Добавил:
Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:
Мастит КРС / реферат по английскому.doc
Скачиваний:
120
Добавлен:
30.05.2014
Размер:
137.41 Кб
Скачать

8.Идентификация возбудителя мастита.

Сбор чистых образцов молока для бактериологического исследования - единственный путь окончательно диагностировать инфекционный мастит и идентифицировать патогенный организм. Обязательна надлежащая техника в сборе чистого образца молока! Отдельные образцы обычно собираются с каждой четверти вымени. Удалите грязь и воду с сосков и вымени; вымойте и высушите руки; продезинфицируйте концы соска спиртом и/или маканием соска в дезсредство (сначала обработайте соски на противоположной от вас стороне ); удалите крышку обычной стерильной пробирки, позаботьтесь, чтобы предотвратить загрязнение внутри пробирки; соберите образец в пробирку под углом 45 градусов к соску (соберите сначала с ближних сосков); плотно закройте пробирку пробкой, и опустите соски.

Хранение патматериала: Охладите или держите взятые пробы молока на льду (если исследование произойдет меньше чем через 24 часа) или заморозьте образцы (при хранении больше чем 24 часа).

Исследование пробы: исследование проб требует специальной бактериологической среды, условия лаборатории и персонала с хорошей техникой в микробиологии. встряхните образец молока, чтобы поднять осевшие микробные клетки. В чашку с кровяным агаром помещают по 0.01 мл молока из каждой четверти, используя петлю или пипетку. Для выделения колиформных бактерий, в чашку с кровяным агаром или агаром МакКонкей сеют 0.1 мл молока из каждой. Культивирование проводят при 37 C в течение 48 часов.

Патоген или контоминант: Эти критерии предполагают, что использовалась хорошую технику при сборе бесплодного образца и в культивировании образцов. Пять или больше идентичных колоний от 0.01 мл молока (чистая культура) = скорей всего патоген. Пять или больше идентичных колоний от 0.01 мл молока (смешанная культура) = вероятно патоген. Меньше чем пять идентичных колоний от 0.01 молока мл = скорее всего контаминант.

Интерпритация: Streptococcus agalactiae и Staphylococcus aureus обычно является патогеном в любом количестве. Бацилла - обычно контаминант при любом количестве.

Испытания на чувствительность к антибиотикам: часто используются, чтобы определить, к каким антибиотикам бактерии наиболее чувствительны, изолированную от вымени. Однако, это требуют времени и дополнительные микробиологические методы. Для этого испытания используют или диски с антибиотиками или разведение антибиотиков в среде. Чувствительность к антибиотикам in vitro может не отражать чувствительность бактерии in vivo.

Summary

The following are the highlights of this review on methods for preventing and treating mastitis:

- There are several types of mastitis. It is to the dairyperson's advantage to be able to distinguish between the different types of mastitis and to be aware of the conditions that can promote the development of the microorganisms responsible.

- Many factors can predispose animals to mastitis: environmental, genetic, nutritional, physical, ethological and human factors. It is rarely possible to attribute the occurrence of mastitis to a single cause. Feed and milking hygiene, even during the dry period, are important factors.

- Somatic cell counts is a practical albeit imperfect way to detect mastitis. It has proven especially effective for observing the herd over the long term. On a daily basis, visual and physical examination of the udder remain as essential detection methods.

- Appropriate hygiene during milking, bedding and sufficient space for the animal, culling of repeatedly affected animals and adequate feed even during the dry period are ways to prevent mastitis.

Mastitis of all types is a disease that must be taken seriously.

Список литературы

1.Batra, T. R. and A. J. McAllister. 1984. A comparison of mastitis detection methods in dairy cattle. Can. J. Anim. Sci. 64:305.

2.Brown, C. A., S. J. Rischette, and L. H. Schultz. 1986. Relationship of milking rate to somatic cell count. J. Dairy Sci. 69:850.

3.Eberhart, R. J., et al. 1987. Current concepts of bovine mastitis. The National Mastitis Council, 3rd ed., Arlington, VA.

4.Emanuelson, U., T. Olsson, O. Holmberg, M. Hageltorn, T. Mattila, L. Nelson, and G. Astrom. 1987. Comparison of some screening tests for detecting mastitis. J. Dairy Sci. 70:880.

5.Jones, G. M., R. E. Pearson, G. A. Clabaugh, and C. W. Heald. 1984. Relationships between somatic cell counts and milk production. J. Dairy Sci. 67:1823.

6.LeVan, P. L., R. J. Eberhart, and E. M. Kesler. 1985. Effects of natural intramammary corynebacterium bovis infection on milk yield and composition. J. Dairy Sci. 68:3329.

7.McDonald, J. S. 1984. Streptococcal and staphylococcal mastitis. Sympos. Bovine Mastitis, Clin. North Am. Large Anim. Pract. 6:269.

8.Morin, D. E. et al. 1993. Economic analysis of mastitis monitoring and control program in four dairy herds. J. Am. Vet. Med. Assoc. 202:540.

9.Nickerson, S. C. 1993. Preventing new Staphylococcus aureus mastitis. Vet. Med. 88:368.

10.Politis, I. and K. F. Ng-Kwai-Hang. 1988. Effects of somatic cell count and milk composition on cheese composition and cheese making effeiciency. J. Dairy Sci. 71:1711.

11.Smith, K. L. 1983. Mastitis control: a discussion. J. Dairy Sci. 66:1790.

12.Anderson, K. L.(ed) 1993. Update on bovine mastitis. Vet. Clin. N. amer. Food. Anim. Pract., Vol. 9, No. 3.

20