфекции. 3. Мероприятия в отношении восприимчивых животных. 4. Организация противоэпизоотических мероприятий в неблагополучном пункте.	60. Лабораторное исследование материала от туши вынужденно убитых животных Делают мазки-отпечатки. С них производят посев на питательные среды. Короткий пестрый ряд. Длинный пестрый ряд. Исследование на сальмонеллез. См. 54.