5. Основные свойства микобактерий туберкулеза.

Ученые не прекращают интенсивный поиск эффективных и нетрудоемких методов диагностики туберкулеза: испытывают туберкулезные антигены для серологических исследований и более современные методы — иммуноферментный анализ (ИФА), полимеразно-цепную реакцию (ПЦР), метод дактилос­копии и др.

Согласно методическим указаниям диагноз на туберкулез счи­тают установленным, если выделена культура возбудителя из патматериала или получены положительные результаты биопробы. У крупного рогатого скота, буйволов и верблюдов диагноз также считают установленным при обнаружении в органах и тканях из­менений, типичных для туберкулеза. В пунктах, неблагополучных по туберкулезу, всех животных, положительно реагирующих на туберкулин, считают больными туберкулезом.

ЗАДАНИЕ ДЛЯ САМОСТОЯТЕЛЬНОЙ РАБОТЫ

В период производственной практики освоить методы туберкулинизации животных разных видов и составление отчетной доку­ментации.

Занятие 24. Профилактика и ликвидация туберкулеза

Цель занятия: изучить систему профилактических и оздоровительных ме­роприятий при туберкулезе.

Материалы и оборудование: действующие Правила по профилактике и ликви­дации туберкулеза, биопрепараты, дезсредства.

Место проведения занятия: аудитория кафедры эпизоотологии.

МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ

Профилактические и оздоровительные мероприятия при ту­беркулезе животных регламентированы Правилами, утвержден­ными Департаментом ветеринарии МСХ РФ (далее приведены основные положения).

Профилактические мероприятия. В группу этих мероприятий входят ежегодный клинический осмотр животных и плановые профилактические туберкулинизации:

коров и быков-производителей исследуют 2 раза в год: весной, перед выгоном на пастбище, и осенью, перед переводом на зимнее содержание;

молодняк крупного рогатого скота (начиная, с 2-месячного воз­раста) и поголовье откормочных групп — 1 раз в год;

лошадей, мулов, ослов, овец и коз — в зависимости от эпизоо­тической обстановки;

взрослых свиноматок и молодняк после отъема в племенных, хозяйствах — 1 раз в год, остальное поголовье свиноферм — в зависимости от эпизоотической обстановки;

взрослых птиц (старше 2 лет) исходных линий и прародительских стад на племенных заводах и селекционно-племенных птицеводческих станциях — 1 раз в год.

Животных, принадлежащих гражданам, исследуют на туберку­лез одновременно с поголовьем хозяйств.

При выявлении в благополучном хозяйстве животных, реагиру­ющих на туберкулез, их дополнительно исследуют глазным и внутривенным способами. Реагирующих на офтальмо- или внут­ривенную пробу убивают с диагностической целью. При обнару­жении хотя бы у одного из животных изменений, типичных для туберкулеза, диагноз считают установленным.

( При отсутствии животных с положительной офтальмо- или внутривенной пробой все поголовье (в том числе животных, ранее реагировавших на внутрикожную туберкулинизацию) через 30...45 I дней проверяют симультанной аллергической пробой с применением ППД для млекопитающих, КАМ или ППД для птиц. Если в данном стаде (на ферме) не выявлено животных, реагирующих на туберкулин для млекопитающих, или у реагирующих на этот пре­парат утолщение кожной складки во всех случаях выражено в большей степени на КАМ или туберкулин для птиц, стадо счита­ют благополучным по туберкулезу.

При выявлении в благополучном хозяйстве свиней или овец (коз), реагирующих на туберкулин, 3...5 животных с наиболее вы­раженными реакциями убивают с диагностической целью. Неза­висимо от наличия или отсутствия патологоанатомических изме­нений отбирают материал для бактериологического исследования. Диагноз на туберкулез считают установленным, если из биомате­риала выделена культура возбудителя туберкулеза птичьего или человеческого вида или получен положительный результат био­пробы. У животных других видов диагноз на туберкулез устанав­ливают на основании результатов патологоанатомических и бакте­риологических исследований.

Оздоровительные мероприятия. Хозяйство (ферму, отделение, птичник, населенный пункт и т. д.), в котором установлен тубер­кулез, решением местной администрации объявляют неблагопо­лучным и вводят комплекс ограничений, предупреждающих рас­пространение болезни. Одновременно утверждают комплексный план оздоровления неблагополучного хозяйства (фермы, стада и т.д.).

Животных, реагирующих на туберкулин, немедленно изолиру­ют и в течение 15 дней сдают на убой независимо от племенной и производственной ценности.

Животных, больных туберкулезом, и полученный от них при­плод запрещается использовать для воспроизводства стада.

Сырое молоко, полученное от коров неблагополучного по ту­беркулезу стада (фермы), запрещается продавать на рынках, по­ставлять в столовые, лечебно-профилактические, детские и школьные учреждения.

Молоко от коров, реагирующих на туберкулин, обеззаражива­ют кипячением или перерабатывают на топленое масло-сырец. Молоко от коров с отрицательной туберкулиновой пробой не­посредственно в хозяйстве пастеризуют при температуре 90 "С в течение 5 мин или при 85 °С в течение 30 мин, а при отсутствии пастеризаторов кипятят, после чего вывозят на молокозавод или используют внутри хозяйства.

Убой больных туберкулезом животных на месте (в хозяйстве) разрешается только на оборудованной площадке (пункте) под контролем ветеринарного врача с соблюдением мер личной про­филактики и правил, исключающих разнос возбудителя инфек­ции.

Пастбищные участки, на которых выпасали неблагополучные по туберкулезу стада, разрешается использовать для здоровых жи­вотных через 2 мес в южных районах страны и через 4 мес — в ос­тальных районах.

Непроточные водоемы разрешается использовать для водопоя здорового скота через 4 мес после того, как их прекратили исполь­зовать для водопоя больных туберкулезом животных.

В оздоровительные мероприятия обязательно входят текущая дезинфекция (помещений, загонов, выгульных площадок, обору­дования, инвентаря и других объектов), дезинсекция и дератиза­ция. Навоз обеззараживают одним из способов.

Для оздоровления стад крупного рогатого скота используют следующие методы:

единовременную полную замену поголовья неблагополучного стада (фермы) здоровыми животными;

систематические диагностические исследования с выделением больных животных или целых неблагополучных групп и последу­ющим их убоем.

В обоих случаях обязателен комплекс организационных, хозяй­ственных и ветеринарно-санитарных мероприятий.

Метод единовременной полной замены поголовья применяют тогда, когда туберкулез впервые установлен в районе, области, республике и при заболевании более 15 % поголовья. В этом слу­чае поступают следующим образом:

прекращают аллергические исследования скота на туберкулез;

не осеменяют коров и телок;

все молоко пастеризуют при 85 °С в течение 30 мин или при 90 °С в течение 5 мин, после чего дают откормочным телятам или отправляют на молокоперерабатывающее предприятие;

в течение 6 мес все поголовье неблагополучного стада вместе с молодняком сдают на убой. В первую очередь отправляют на мя­сокомбинат откормочное поголовье, непродуктивных коров, во­лов и молодняк;

помещения, освободившиеся от скота, дезинфицируют 3%-ми растворами формальдегида и каустической соды.

После выполнения ветеринарно-санитарных мероприятий, заключительной дезинфекции всех помещений и лабораторной проверки ее качества с фермы снимают ограничения.

При заболевании туберкулезом менее 15 % поголовья для оздо­ровления применяют метод систематических исследований с убо­ем больных животных:

все поголовье начиная с 2-месячного возраста каждые 45...60 дней исследуют двойной внутрикожной туберкулиновой пробой. Одновременно исследуют на туберкулез животных других видов, находящихся в хозяйстве (в том числе собак и кошек): реагирую­щих на туберкулин признают больными, изолируют и в течение 15 дней сдают на убой (собак и кошек подвергают эутаназии).

Если по всему стаду получены подряд два отрицательных ре­зультата аллергической пробы, животных ставят на 6-месячное контрольное наблюдение, в период которого дважды исследуют туберкулиновой пробой с интервалом 3 мес. При отрицательных результатах контрольного исследования и выполнении комплекса ветеринарно-санитарных мероприятий ферму (стадо) объявляют благополучной по туберкулезу.

При установлении туберкулеза среди крупного рогатого скота частного сектора все поголовье исследуют внутрикожной аллерги­ческой пробой каждые 45...60 дней до получения двукратных (подряд) отрицательных результатов по всему стаду. Реагирующих животных сдают на убой. При отсутствии новых случаев заболева­ния все поголовье частного сектора считают благополучным по туберкулезу. Ветеринарно-санитарные мероприятия в населенных пунктах проводят в соответствии с Правилами по профилактике и ликвидации туберкулеза животных.

При установлении туберкулеза в свиноводческих хозяйствах всех реагирующих на туберкулин животных, в том числе и супо­росных свиноматок, хряков, откормочное поголовье, сдают на убой. По завершении опоросов и откорма молодняка сдают на убой все поголовье фермы — не позднее 6 мес с момента установ­ления диагноза на туберкулез. После выполнения комплекса ветеринарно-санитарных мероприятий с фермы снимают ограниче­ния.

При установлении туберкулеза у лошадей, овец и коз всех реа­гирующих на туберкулин животных убивают. Оставшееся поголо­вье исследуют: лошадей—глазной пробой, овец и коз — внутри-кожной каждые 45...60 дней до получения однократного отрица­тельного результата, после чего животных соответствующей груп­пы признают здоровыми.

При установлении туберкулеза у пушных зверей их осматрива­ют клиническим методом, больных самок вместе с приплодом изолируют. В период созревания шкурок зверям ежедневно скарм­ливают тубазид в лечебной дозе. После убоя шкурки используют без ограничений. Остальным животным неблагополучной группы добавляют в корм тубазид в профилактической дозе. Для иммуни­зации норок используют вакцину БЦЖ.

Звероводческое хозяйство считают благополучным по туберку­лезу, если в течение сезона от родов до убоя у павших и убитых с диагностической целью зверей не находят типичных для туберку­леза изменений органов и тканей. Ограничения с хозяйств снима­ют после выполнения ветеринарно-санитарных мероприятий.

В птицеводческих хозяйствах при установлении туберкулеза все поголовье неблагополучного птичника (цеха) сдают на убой, после соответствующих ветеринарно-санитарных мероприятий снимают ограничения и формируют новое стадо из здоровых мо­лодок. Яйца от птиц неблагополучного птичника (цеха) не ис­пользуют для инкубации, а сдают на хлебопекарные и конди­терские предприятия.

ЗАДАНИЯ ДЛЯ САМОСТОЯТЕЛЬНОЙ РАБОТЫ

1. Изучить Правила по профилактике и ликвидации туберкуле­за животных.

2. Составить план оздоровления мелочно-товарной фермы.

Занятие 25. Диагностика бруцеллеза

Цель занятия: изучить методы диагностики бруцеллеза.

Материалы и оборудование: безыгольный инъектор или набор для аллергичес­ких исследований, набор для постановки РБП, иглы для взятия крови, набор диагностикумов, позитивных сывороток, антигенов, противобруцеллезные вакци­ны; бруцеллин ВИЭВ, дезсредства.

Место проведения занятия: лаборатория кафедры эпизоотологии.

МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ

Бруцеллез — хронически протекающая инфекционная болезнь животных, вызываемая бактериями рода Brucella, в который вхо­дят 6 самостоятельных видов: В. melitensis — возбудитель бруцел­леза у коз и овец, В. abortus — у крупного рогатого скота, В. suis — у свиней, северных оленей, зайцев, В. ovis—у овец, В. canis—y со­бак, В. neotomae — у древесных крыс. В. melitensis и В. abortus могут мигрировать на животных других видов. От больных животных могут заразиться люди, для которых наиболее опасен возбудитель бруцеллеза овец и коз.

Диагноз на бруцеллез основан на результатах бактериологичес­ких, серологических, аллергических исследований и клинико-эпизоотических данных.

Клинические признаки болезни у животных нехарактерны — аборты, артриты, бурситы, эндометриты, вагиниты, орхиты, эпидидимиты могут встречаться при многих других заболеваниях.

Патологоанатомические изменения при бруцеллезе также мало­характерны. Самый надежный и точный диагноз—лабораторный, т. е. выделение и дифференциация возбудителя.

При лабораторных исследованиях возбудителя обнаруживают тремя методами: бактериоскопией мазков, выделением чистой культуры из исходного материала и, при необходимости, методом биопробы на морских свинках.

Мазки окрашивают по Граму, Козловскому, Шуляку—Шину, Стампу. Бруцеллы — мелкие грамотрицательные коккобактерии, располагаются попарно или кучно. При окраске по Козловскому, Шуляку—Шину, Стампу клетки бруцелл красного цвета.

Для культивирования бактерий используют мясопептонный печеночный бульон (МППБ), печеночно-глюкозо-глицериновый бульон (ПГГБ), картофельный агар и др. Посевы помещают в тер­мостат при 37...38 °С и просматривают каждые 3...4 дня до 30 дней. В бульоне бруцеллы образуют равномерное помутнение и пристеночное кольцо, в дальнейшем — небольшой осадок на дне про­бирки. На агаре растут в виде мелких блестящих выпуклых про­свечивающихся колоний сероватого оттенка. Выделенные культу­ры идентифицируют в реакции агглютинации (РА) на стекле с по­зитивной бруцеллезной сывороткой.

Для биопроб используют двух морских свинок массой 350...400 г, предварительно проверенных на бруцеллез серологи­ческим методом (отрицательный результат РА в разведении 1 : 5).

Суспензию исходного материала на стерильном физиологичес­ком растворе (соотношение 1:10) вводят подкожно с внутренней стороны бедра морским свинкам в дозе 1 мл. На 15, 25, 40-й день сыворотки крови свинок исследуют в пробирочной РА в разведе­нии от 1 : 10 до 1 : 80. При положительной РА (в разведении 1 : 10 и выше) морских свинок убивают, материал от них исследуют бак­териологическим методом. При отрицательной РА биопробу счи­тают отрицательной.

При массовых исследованиях большое значение имеют сероло­гические и аллергические методы диагностики бруцеллеза:

у крупного рогатого скота, яков, зебу, буйволов — серологичес­кий: РА в пробирках, реакция связывания комплемента (РСК) или реакция длительного связывания комплемента (РДСК), плас­тинчатая реакция агглютинации с Роз-Бенгал антигеном — Роз-Бенгал проба (РБП), кольцевая реакция с молоком (КР), реакция иммунодиффузии с О-ПС-антигеном (РИД);

у овец, коз, оленей, маралов, лошадей, верблюдов—серологи­ческий: РА, РСК/РДСК, РБП; аллергический;

у свиней — серологический: РСК/РДСК, РБП; аллергический;

у собак и животных других видов — серологический: РА, РСК.

Повторно животных исследуют на бруцеллез серологическим методом через 15...30 дней, аллергическим — через 25...30 дней.

Коров (нетелей), буйволиц, верблюдиц исследуют независимо от периода беременности, овцематок (козематок) и свиноматок— через 1...2 мес после родов, молодняк животных всех видов — на­чиная с 4-месячного возраста.

Крупный и мелкий рогатый скот, иммунизированный против бруцеллеза, исследуют в порядке и в сроки, предусмотренные на­ставлением по применению вакцины, и оценивают их состояние

по бруцеллезу.

Заболевание бруцеллезом считают установленным при выделе­нии культуры бруцелл из биоматериала, положительной биопробе или при положительных результатах следующих серологических исследований невакцинированных животных: крупного рогатого скота (буйволов, яков, зебу), верблюдов и лошадей — одновремен­но в РИД и РА с титром антител 200 МЕ/мл и выше; овец и коз — в РА с титром антител 100 МЕ/мл и выше; оленей (маралов) и со­бак—в РА с титром антител 50 МЕ/мл и выше; животных всех видов — в РСК в разведении сыворотки 1 : 5 и выше.

При положительных результатах серологических исследований невакцинированных животных: крупного рогатого скота (буйво­лов, яков, зебу), верблюдов, лошадей — только в РА с титром ан­тител 50...100 МЕ/мл; овец, коз, оленей (маралов) в РА с титром антител 25...50 МЕ/мл — обследуют повторно через 15...30 дней. При повышении титров заболевание считают установленным;

если титры остались прежними, прибегают к дополнительным ис­следованиям (согласно утвержденным Правилам).

Заболевание считают установленным, если в неблагополучных по бруцеллезу стадах крупного рогатого скота выявлены ранее не вакцинированные животные, положительно реагирующие в РА с титром антител 100 МЕ/мл и выше или (и) в РСК (РДСК) в разве­дении 1 : 5 и выше.

Иммунизированные отары овец и коз признают неблагополуч­ными по бруцеллезу при положительном результате бактериоло­гического исследования абортированных плодов или положитель­ной биопробе, а также при выявлении среди баранов-производи­телей, пробников и ярок животных, положительно, реагирующих в РА с титром антител 100 МЕ/мл и выше, РСК в разведении сыво­ротки 1 : 5 и выше.

Свиней признают больными бруцеллезом, если аллергическая проба подтверждается положительной РСК.

Бруцеллин вводят свиньям с наружной стороны ушной рако­вины в дозе 0,2 мл. Реакцию учитывают через 24 и 48 ч пальпа­цией места инъекции. У больных животных на месте введения аллергена отмечают воспалительную реакцию в виде припухло­сти плотной или тестоватой консистенции. У здоровых местная реакция отсутствует.

Результаты обследования крупного рогатого скота в РИД и КР оценивают в соответствии с наставлениями по постановке и учету этих реакций.

ЗАДАНИЯ ДЛЯ САМОСТОЯТЕЛЬНОЙ РАБОТЫ

1. Исследовать под микроскопом готовые препараты.

2. Описать рост культуры бруцелл на питательных средах.

3. Оценить результаты заранее поставленных РА в пробирке и КР с молоком.

4. Поставить и учесть РБП на бруцеллез (рис. 8).

Занятие 26. Профилактика и ликвидация бруцеллеза

Цель занятия: изучить систему профилактических и оздоровительных меро­приятий при бруцеллезе.

Материалы и оборудование: действующие Правила по профилактике и ликви­дации бруцеллеза, дезсредства.

Место проведения занятия: аудитория кафедры эпизоотологии.

МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ

Мероприятия в благополучных хозяйствах и населенных пунктах.

В плановом порядке обязательно исследуют на бруцеллез быков-производителей, коров, буйволов, зебу, яков, верблюдов, оленей (маралов) и телок в возрасте старше 1 года, баранов-производите­лей, овцематок (козематок), оставшихся без ягнят (козлят), хряков и свиноматок.

Лошадей и других животных исследуют в хозяйстве, неблагопо­лучном по бруцеллезу, при выявлении признаков, дающих осно­вание подозревать у них данное заболевание (бурситы и др.), а также перед снятием ограничений с фермы, признанной благопо­лучной по бруцеллезу. Положительно реагирующих на бруцеллез лошадей направляют на убой.

В звероводческих хозяйствах ветеринарный контроль заключа­ется в бактериологических исследованиях абортированных плодов.

В благополучных зонах, где не применяют противобруцеллезные вакцины или с момента окончания иммунизации взрослого поголовья крупного рогатого скота прошло более 4 лет, животных на бруцеллез исследуют в РА 1 раз в год перед переводом на стой­ловое содержание.

В хозяйствах, поставляющих молоко в детские и медицинские лечебные учреждения, санатории, дома отдыха и торговую сеть по прямым связям, крупный рогатый скот исследуют на бруцеллез 2 раза в год в РА и РСК или в РА и РИД (весной и перед переводом на стойловое содержание).

В племенных хозяйствах быков исследуют на бруцеллез 2 раза в год в РА и РСК или РА и РИД.

Всех животных, поступивших из других областей, исследуют в период карантина в РА и РСК. или РА и РИД (свиней в РСК/ РДСК и аллергическим методом).

Откормочное поголовье крупного и мелкого рогатого скота об­следуют на бруцеллез перед сдачей на убой, но не ранее чем за 30 дней до отправки на мясокомбинат.

Мероприятия в неблагополучных пунктах. При установлении диагноза на бруцеллез местной администрации представляют про­ект решения о наложении ограничений и план оздоровления хо­зяйств от бруцеллеза.

Необеззараженное молоко, полученное от коров неблагополуч­ного хозяйства, запрещается сдавать на молокоперерабатывающие предприятия, продавать на рынках, использовать в сети обще­ственного питания и т. д. до полной ликвидации болезни и снятия ограничений. Такое молоко подлежит первичной обработке не­посредственно в хозяйстве.

Молоко от коров с положительным результатом серологичес­ких исследований на бруцеллез обеззараживают кипячением или перерабатывают на топленое масло-сырец с соблюдением сани­тарных требований к производству пищевых продуктов.

Аналогично поступают с молоком, полученным в благополуч­ных хозяйствах (населенных пунктах) от коров с положительным результатом исследований на бруцеллез до тех пор, пока не будет установлен (исключен) диагноз на эту болезнь.

Кипяченое молоко разрешается использовать в пищу, но зап­рещается поставлять в лечебно-профилактические, детские и школьные учреждения.

Молоко от коров с отрицательным результатом исследований

бруцеллез обеззараживают при температуре 70 "С в течение О мин, при температуре 85...90 "С в течение 20 с или кипячением.

Необеззараженное молоко (кроме молозива) и обезжиренное молоко запрещается использовать для кормления молодняка жи­вотных.

Молоко- и маслозаводы отпускают хозяйствам обезжиренное молоко пастеризованное или термически обработанное. Пахту и обезжиренное молоко, полученные при изготовлении топленого масла, используют в корм только животным данной фермы, зап­рещается давать их животным благополучных ферм и вывозить в другие хозяйства.

Молоко овец и коз с ферм, неблагополучных по бруцеллезу, запрещается использовать в пищу и для переработки.

Для оздоровления хозяйств применяют следующие схемы:

полностью ликвидируют поголовье неблагополучного хозяй­ства и санируют помещения, территорию ферм, пастбищ, водо­емов и т. д.;

иммунизируют скот согласно утвержденным наставлениям по применению вакцин с последующим систематическим исследова­нием.

Метод полной замены неблагополучного поголовья применяют в следующих случаях:

при установлении бруцеллеза в благополучных областях, рес­публиках;

при установлении бруцеллеза в благополучных районах небла­гополучных областей, краев, республик, если в районах скот не иммунизирован против бруцеллеза;

при остром течении болезни, сопровождающемся массовыми абортами, а также если не удалось полностью ликвидировать бо­лезнь в течение 2...5 календарных лет с помощью вакцинации.

Метод оздоровления неблагополучных хозяйств с использова­нием противобруцеллезных вакцин применяют по согласованию с Департаментом ветеринарии МСХ РФ в районах, областях, краях и республиках, где широко распространено заболевание.

Хозяйство, занимающееся разведением крупного рогатого ско­та, признают благополучным по бруцеллезу в следующих случаях:

при полной ликвидации неблагополучного поголовья, после санации животноводческих помещений и если дважды с интерва­лом 30 дней были получены отрицательные результаты серологи­ческих исследований на бруцеллез, включая собак, контактиро­вавших с поголовьем неблагополучной фермы, и скот, принадле­жащий жителям данного населенного пункта;

при использовании в системе оздоровления противобруцеллез­ных вакцин и получении двукратных (с интервалом 30 дней) отри­цательных результатов серологических исследований всего пого­ловья крупного рогатого скота данного хозяйства, животных всех других видов, контактировавших с неблагополучным поголовьем включая скот, принадлежащий жителям данного населенного пункта, а также после санации помещений, территорий ферм, па­стбищ и водопоя.

При установлении заболевания овец (коз) бруцеллезом в ста­ционарно благополучных районах, областях, краях, республиках неблагополучное поголовье независимо от форм собственности вместе с приплодом немедленно направляют на убой. Остальное поголовье овец (коз), контактировавшее с неблагополучной ота­рой, исследуют серологическим методом двукратно с интервалом 30 дней.

Ограничения снимают при отрицательном результате исследо­ваний, а также после убоя неблагополучной отары, санации тер­ритории ферм и животноводческих помещений.

Неблагополучные по бруцеллезу буйволоводческие, яководческие, зебуводческие и верблюдоводческие фермы (стада) оздо­равливают в таком же порядке, как и стада крупного рогатого скота.

На фермах и комплексах, где установлено заболевание сви­ней бруцеллезом, все поголовье, в том числе и молодняк, сдают на убой (супоросных свиноматок—после окончания опороса и отъема поросят). Очаг бруцеллеза ликвидируют в течение не бо­лее 6 мес. На неблагополучной ферме запрещено осеменять свиноматок.

Чтобы выявить очаги бруцеллеза среди северных оленей, при­бегают к клиническому осмотру поголовья. Животных с признака­ми заболевания (аборты, орхиты, эпидидимиты, бурситы и др.) выделяют из стада, исследуют на бруцеллез серологическим мето­дом (РБП или РА и РСК, РДСК), в случае положительной реак­ции — направляют на убой. Кроме того, у взрослых оленей, посту­пивших на убой на мясо, также берут кровь для серологического исследования на бруцеллез. Оленей в неблагополучных по бруцел­лезу стадах исследуют серологическим методом и 1 раз в квартал клиническим методом.

Хозяйство (стадо оленей) признают благополучным по бру­целлезу, если в течение последних 2 лет в нем не было выявлено животных с клиническими признаками заболевания, при серо­логическом исследовании получены отрицательные результаты и в хозяйстве выполнены ветеринарно-санитарные мероприя­тия.

В звероводческих хозяйствах, где установлен бруцеллез, живот­ных исследуют 1 раз в месяц серологическим методом. Положи­тельно реагирующих зверей (самок вместе с пометом) содержат в изоляторе до убоя на мех. Ограничения снимают после убоя поло­жительно реагирующих животных, получения отрицательных ре­зультатов серологических исследований оставшихся зверей и са­нации помещений фермы.

Если бруцеллез установлен среди крупного рогатого скота част­ных ферм, ^все поголовье исследуют серологическим методом (РА рсК или РА и РИД) до получения двукратных отрицательных на неблагополучных фермах обязательны дезинфекция, дезин­секция, дератизация, санитарный ремонт животноводческих по­мещений и другие ветеринарно-санитарные мероприятия в соот­ветствии с действующими Правилами.

Для дезинфекции применяют 20%-ю взвесь свежегашеной из­вести, взвесь или осветленный раствор хлорной извести, содержа­щий 2 % активного хлора, препарат ДП-2, 2%-й горячий раствор гидроксида натрия, 3%-й горячий раствор каустифицированной содопоташной смеси, 2%-й раствор формальдегида, 5%-й горячий раствор кальцинированной соды, 0,5%-й раствор глутарового аль­дегида, 5%-й раствор технического фенолята натрия, растворы нейтрального гипохлорита кальция, тексанита, содержащие 3 % активного хлора.

Очищенные и герметически закрытые помещения дезинфици­руют в отсутствие животных аэрозольным методом с помощью 40%-го водного раствора формальдегида.

Навоз обеззараживают одним из способов в порядке, предус­мотренном Рекомендациями по обеззараживанию навоза в хозяй­ствах, неблагополучных по туберкулезу и бруцеллезу.

ЗАДАНИЕ ДЛЯ САМОСТОЯТЕЛЬНОЙ РАБОТЫ

Составить план оздоровительных мероприятий в хозяйстве, не­благополучном по бруцеллезу крупного рогатого скота.

Занятие 27. Диагностика, профилактика и ликвидация ящура

Цель занятия: изучить методы диагностики ящура и систему профилактичес­ких и оздоровительных мероприятий.

Материалы и оборудование: действующие Правила по профилактике и ликви­дации ящура, вакцины против ящура, плакаты, слайды, кинофильм «Ящур сельскохозяйственных животных».

Место проведения занятия: аудитория кафедры эпизоотологии.

МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ

Ящур — высококонтагиозная, остропротекающая болезнь до­машних и диких парнокопытных животных, вызываемая афтовирусом из семейства Picornaviridae.

Методы диагностики. Диагноз устанавливают на основании эпизоотологческих данных, клинических признаков, патологоанатомических изменений и результатов лабораторных иссле­дований.

При анализе эпизоотологических данных учитывают все связи хозяйства далеко за пределами республики, а также возможность передачи вируса перелетными птицами, транспортом, даже не связанным с животными.

По клиническим признакам во многих случаях удается устано­вить точный диагноз. Первый симптом заболевания — повышение температуры тела до 41 °С. У больных отмечают учащение пульса покраснение слизистой оболочки ротовой полости, конъюнктивит ты, отечность венчика копыт. При появлении в ротовой полости афт у животных обильно выделяется слюна, отмечают своеобраз­ное причмокивание. При поражении конечностей животное часто переступает.

Наряду с доброкачественным наблюдают и злокачественное те­чение болезни, особенно у телят, которое характеризуется силь­ной депрессией и слабостью, иногда гастроэнтеритом, тахикарди­ей и параличом сердца.

У овец ящур протекает легче, чем у крупного рогатого скота, почти всегда с высокой температурой (40...41,5 °С), через 3 дня в ротовой полости появляются везикулы и затем афты. Слюнотече­ния не бывает. Поражаются дистальные отделы конечностей, в ре­зультате возникает хромота.

Ящур у свиней проявляется образованием афт на пятачке, вы­мени и на венчике копытец. Животные много лежат, передвига­ются ползком, опираясь на запястные суставы; иногда спадает ро­говой башмак.

Для лабораторных исследований отправляют (с нарочным) афтозный материал — не менее 5 г. У крупного рогатого скота берут стенки созревших непрорвавшихся афт с языка, у свиней — с пя­тачка или вымени, у овец и коз — с беззубого края верхней челюс­ти. Материал помещают во флакон с консервирующей жидко­стью, состоящей из смеси равных частей химически чистого гли­церина и фосфатно-буферного раствора (рН 7,4...7,6).

Вирус ящура идентифицируют с помощью серологических ре­акций: РСК, РДСК, РУСК (реакция ускоренного связывания комплемента), РДП, РПГА (реакция пассивной гемагглютинации).

При определении типов и вариантов используют также биоло­гические методы исследований — проверяют перекрестный имму­нитет переболевших и вакцинированных животных, ставят реак­цию серозащиты на мышатах-сосунах, РН-вируса в культуре кле­ток.

В трудных случаях патологический материал разрешается ис­следовать методом биопробы на морских свинках или восприим­чивых сельскохозяйственных животных

1. Схема противоэпизоотических мероприятий при ящуре

Профилактические и оздоровительные мероприятия. Все мероп­риятия организуют строго по инструкции «О мероприятиях по предупреждению и ликвидации заболевания животных ящуром», 1985 г. (схема 1). Их успех во многом зависит от правильности оп­ределения границ эпизоотического очага, неблагополучного пунк­та и угрожаемой зоны. Строгих критериев для определения границ эпизоотического очага нет, в каждом конкретном случае необхо­дим тщательный эпизоотологический анализ.

ЗАДАНИЕ ДЛЯ САМОСТОЯТЕЛЬНОЙ РАБОТЫ

Решить эпизоотологическую задачу.

На мелочно-товарных фермах шести хозяйств одновременно заболели телята. При эпизоотологическом обследовании установ­лено, что все хозяйства находятся в зоне обслуживания одного мо­локозавода. Молоко из хозяйств поступало на молокозавод, отку­да хозяйства получали обезжиренное молоко, которое использова­ли в корм телятам без пастеризации.

При клиническом исследовании коров в хозяйствах—постав­щиках молока в одном из них выделено несколько животных, у которых на слизистой верхней губы и языке обнаружены афты и заживающие эрозии.

1. Установить предварительный диагноз.

2. Назначить дополнительные исследования для уточнения ди­агноза.

3. Определить границы эпизоотического очага, неблагополуч­ного пункта и угрожаемой зоны.

4. Составить проект решения о наложении карантина.

5. Разработать план противоэпизоотических мероприятий.

Занятие 28. Диагностика, профилактика и ликвидация бешенства

Цель занятия: изучить методы диагностики бешенства, систему профилакти­ческих и оздоровительных мероприятий.

Материалы и оборудование: мазки из ткани мозга с тельцами Бабеша—Негри, положительные реакции преципитации в агаровом геле, диапозитивы, кинофиль­мы, плакаты, образцы вакцин, ветеринарное законодательство.

Место проведения занятия: аудитория кафедры эпизоотологии.

МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ

Бешенство — острая болезнь, вызываемая вирусом из семей­ства Rabdoviridae, опасная для всех теплокровных животных и че­ловека.

Методы диагностики. Диагноз устанавливают на основании

эпизоотологических данных, клинических наблюдений, патолого-анатомического и лабораторного исследований.

При эпизоотологическом исследовании принимают во внимание характер эпизоотической ситуации в данной местности и сосед­них районах, учитывают сезонность болезни и данные анамнеза, свидетельствующие о нападении или появлении подозрительных по заболеванию диких хищников или собак.

Из клинических признаков наиболее важны непровоцируемая аг­рессивность, парезы и параличи, развивающиеся в определенной последовательности. При изучении клинической картины необходимо иметь в виду атипичную форму болезни, или так называемое <лисье бешенство», которое у крупного рогатого скота протекает Кратковременно и проявляется клинически в основном тимпаний а также парезами и параличами.

Лабораторные методы диагностики бешенства имеют исклю­чительно важное значение. В лабораторию с нарочным направля­ют трупы целиком или головы мелких животных, а от крупных— головы. Трупы, головы пересылают в двойных полиэтиленовых мешках, в металлических контейнерах или в другой влагонепро­ницаемой таре. При взятии и упаковке материала обязательно со­блюдают меры предосторожности: работают в перчатках, защит­ных очках, тщательно моют руки с мылом.

Комплексный лабораторный анализ включает в себя гистологи­ческое исследование с целью обнаружения телец-включений Бабе­ша—Негри, серологическое — РП в агаровом геле, метод флюорес­цирующих антител и биопробу на белых мышах-сосунах или кроли­ках. Обнаруженный вирус идентифицируют в РН на мышах.

Разработаны новые методы диагностики бешенства — радиоим­мунный анализ (РИА), экспресс-диагностика методом иммуноферментного анализа (ИФА). Перспективна идентификация ви­руса с помощью наборов моноклональных антител.

При дифференциальной диагностике необходимо исключить болезнь Ауески, у собак—нервную форму чумы и у лошадей— инфекционный энцефаломиелит.

Профилактические и оздоровительные мероприятия. Все мероп­риятия регламентированы действующими Правилами и в основ­ном сводятся к следующему.

Контролируют и регулируют численность диких хищных жи­вотных, отлавливают бродячих собак и кошек. По рекомендации МЭБ (1976 г.) в неблагополучной по бешенству местности количе­ство лис не должно превышать 1 ...2 особи на 10 км².

Ведут строгий учет домашних кошек и собак, регламентируют условия их содержания.

Во всех населенных пунктах РФ всех собак независимо от их принадлежности, а в некоторых случаях и кошек обязательно вакцинируют против бешенства. В нашей стране применяют сле­дующие вакцины: сухую инактивированную этанол-вакцину (ВГНКИ); сухую культуральную инактивированную вакцину из штамма «Щелково-51»; культуральную лиофилизированную и культуральную сорбированную вакцину из штамма ТС-80 (ВНИ-ИВВиМ); вирусвакцину для оральной иммунизации плотоядных животных против бешенства (синраб) (ВНИИЗЖ).

В зонах стационарного неблагополучия по бешенству диких хищников необходима плановая профилактическая вакцинация крупного рогатого скота. При наличии хозяйственных возможнос­ти 2 раза в год (февраль-апрель и октябрь—декабрь) иммунизируют диких хищников оральным методом.

При установлении бешенства на населенный пункт накладыва­ют карантин и приступают к оздоровительным мероприятиям со­гласно действующим Правилам.

Карантин снимают решением органов местной администрации через 2 мес со дня последнего случая заболевания при условии вы­полнения запланированных противоэпизоотических и профилак­тических мероприятий.

ЗАДАНИЕ ДЛЯ САМОСТОЯТЕЛЬНОЙ РАБОТЫ

Решить эпизоотологическую задачу.

Район благополучен по бешенству. В стадо коров во время па­стьбы забежал волк и покусал нескольких животных. Волка не поймали. Особенно большие (10 х 15 см) и глубокие раны были на голове, шее, подгрудке у одной коровы. Ввиду сильного кровоте­чения из ран корова прирезана пастухом.

1. Перечислить животных — носителей вируса бешенства в при­роде.

2. Решить, как поступить с мясом от вынужденно убитой коро­вы.

3. Разработать план мероприятий по профилактике бешенства и ликвидации эпизоотического очага.

Занятие 29. Диагностика, профилактика и ликвидация болезни Ауески в свиноводческих и звероводческих хозяйствах

Цель занятия: изучить методы диагностики болезни Ауески, систему профи­лактических и оздоровительных мероприятий.

Материалы и оборудование: зараженные кролики; диапозитивы, диафильмы, плакаты, таблицы, схемы по системе мероприятий.

Место проведения занятия: аудитория кафедры эпизоотологии.

МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ

Болезнь Ауески — заболевание животных всех видов. Возбуди­тель — вирус из семейства Herpesviridae.

Методы диагностики. Диагноз устанавливают на основании комплекса данных — эпизоотологических, клинических, патологоанатомических и лабораторных.

Эпизоотологическое обследование начинают с выявления источ­ника возбудителя инфекции. При обследовании хозяйства необхо­димо учитывать случаи заболевания и падежа собак и кошек, мас­совую гибель грызунов.

Важнейшим из клинических признаков болезни служит зуд, сопровождающийся расчесами кожи. У свиней зуда не бывает. У поросят наблюдают симптомы энцефаломиелита, а у взрослых свиней — гриппоподобное переболевание с признаками пневмонии.

Патологоанатомические изменения при болезни Ауески неха­рактерны.

Диагноз подтверждают с помощью лабораторных методов— биопробы на кроликах или молодых кошках и вирусологического исследования.

В лабораторию направляют труп целиком или его части (голову или головной мозг, кусочки паренхиматозных органов, от сви­ней — обязательно легкие) и лимфоузлы. Используют методы ви­русологической и серологической диагностики: РН на кроликах;

выделение вируса и серологическую идентификацию в культуре клеток. РСК, РДП, РНГА, РИФ применяют для ретроспективной диагностики болезни.

Профилактические и оздоровительные мероприятия. Свиновод­ческое хозяйство, в котором установлена болезнь Ауески, объяв­ляют неблагополучным и накладывают карантин. Больных и по­дозрительных по заболеванию животных изолируют и лечат гло­булином. Животных всех возрастных групп кормят только в стан­ках. Кормушки после каждого кормления дезинфицируют. Новорожденным поросятам до дачи молозива, поросятам-сосу­нам, подозреваемым в заражении, свиноматкам за 2 недопоро­са вводят с профилактической целью специфический глобулин и через 3 нед вакцинируют. Все остальное клинически здоровое по­головье вакцинируют сразу.

Свиноматок, хряков, переболевших болезнью Ауески, а также молодняк, как переболевший, так и неболевший, из неблагопо­лучных свинарников откармливают и сдают на убой.

Карантин снимают через 1 мес со дня последнего случая забо­левания и сдачи на убой переболевшего поголовья. Свиноводчес­кие хозяйства считают благополучными по болезни Ауески, если в течение 6 мес со дня последней вакцинации получен здоровый приплод.

В звероводческих хозяйствах мясные корма, в которых подо­зревают наличие вируса болезни Ауески, заменяют другими. Боль­ным и подозреваемым в заболевании животным вводят специфи­ческий глобулин и назначают симптоматическое лечение. Живот­ных, подозреваемых в заражении, вакцинируют.

Карантин снимают через 15 дней со дня последнего случая за­болевания, сдачи на убой переболевших животных и после заклю­чительных ветеринарно-санитарных мероприятий.

Для профилактики болезни Ауески применяют сухую культуральную вирусвакцину ВГНКИ против болезни Ауески свиней, крупного рогатого скота и овец; сухую культуральную вирусвакцину из штамма БУК-628 против болезни Ауески свиней; инактивированную культуральную концентрированную вакцину УНИЭВ лротив болезни Ауески пушных зверей, овец и свиней; концентрированную эмульгированную вакцину БАК против болезни Ауески; вирусвакцину Суибивак ассоциированную сухую культуральную против болезни Ауески и чумы свиней.

ЗАДАНИЕ ДЛЯ САМОСТОЯТЕЛЬНОЙ РАБОТЫ

Решить эпизоотологическую задачу.

На свиноферме среди поросят-сосунов появилось массовое за­болевание. Поросята не могут двигаться, сосать, у них наблюдают спазм глотки, слюнотечение. Некоторые внешне здоровые живот­ные внезапно падают в приступе клонических судорог, при этом отмечают скрежет зубами, слюнотечение, параличи и смерть, у других появляются судороги шейных и жевательных мышц, повы­шается кожная чувствительность, возникают конъюнктивиты. Животные падают и, лежа на боку с запрокинутой головой, судо­рожно двигают конечностями или принимают позу сидячей соба­ки, совершая головой круговые движения.

1. Установить диагноз.

2. Составить план оздоровительных мероприятий.

Занятие 30. Диагностика, лечение, профилактика и ликвидация лептоспироза

Цель занятия: изучить методы диагностики лептоспироза, систему профилак­тических и диагностических мероприятий.

Материалы и оборудование: плакаты, диафильмы, вакцины, диагностикумы. Место проведения занятия: аудитория кафедры эпизоотологии.

МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ

Лептоспироз — инфекционная природно-очаговая болезнь ди­ких, домашних животных и человека, широко распространенная в различных ландшафтно-географических зонах мира. Возбуди­тель — патогенные спирохеты рода Leptospira.

Методы диагностики. Диагноз на лептоспироз устанавливают на основании комплекса данных — эпизоотологических, клини­ческих, патологоанатомических и лабораторных.

Согласно эпчзоопгологчческим данным болеют домашние живот­ные всех видов (чаще свиньи и крупный рогатый скот), любого возраста, но молодняк более восприимчив, и болезнь у него про­текает тяжелее, чем у взрослых. Источники возбудителя лептоспирозной инфекции подразделяют на 2 группы. К первой относят грызунов и насекомоядных, которые служат основными хозяева­ми (резервуаром) возбудителя в природе; ко второй—домашних животных (свиней, мелкий и крупный рогатый скот, лошадей, со­бак), а также пушных зверей клеточного содержания, формирую­щих антропургические (сельскохозяйственные) очаги.

Основные клинические признаки болезни: повышение температуры тела, резкое угнетение, слабость, желтушность слизистых Волочек, некроз кожи, нарушения сердечно-сосудистой системы, желудочно-кишечного тракта, у беременных животных —аборт. Пептоспироз у животных протекает молниеносно, остро, подостро, хронически.

При патологоансипомическом исследовании обнаруживают жел­туху или анемию, геморрагический диатез, некроз кожи и слизис­тых оболочек, дистрофические и воспалительные изменения в па­ренхиматозных органах. Печень увеличена, от глинисто-красного до охряно-желтого цвета, упругой, дряблой или ломкой консис­тенции. Желчный пузырь растянут и переполнен густой желчью темно- или буро-зеленого цвета. Почки также увеличены, дряб­лые. Границы коркового и мозгового слоев сглажены.

Лабораторные методы диагностики включают в себя серологи­ческие, бактериологические и гистологические исследования. В лабораторию отправляют кровь, мочу, органы и ткани, а также трупы мелких животных.

Серологический метод основан на обнаружении специфичес­ких антител в крови животных реакцией микроагглютинации (РМА) и реакцией иммуноадсорбции (РИА). По результатам серо­логических исследований диагноз на лептоспироз считают уста­новленным, если специфические антитела обнаружены в сыворот­ке крови при однократном исследовании в РМА в титре 1 : 100 у вакцинированных и в титре 1 : 50 и выше у более чем 25 % невакцинированных животных. Лептоспироз считают причиной абор­тов при обнаружении антител в сыворотке крови абортированного плода. Предполагают заболевание при высоком титре антител (1 :2500 и более) в группе абортировавших животных и низком титре (1 : 500) или отрицательной реакции в группе клинически здоровых животных.

Гистологический метод основан на обнаружении лептоспир в гистосрезах, импрегнированных серебром. При микроскопии лептоспиры чаще обнаруживают на поверхности эпителия и в просвете мочевых канальцев почек, несколько реже — в цито­плазме эпителия, преимущественно группами. Лептоспиры ок­рашиваются в черный цвет, а окружающая ткань — в буровато-желтый.

Бактериологический метод заключается в обнаружении лепто­спир в исследуемом материале путем темнопольной микроскопии (рис. 9) и иммунофлюоресцентным методом, выделении чистой культуры на специальных средах, ее идентификациии и диффе­ренциации, биопробе на лабораторных животных.

Посевы культивируют при 20...28 °С в течение 3 мес. Иногда лептоспиры обнаруживают в средах на З...5-е сутки или через 1...2 мес и очень редко — через 2...3 мес культивирования.

Серовариантную принадлежность изолятов лептоспир изучают в РИА: сначала устанавливают се-рогрупповую принадлежность, а затем с помощью перекрестной РМА определяют степень анти­генного родства каждого исследуе­мого штамма со всеми штаммами-эталонами, входящими в состав данной серогруппы. Серогруппо-вую или серовариантную принад­лежность культур лептоспир мож­но установить с помощью моноклональных антител.

Для биопробы используют зо­лотистых хомячков в возрасте 20...30 сут, крольчат-сосунов в возрасте 10...20 сут и морских сви­нок в возрасте 21... 35 сут, которых

Рис.9.

Культура лептоспир при микроскопии в темном поле

заражают кровью, мочой, суспензией из паренхиматозных орга­нов животных (абортированного плода) или спермой. Исследуе­мый материал вводят подкожно или внутрибрюшинно: хомякам от 0,3...0,5 до 1 мл, крольчатам 2...3 мл. На каждую пробу исследу­емого материала берут по 2 зверька: одного из них убивают на 4...5-е сутки, в период подъема температуры, другого — на 14...16-е сутки. Кровь последнего исследуют в РМА, начиная с разведения 1:10, с лептоспирами 15 серологических групп. Положительная РМА свидетельствует о наличии лептоспир в исследуемом матери­але.

Вирулентность выделенной культуры изучают на золотистых хомячках или крольчатах, которых заражают внутрибрюшинно 5...7-дневной культурой, содержащей 70...100 лептоспир в поле зрения микроскопа. Высоковирулентные культуры вызывают ги­бель животных в дозе менее 0,1 мл, средней вирулентности — 0,2... 0,4мл и слабовирулентные — 0,5...1,0 мл.

По результатам бактериологических исследований диагноз на лептоспироз считают установленным, а хозяйство — неблагопо­лучным по лептоспирозу в любом из следующих случаев:

при обнаружении методом микроскопии лептоспир в крови или суспензии из органов животных, абортированном плоде, моче или органах зараженных лабораторных животных;

обнаружении методом флюоресцирующих антител в исследуе­мом материале бактерий с морфологией, типичной для лептоспир, при интенсивности свечения не менее чем в два креста;

выделении культуры лептоспир из исходного материала или органов лабораторного животного, зараженного исходным мате­риалом.

Лептоспироз считают причиной:

гибели животных—при наличии клинических признаков и патологических изменений, характерных для лептоспироза, специ­фичность которых подтверждена обнаружением лептоспир в крови паренхиматозных органах;

абортов—при обнаружении лептоспир в органах (тканях) Сортированного (мертворожденного) плода.

Профилактические и оздоровительные мероприятия. Чтобы своевременно выявить лептоспироз, исследуют сыворотку крови жи­вотных: в племенных хозяйствах — всех производителей 2 раза в год' свиней, крупный и мелкий рогатый скот, лошадей — поголов­но перед ввозом (вывозом) для племенных и пользовательных це­лей (за исключением откормочной группы); во всех случаях при подозрении на лептоспироз.

Чтобы не допустить заноса заболевания в хозяйство, необходи­мо:

контролировать клиническое состояние животных, число абор­тов и при подозрении на лептоспироз отправлять материал для лабораторного анализа;

исследовать всех поступающих в хозяйство животных в период 30-дневного карантина на лептоспироз в РМА в разведении сыво­ротки 1 : 25 (свиней, ввозимых в хозяйство для племенных це­лей, — путем микроскопии мочи независимо от результатов серо­логических исследований); не выпасать невакцинированных животных на территории природных очагов лептоспироза;

систематически уничтожать грызунов в животноводческих по­мещениях, на территории ферм и в местах хранения кормов.

Разрешается комплектовать откормочное хозяйство клиничес­ки здоровыми животными без обследования на лептоспироз, но с обязательной вакцинацией их против лептоспироза в период ка­рантина.

При установлении диагноза на лептоспироз в хозяйстве вводят ограничения и в плане оздоровительных мероприятий предусмат­ривают необходимые диагностические исследования животных, ветеринарно-санитарные и организационно-хозяйственные ме­роприятия.

После клинического осмотра больных и подозрительных по за­болеванию животных изолируют, лечат гипериммунной сыворот­кой и антибиотиками, указанными в наставлениях по их примене­нию.

Убой таких животных разрешен на санитарной бойне. Поме­щение и оборудование после убоя дезинфицируют. Если установ­лен лептоспироз и обнаружены дегенеративные изменения мышц или их желтушное окрашивание, не исчезающее в течение 2 сут, тушу и внутренние органы направляют на утилизацию. При отсут­ствии дегенеративных изменений в мышцах, но при наличии жел­тушного окрашивания, исчезнувшего в течение 2 сут, тушу, а так­же внутренние органы без патологоанатомических изменений выпускают после проварки. Кишечник и патологически измененные органы направляют на утилизацию.

Туши и другие продукты, полученные от убоя животных с по­ложительным результатом серологического исследования на лептоспироз, но без клинических признаков или патологоанатомических изменений в мышечной ткани и органах, выпускают без ограничений.

Клинически здоровых животных всех видов и возрастных групп, восприимчивых к лептоспирозу, вакцинируют. Животных, которых лечили, вакцинируют через 5...7 дней после выздоровле­ния.

Всех животных откормочных хозяйств откармливают и сдают на убой. Маточное поголовье, производителей и ремонтный мо­лодняк, который необходимо сохранить для воспроизводства, после вакцинации обрабатывают лептоспироцидными препарата­ми и переводят в продезинфицированные помещения.

Сперму производителей, инфицированных лептоспирами (по­ложительная РМА, лептоспиры в моче), не используют и исходя из хозяйственной целесообразности направляют таких животных на убой или обрабатывают стрептомицином, дезинфицируют по­мещения. Все поголовье вакцинируют против лептоспироза. Че­рез 10...15 дней эффективность лечения контролируют путем мик­роскопии мочи. При обнаружении лептоспир в моче повторяют курс лечения и вновь проверяют его эффективность. От быков, признанных здоровыми, продолжают использовать сперму.

Сыворотку крови повторно исследуют в РМА и микроскопируют мочу всех производителей на ранее неблагополучном по леп­тоспирозу предприятии (станции) через 3 мес и при получении отрицательных результатов —далее каждые 6 мес.

В питомниках служебного собаководства изолируют клиничес­ки больных и подозрительных по заболеванию собак, лечат их ги­периммунной сывороткой и стрептомицином. Всех остальных со­бак вакцинируют.

Ограничения в неблагополучных по лептоспирозу хозяйствах снимают в следующем порядке:

в откормочных хозяйствах — после сдачи поголовья на убой и заключительных ветеринарно-санитарных мероприятий;

в племенных и пользовательных хозяйствах — после установле­ния их благополучия по лептоспирозу с помощью лабораторных методов;

животных повторно исследуют на лептоспироз в ранее неблаго­получных хозяйствах через 6 мес после снятия ограничений;

хозяйство считают благополучным по лептоспирозу при полу­чении отрицательных результатов исследований всех животных.

Разрешается вывозить животных для племенных и пользова­тельных целей только из хозяйств, благополучных по лептоспи­розу.

Животных, предназначенных для продажи, содержат в каран­тине и исследуют сыворотку крови в РМА, у свиней, кроме того, — мочу на наличие лептоспир. При выявлении у отдельных животных антител в крови или лептоспир в моче всю группу ос­тавляют в хозяйстве и применяют дополнительные методы диаг­ностики, чтобы решить вопрос о благополучии хозяйства по леп­тоспирозу.

Для специфической профилактики используют: поливалент­ную вакцину ВГНКИ и концентрированную вакцину против лептоспироза животных; ассоциированную вакцину против леп­тоспироза и парвовирусной инфекции свиней; ассоциированную вакцину против лептоспироза и эмфизематозного карбункула крупного рогатого скота; ассоциированную вакцину против леп­тоспироза и кампилобактериоза крупного рогатого скота; вакцину против лептоспироза собак; инактивированную жидкую вакцину против лептоспироза; вакцину против чумы плотоядных, инфек­ционного гепатита, аденовироза, парвовирусного энтерита и леп­тоспироза собак («Гексаканивак»).

Во всех случаях выбор вакцины зависит от эпизоотической об­становки хозяйства. Вакцинируют всех восприимчивых животных в неблагополучных по лептоспирозу хозяйствах; в откормочных хозяйствах, где поголовье комплектуют без обследования на леп­тоспироз; при выпасе животных в зоне природного очага леп­тоспироза; при выявлении в хозяйстве животных, сыворотка кро­ви которых реагирует в РМА; в районах с отгонным животновод­ством.

ЗАДАНИЕ ДЛЯ САМОСТОЯТЕЛЬНОЙ РАБОТЫ

Разработать схему дифференциальной диагностики болезней, сопровождающихся абортами (бруцеллез, лептоспироз, хламиди-оз, листериоз, кампилобактериоз, инфекционный ринотрахеит).

Занятие 31. Диагностика, профилактика и ликвидация листериоза

Цель занятия; изучить методы диагностики листериоза, систему профилакти­ческих и оздоровительных мероприятий.

Материалы и оборудование: таблицы, диапозитивы, биопрепараты (диагности-кумы, вакцины).

Место проведения занятия: аудитория кафедры эпизоотологии.

МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ

Листериоз — инфекционная болезнь животных и человека, воз­будитель которой Listeria monocytogenes—подвижная полиморф­ная грамположительная мелкая палочка. Листерии широко распространены во внешней среде, сравнительно высокоустойчивы:

при низких температурах (4...6°С) длительное время (до несколь­ких лет) сохраняются в почве, воде, соломе, зерне. Размножаются в почве, воде, молоке, мясе, силосе, а также в трупах.

Методы диагностики. Диагноз на листериоз устанавливают на основании эпизоотологических данных, клинических признаков, патологоанатомических изменений, а также результатов лабора­торных исследований.

Согласно эпизоотологическим данным листериоз поражает до­машних и сельскохозяйственных животных—свиней, мелкий и крупный рогатый скот, лошадей, кроликов, реже — кошек и со­бак, а также домашнюю и декоративную птицу — гусей, кур, уток, индюшек, голубей, попугаев и канареек. Более восприимчив мо­лодняк и беременные животные. Источник возбудителя инфек­ции—больные, листерионосители (5...90 %); основной резерву­ар —дикие и синантропные грызуны. Возбудитель передается фекально-оральным, контактным, аэрогенным, трансплацентарным путем и через поврежденную кожу; выделяется из организма с ис­течениями из носа, половых органов, с абортированными плода­ми, молоком, калом и мочой.

Клинические признаки зависят от формы и течения болезни. Наиболее характерные симптомы: угнетение, снижение аппетита, нарушение координации движений, судороги, парез нижней че­люсти, конъюнктивит, потеря зрения (кератит), расстройство желудочно-кишечного тракта, повышение температуры тела, абор­ты, задержание последа, маститы.

Патологоанатомические изменения также зависят от формы и течения болезни. При нервной форме отмечают отек мозга, кровоизлияния в мозговой ткани и отдельных внутренних орга­нах. При септической форме находят изменения, свойственные септическому процессу, — кровоизлияния в паренхиматозных органах, увеличение селезенки и дегенеративные изменения во всех органах, а также отек или гиперемию легких; при генитальной — поражения матки (десквамация эпителия, эрозии, кровоизлияния).

Лабораторная диагностика состоит из бактериологического, се­рологического и гистологического исследований. Для посмертной диагностики в ветеринарную лабораторию направляют трупы мел­ких животных или голову (головной мозг), паренхиматозные орга­ны (часть печени, селезенку, почку, пораженные участки легких), абортированный плод и его оболочку. Материал посылают свежим или консервируют 30%-м водным раствором глицерина. Для гис­тологического исследования используют кусочки головного (все отделы) и спинного мозга, а также паренхиматозных органов, за­фиксированные в 10%-м растворе нейтрального формалина.

Для прижизненной диагностики на бактериологическое иссле­дование отправляют истечения из половых органов самок, у которых отмечены аборты; при маститах — молоко из пораженных до­лей вымени; на серологическое—кровь или сыворотку крови от больных или подозрительных по заболеванию животных (жела­тельно парные сыворотки, взятые с интервалом 7...14 дней).

Бактериологический метод диагностики при листериозе — решающий. Мазки из исходного материала окрашивают по Граму, а также методами флюоресцирующих антител (прямой и не­прямой). Для выделения чистой культуры используют обычный или печеночный агар и бульон с добавлением 1 % глюкозы и 2...3 % глицерина, а также кровяной агар и элективные среды (с теллуритом калия, с теллуритом калия и флоримицином или полимиксином). Черный цвет колоний обусловлен восстанов­лением теллурита калия до металлического теллура. Характер­ные признаки возбудителя листериоза — помутнение бульона и появление мелких росинчатых колоний на агаре, формирование зоны р-гемолиза на кровяном агаре. Колонии листерий в про­ходящем свете — голубого цвета с зеленоватым оттенком и мел­козернистые по структуре. Идентификация состоит из несколь­ких направлений. Определяют подвижность, исследуя 6...12-ча­совую культуру, ферментативные свойства (пестрый ряд). Лис­терий идентифицируют серологически — в РА на стекле с поливалентной листериозной агглютинирующей сывороткой, а также конъюнктивальной пробой на морских свинках или внутрикожной пробой на морских свинках или кроликах. На конъ­юнктиву морской свинке наносят 2 капли исследуемой бульон­ной культуры и легко массируют веки ватным тампоном. При положительном результате на 2...4-й день развивается гнойный конъюнктивит. При внутрикожной (дермонекротической) про­бе в тщательно выстриженный участок на боку морской свинке или кролику вводят 0,3...0,5 мл бульонной культуры. Через 24...48 ч возникает воспаление с последующим некрозом и об­разованием струпа.

Для биопробы используют 2...3 белых мышей. Суспензию го­ловного мозга, внутренних органов или чистой культуры вводят животным подкожно или внутрибрюшинно в дозе 0,3...0,5 мл. Чтобы повысить эффективность биопробы, мышам за З...4ч до заражения инъецируют внутримышечно кортизон в дозе 5 мг. При положительной биопробе животные погибают через 2...6сут. На вскрытии отмечают множественные некротические очажки в печени, селезенке, почках (иногда они отсутствуют). Срок наблюдения за животными 14 сут.

С помощью гистологического исследования тканей головного и спинного мозга при поражении бактериальными формами лис­терий обнаруживают хорошо выраженные пролиферативные из­менения, отек, дегенерацию нейронов, нейронофагию, а при по­ражении Z.-формами — энцефалопатию, сопровождающуюся дис­трофическими изменениями без пролиферации клеток.

Для серологической диагностики применяют PA, PCK, РНГА и РИФ, с помощью которых устанавливают диагноз, выявляют листерионосительство и хронически больных животных. Кроме того, при исследовании парных сывороток (ретроспективная диагнос­тика) нарастание титра антител в 2...4 раза подтверждает диагноз на листериоз.

Используют также прямой (ПМФА) и непрямой (НМФА) ме­тоды флюоресцирующих антител, с помощью которых можно идентифицировать возбудителя в культурах, обнаружить листерии в органах и тканях, а также определить их серогрупповую принад­лежность. При люминесцентной микроскопии для листерии ха­рактерно ярко выраженное золотисто-зеленоватое свечение, четко заметны морфологические особенности бактерий и темная цент­ральная зона клетки.

Профилактические и оздоровительные мероприятия. В целях про­филактики комплектуют фермы животными только из благопо­лучных по листериозу хозяйств. Строго учитывают все случаи абортов, мертворождения и падежа и направляют патологический материал для лабораторного анализа. При маститах исследуют мо­локо бактериологическим методом.

При выявлении больных листериозом животных в хозяйстве проводят тщательное эпизоотологическое обследование.

При установлении диагноза на листериоз хозяйство объявляют неблагополучным и вводят ограничения.

Осматривают все поголовье и выбраковывают клинически больных животных. Чтобы выявить животных листерионосителей и бессимптомно больных, исследуют сыворотки крови. По­ложительно реагирующих изолируют, лечат антибиотиками и затем направляют на убой. Остальных вакцинируют сухой жи­вой вакциной из штамма АУФ согласно наставлению по ее при­менению.

Туши и продукты убоя больных и подозрительных по заболева­нию животных запрещается выпускать в сыром виде. Если обна­ружены дегенеративные и другие патологические изменения в мышцах (абсцессы и т.д.),тушу и внутренние органы направляют на утилизацию; при отсутствии патологических изменений — ис­следуют на сальмонеллез бактериологическим методом. В случае обнаружения сальмонелл внутренние органы направляют на ути­лизацию или уничтожают, а туши проваривают и используют для изготовления консервов. При отсутствии сальмонелл туши, шпик и внутренние органы перерабатывают на вареные, варено-копче­ные колбасы и консервы или проваривают. При листериозе мясо, кроме того, разрешается использовать на изготовление вареных колбас, варено-копченых грудинок и кореек.

Патологически измененные органы, кишки и кровь, а так­же головы от животных, больных листериозом, во всех случаях направляют на утилизацию с обработкой при температуре не менее 100 "С или проваривают при той же температуре в тече­ние 1ч.

Молоко, полученное от животных, давших положительный ре­зультат в серологической реакции, кипятят в течение 15 мин или перерабатывают на топленое масло.

Для искусственного осеменения используют сперму здоровых производителей.

Непременное условие эффективности оздоровительных меро­приятий — регулярная дезинфекция, дезинсекция и дератизация. Навоз обеззараживают биометрическим способом. Для дезинфек­ции используют осветленный раствор хлорной извести с содержа­нием 2 % активного хлора, 3%-й горячий раствор гидроксида на­трия, 5%-й раствор хлорида йода или ксилонафт.

Пробы силоса, хранящегося в траншеях или буртах, направля­ют на бактериологическое исследование. В случаях контаминации силосной массы листериями весь силос обеззараживают биотер­мическим способом.

Хозяйство (ферму, отделение, двор) объявляют благополучным по листериозу через 2 мес со дня последнего случая выявления клинически больных животных и после заключительной дезин­фекции помещений и территории фермы.

Допускается вывозить овец для племенных и пользовательных целей в течение 2 лет после оздоровления хозяйств только при ус­ловии отрицательного результата серологического исследования. Вывоз животных других видов разрешается при тех же условиях в течение 1 года. Кроме того, разрешается без ограничений сдавать животных на мясокомбинат.

В хозяйствах, ранее неблагополучных по листериозу, животных исследуют серологическим методом 1 раз в год перед постановкой на стойловое содержание до тех пор, пока не будут получены от­рицательные результаты у 100 % поголовья. Положительно реаги­рующих животных изолируют, лечат и направляют на убой. При вывозе животных в ветеринарном свидетельстве указывают ре­зультат их исследования на листериоз.

ЗАДАНИЕ ДЛЯ САМОСТОЯТЕЛЬНОЙ РАБОТЫ

Решить эпизоотологическую задачу.

На мелочно-товарной ферме начали использовать в корм си­лос, после чего среди коров и телят возникло заболевание со сле­дующими клиническими признаками: повышение температуры тела до 40,5 °С (у некоторых животных — в пределах нормы), угне­тение, отказ от корма, потеря зрения (кератит), конъюнктивит, стоматит, приступы буйства, кроме того, у телят — понос. У одной стельной коровы отмечен аборт.

Установить диагноз и разработать схему дифференциальной диагностики листериоза.

Занятие 32. Диагностика, лечение, профилактика и ликвидация пастереллеза

Цель занятия: изучить методы диагностики и лечения пастереллеза, систему профилактических и оздоровительных мероприятий.

Материалы и оборудование: таблицы, диапозитивы, рисунки, микроскопы, го­товые мазки, окрашенные по Романовскому—Гимзе, и биопрепараты, применяе­мые при пастереллезе животных и птиц.

Место проведения занятия: аудитория кафедры эпизоотологии.

МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ

Пастереллез — инфекционная болезнь млекопитающих многих видов и птиц. Возбудитель — бактерия рода Pasteurella.

Методы диагностики. Диагноз на пастереллез устанавливают на основании эпизоотологических данных, клинических признаков, патологоанатомических изменений и результатов лабораторных исследований.

Согласно эпизоотологическим данным болеют домашние и дикие животные всех видов (более восприимчив молодняк) и человек. Бо­лезнь проявляется среди кроликов в виде эпизоотии, у животных других видов — в виде энзоотических вспышек. Для пастереллеза характерно формирование стационарных эпизоотических очагов. Болезнь часто регистрируют осенью и весной. Источник возбудите­ля инфекции — больные и переболевшие животные — пастереллоносители. У больных животных возбудитель выделяется с истечени­ями из носа, выдыхаемым воздухом, слюной, фекалиями, молоком.

Клинические признаки болезни зависят от ее течения — сверхос­трого, острого, подострого и хронического. У больных животных резко повышается температура тела, нарушаются функции дыха­тельной системы и желудочно-кишечного тракта.

При сверхостром течении клиническая картина не успевает развиться, животное погибает внезапно с признаками нервных и сердечно-сосудистых расстройств. При более затяжном течении наблюдают конъюнктивиты, колиты, поносы, мышечную дрожь. Отмечают серозные, серозно-катаральные риниты, иногда истече­ния из носовых отверстий с примесью крови, сухой болезненный кашель.

В зависимости от развития патологического процесса различа­ют отечную, грудную, кишечную формы, а в последнее время и менингеальную.

Патологоанатомические изменения зависят от продолжительно­сти и формы болезни. У павших животных обнаруживают гемор­рагический диатез в большинстве органов. Печень и почки пере­рождены, с очагами некроза, селезенка слегка опухшая, лимфоуз­лы увеличены, темно-красного цвета. Легкие отечные, иногда от­мечают серозно-фибринозный плеврит. В желудочно-кишечном тракте фибринозно-геморрагическое воспаление.

Лабораторная диагностика включает в себя микроскопию маз­ков-отпечатков, выделение культур пастерелл и их идентифика­цию, биопробу.

Для исследования в лабораторию направляют 2...3 трупа мел­ких животных, от крупных — сердце с перевязанными сосудами, части селезенки, печени, почек, экссудат из грудной полости и трубчатую кость; при поражении легких — кусочки (5х5 см) на границе нормального и измененного участков, миндалины, брон­хиальные, средостенные и заглоточные лимфатические узлы. Ма­териал берут от павших (не позднее 3...5 ч после гибели) или уби­тых с диагностической целью животных, не подвергавшихся лече­нию антибактериальными препаратами.

Для диагностики пастереллеза у птиц в лабораторию направля­ют кроме свежих трупов 5...6 живых птиц с явными признаками болезни. Больных птиц убивают в лаборатории и делают высевы из костного мозга, сердца, печени и селезенки.

Мазки-отпечатки из каждого органа фиксируют, окрашивают по Леффлеру или Романовскому—Гимзе и микроскопируют. В мазках из патматериала пастереллы выглядят как овоиды или ко­роткие палочки с закругленными концами и заметной биполярностью, вокруг которых может быть видна прозрачная капсула. В мазках из культур при окраске по Граму бактерии обнаруживают в виде грамотрицательных овоидов или коккобактерий, располо­женных одиночно или попарно.

При выделении культур посевы из исходного материала делают в МПБ и на МПА или в бульон и на агар Хоттингера. Выделенные культуры идентифицируют по ферментативным свойствам и под­вижности. Основные дифференцирующие признаки видов рода Pasteurella приведены в таблице 6.

Примечание. «+» — результат положительный, «—» — результат отрица­тельный.

Методом биопробы определяют патогенность выделенной культуры и обнаруживают возбудитель в исходном материале.

Двум белым мышам массой 16...18 г вводят подкожно по 0,2 мл 18...24-часовой бульонной культуры. Вирулентные штаммы Р. multocida, относящиеся в основном к сероварианту В и являю­щиеся возбудителями геморрагической септицемии, вызывают гибель зараженных белых мышей в течение 24...72 ч; слабовирулент­ные штаммы серовариантов А и D, участвующие в развитии пневмоний, — через более продолжительный срок (до 7 сут). Р. haemolytica может вызвать гибель белых мышей только при внутрибрюшинном заражении.

Патогенность культур, выделенных от птиц, проверяют на бе­лых мышах или цыплятах. Срок наблюдения за зараженными жи­вотными 7 сут.

Диагноз считают установленным в случае:

выделения из исходного материала культуры со свойствами ха­рактерными для возбудителя пастереллеза, и установления ее патогенности на лабораторных животных;

гибели хотя бы одного лабораторного животного из двух зара­женных исходным материалом и выделения из его органов культу­ры со свойствами, характерными для возбудителя пастереллеза если даже в посевах из исходного материала культуры возбудителя не выделено. Срок исследования до 10 сут.

Профилактические и оздоровительные мероприятия. Чтобы пре­дупредить заболевание животных пастереллезом, поступают сле­дующим образом:

всех ввозимых в хозяйство животных выдерживают в профи­лактическом карантине в течение 30 дней;

комплектуют стадо только животными из хозяйств, благопо­лучных по инфекционным болезням;

не допускают контакта животных общественного и частного секторов;

на фермах оборудуют санпропускники и обеспечивают обслу­живающий персонал сменной одеждой и обувью;

на территориях пастбищ организуют мелиоративные работы, так как возбудитель пастереллеза в заболоченных мелких водоемах может сохраняться до 6 мес;

систематически проводят дератизацию на территории ферм;

в административных районах, где на фермах или среди отдель­ных групп животных были зарегистрированы случаи заболевания пастереллезом, всех животных вакцинируют против пастереллеза в течение одного года, руководствуясь наставлением по примене­нию соответствующей вакцины;

хозяйства, в которых был зарегистрирован пастереллез, в тече­ние одного года комплектуют поголовьем, вакцинированным про­тив пастереллеза в хозяйстве-поставщике либо в период профи­лактического карантина;

не разрешают ввозить невакцинированных животных в ранее не­благополучное стадо в течение одного года после его оздоровления.

При установлении диагноза на пастереллез хозяйство объявля­ют неблагополучным по данной болезни и вводят ограничения.

Чтобы купировать эпизоотический очаг и ликвидировать забо­левание: осматривают с термометрией всех животных неблагополучной группы. Больных и подозрительных по заболеванию изолируют и закрепляют за ними обслуживающий персонал, который обеспечивают спецодеждой, обувью, дезсредствами, аптечкой, рукомой­ником, мылом, полотенцем;

всем больным и контактировавшим с ними животным вводят поотивопастереллезную сыворотку (в зависимости от вида живот­ного и эпизоотической ситуации используют следующие сыворот­ки' против пастереллеза крупного рогатого скота, буйволов, овец свиней; против пастереллеза свиней, кроликов, пушных зверей;

против пастереллеза, сальмонеллеза, парагриппа-3 и инфекцион­ного ринотрахеита крупного рогатого скота) и один из следующих антибиотиков: террамицин, окситетрациклин, биомицин (хлор-тетрациклин), тетрациклин, стрептомицин, левомицетин, про­лонгированные антибиотики (дибиомицин, дитетрациклин, дистрептомидазол, бициллин-3). Антибиотики назначают в дозах, ука­занных в наставлениях по их применению: их вводят 3 раза в день в течение 3...5 сут, пролонгированные антибиотики — однократно. Назначают также сульфаниламидные препараты, глюкозу и другие симптоматические средства; хорошие результаты дает применение пастереллезного фага или полифага;

поросятам и ягнятам, находящимся под больными пастерелле­зом матками, вводят гипериммунную противопастереллезную сы­воротку в лечебной дозе и назначают курс антибиотиков тетрациклинового ряда. Телятам до 3-месячного возраста, находящим­ся на территории неблагополучной фермы, вводят сыворотку и дают молоко только от здоровых коров. Через 14 дней после вве­дения сыворотки всех животных, достигших прививочного возра­ста, вакцинируют против пастереллеза.

Для иммунизации используют одну из далее указанных вакцин в соответствии с наставлением по их применению:

крупный рогатый скот и буйволов вакцинируют эмульгированной вакциной против пастереллеза крупного рогатого скота, буй­волов и овец;

мелкий рогатый скот — преципитированной формол-вакциной против пастереллеза овец и свиней или эмульгированной вакци­ной против пастереллеза крупного рогатого скота, буйволов и овец;

кроликов — формол-вакциной против пастереллеза кроликов;

нутрий — сапонинформол-вакциной против пастереллеза нут­рий;

свиней — преципитированной формол-вакциной против пас­тереллеза овец и свиней или эмульгированной вакциной против пастереллеза свиней. Для вакцинации супоросных свиноматок и поросят в возрасте менее 2 мес используют концентрированную поливалентную формол-квасцовую вакцину против паратифа, пастереллеза и диплококковой септицемии поросят (ППД) или поливалентную инактивированную вакцину против сальмонеллеза ц пастереллеза свиней. В хозяйствах угрожаемой зоны применяют эмульгированную вакцину против пастереллеза свиней.

В хозяйствах, неблагополучных по пастереллезу, обязательны систематические дезинфекция, дератизация, дезинвазия, дезин­секция. Текущая дезинфекция должна быть ежедневной: после ут­ренней уборки помещения, где содержатся больные и подозритель­ные по заболеванию животные, и все, с чем они соприкасаются, де­зинфицируют одним из следующих средств: 10...20%-йвзвесыосве-жегашеной извести или раствором хлорной извести, содержащим 2 % активного хлора, 2%-м раствором гидроксида натрия, 3%-м ра­створом креолина, 0,5%-м раствором формальдегида.

Трупы животных, павших от пастереллеза, сжигают или пере­рабатывают на утильзаводах либо обеззараживают в биотермичес­ких ямах, шкуры от павших или убитых животных дезинфициру­ют 1%-м раствором соляной кислоты, разведенной 20%-м раство­ром поваренной соли.

Спецодежду дезинфицируют текучим паром при экспозиции 1,5ч в паровых камерах, кипячением в 2%-м растворе кальцини­рованной соды в течение 1 ч или погружением на 2 ч в 1%-й ра­створ хлорамина при расходовании 5 л раствора на 1 кг вещей. Ре­зиновую и кожаную обувь погружают на 2 ч в 5%-й раствор хлора­мина или в 4%-й раствор формальдегида.

Ограничения с хозяйства снимают через 14 дней со дня последне­го случая заболевания пастереллезом и после поголовной вакци­нации, а также выполнения организационно-хозяйственных и ветеринарно-санитарных мероприятий и заключительной дезин­фекции.

После снятия ограничений животных вакцинируют против па­стереллеза в течение одного года. Вновь поступившее поголовье иммунизируют в хозяйствах-поставщиках или в период профи­лактического карантина.

ЗАДАНИЯ ДЛЯ САМОСТОЯТЕЛЬНОЙ РАБОТЫ

1. Исследовать под микроскопом готовые мазки из чистой культуры.

2. Разработать схему дифференциальной диагностики пасте­реллеза.

Занятие 33. Диагностика, лечение, профилактика и ликвидация дерматомикозов

Цель занятия: изучить методы диагностики дерматомикозов, систему профи­лактических и оздоровительных мероприятий.

Материалы и оборудование: пробы для исследования, взятые от животных, больных трихофитией, препаровальные иглы, пинцеты анатомические, чашки Петри, 10...20%-е растворы гидроксида натрия или калия, 50%-й раствор глицерина, предметные и покровные стекла, спиртовки, питательные среды, микроскопы, лампа ПРК-4, вакцины.

Место проведения занятия: аудитория кафедры эпизоотологии.

МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ

Дерматомикозы (трихофития, микроспория, фавус) — ин­фекционные болезни кожи животных и человека, вызываемые грибами-дерматофитами родов Trichophyton, Microsporum,

Achorion.

Методы диагностики. Диагноз на дерматомикозы устанавлива­ют на основании эпизоотологических и клинических данных, а также результатов лабораторных исследований.

Согласно эпизоотологическим данным дерматомикозами болеют сельскохозяйственные и дикие животные всех видов, а также че­ловек. Восприимчивы все возрастные группы, но наиболее — мо­лодняк. Источником возбудителя инфекции служат больные и пе­реболевшие животные. Дерматомикозы встречаются в любое вре­мя года, но чаще в осенне-зимний период. При эпизоотологическом обследовании хозяйства особое внимание обращают на условия содержания и кормления животных, степень распростра­нения болезни, характер эпизоотического процесса, возраст и вид пораженных животных. Необходимо отметить, что перемещение и перегруппировки, скученное содержание, плохое кормление не­редко приводят к перезаражению животных и массовому рас­пространению дерматомикозов.

Клиническая картина дерматомикозов настолько характерна, что в большинстве случаев можно поставить окончательный диаг­ноз без дополнительных исследований.

При лабораторных исследованиях материалом служат соскобы кожи, волосы, чешуйки, корочки с пораженных или перифери­ческих участков кожи, не подвергавшейся лечению.

Для микроскопического исследования патологический мате­риал помещают на часовое стекло или в чашку Петри и залива­ют 10%-м раствором гидроксида натрия, затем ставят на .15...20 мин в термостат или слегка подогревают, после чего рас­щепляют препаровальными иглами. Необходимое количество материала переносят на предметное стекло в каплю 50%-го ра­створа глицерина, накрывают покровным стеклом и исследуют под микроскопом.

Грибы рода Trichophyton при микроскопическом исследовании обнаруживают в виде прямых гифов мицелия с перегородками, лежащими параллельными рядами по длине волоса. Споры одно­клеточные, круглые, овальные, расположены муфтами или цепоч­ками у основания волоса.

Грибы рода Microsporum под микроскопом представляют собой круглые одноклеточные, резко преломляющие свет споры, расположенные, как правило, беспорядочно внутри волоса и на его

поверхности.

Грибы рода Achorion обнаруживают в препарате в виде тонкого мицелия, иногда септированного и широкого, состоящего из пря­моугольных клеток с двухконтурной оболочкой. Споры округлые или многогранные, располагаются цепочками или группами. Кро­ме спор в волосе можно увидеть пузырьки воздуха в виде черных длинных тяжей, а также капельки жира.

Для дифференциальной диагностики дерматомикозов широко применяют люминесцентный метод. Он основан на свойстве гри­бов рода Microsporiim флюоресцировать. При ультрафиолетовом облучении пораженные волосы дают ярко-зеленое свечение. Тех­ника исследования следующая: животное ставят в темное помеще­ние на расстоянии 20 см от лампы ПРК-4 или другого источника со светофильтрами, пропускающими ультрафиолетовое излуче­ние. Исследуют только животных (материал), которых не обраба­тывали медикаментами. Пораженные микроспориями волосы дают хорошо видимое свечение, а при поражении трихофитонами свечения не бывает.

При необходимости делают посевы из исходного материала на агар Сабуро, МПА, в сахарный МПБ с антибиотиками и ис­пользуют биопробу на кроликах, морских свинках или белых мышах.

В дальнейшем изучают морфологию и культуральные свойства выделенных культур. Сроки исследований: микроскопического — 1 день, микологического — 10...20 дней.

Профилактические и оздоровительные мероприятия. Общая про­филактика дерматомикозов складывается из следующих мер: со­блюдают ветеринарно-санитарные правила на фермах, не допус­кают контакты животных общественного стада и частных ферм, создают нормальные условия содержания поголовья, обеспечива­ют его полноценными кормами, проводят регулярную дезинфек­цию и дератизацию. Всех животных, восприимчивых к дерматомикозам, тщательно осматривают, вновь поступивших выдержи­вают 30 дней в карантине. При этом обязательно обрабатывают их кожные покровы 1...2%-ми растворами гидроксида натрия, суль­фата меди или другими средствами.

С профилактической целью в ранее неблагополучных по трихофитии хозяйствах в корм добавляют гризеофульвин, серу с метионином.

Для специфической профилактики и лечения дерматомикозов животных различных видов в нашей стране разработан ряд средств:

против трихофитии крупного рогатого скота применяют ТФ-130, ЛТФ-130, ТФ-130К; лошадей —СП-1; кроликов и пушных зве­рей — «Ментавак»; овец — «Трих-овис»; верблюдов — «Камель-вак»; северных оленей — ОЛТВ; против микроспории и трихофитии кошек, собак—сухую вакцину «Гримивак»; пушных зверей и кроликов — жидкую вакцину

Миковак».

Инактивированную вакцину «Поливак-ТМ» против дермато­микозов (включает в себя 8 видов грибов рода Trichophyton и Microsporiim) применяют для представителей семейства собачьих, кошачьих и других домашних и сельскохозяйственных животных. Все препараты используют согласно наставлению по их примене­нию.

Кроме того, животных, больных дерматомикозом, лечат с по-

мошью 5...10%-й салициловой мази, 10%-го салицилового спирта, 10%-го спиртового раствора йода, сульфона, серного ангидрида, 5...10%-х растворов карболовой и бензойной кислот, йодоформа, хлорида йода, 10%-х растворов сульфата меди и аммиака, мази «Ям», нитрофунгина, микосептина, салифунгина и др. Все пере­численные препараты используют согласно наставлению по их рименению. В хозяйства, неблагополучные по дерматомикозам, запрещают ввозить здоровых животных из благополучных ферм, перегруппи­ровывать и вывозить животных в другие хозяйства. Больных жи­вотных изолируют и лечат одним из вышеуказанных препаратов. Поголовье неблагополучной фермы осматривают не реже 1 раза в 10 дней. Для дезинфекции используют щелочной раствор формалина, содержащий 1 % щелочи и 2 % формальдегида; 10%-й раствор серно-карболовой смеси; формалино-керосиновую эмульсию (10 час­тей формалина, 10—керосина, 5 — креолина, 75 частей воды). Одновременно обрабатывают предметы ухода за животными и спецодежду. Навоз обеззараживают биотермическим способом.

Ветеринарно-санитарные мероприятия выполняют с соблюде­нием мер личной профилактики, учитывая опасность заражения.

Хозяйство считают благополучным через 2 мес со дня последне­го случая выделения животных, клинически больных трихофитией, а при поражении фавусом—через 21 день с момента выздо­ровления (убоя) больных животных, в том числе птиц, и после заключительной дезинфекции.

ЗАДАНИЯ ДЛЯ САМОСТОЯТЕЛЬНОЙ РАБОТЫ

1. Исследовать под микроскопом приготовленные мазки.

2. Освоить технику исследования животных с помощью лампы

ПРК-4.

3. Рассказать, как диагностируют дерматомикозы.

4. Разработать схему дифференциальной диагностики трихофи­тии и микроспории.

5. Перечислить меры личной профилактики при работе с зараз­ным материалом.

Замятие 34. Диагностика, профилактика и ликвидация оспы

Цель занятия: изучить методы диагностики оспы, систему профилактических и оздоровительных мероприятий.

Материалы и оборудование: плакаты, схемы, вакцины. Место проведения занятия: аудитория кафедры эпизоотологии.

МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ

Оспа — контагиозная вирусная болезнь млекопитающих и птиц многих видов, вызываемая представителями семейства Poxviridae.

Методы диагностики. При типичном течении оспы для поста­новки диагноза вполне достаточно анализа эпизоотологических данных и клинической картины болезни. В сомнительных случаях исследуют под микроскопом мазки из свежих папул, окрашенные по методу Морозова. При световой микроскопии на желтом фоне препарата видны темно-коричневые элементарные тельца разме­ром 2...20 • 10~³ мм.

При атипичном течении болезни для идентификации возбуди­теля прибегают к биопробе. Материалом от коров заражают кро­ликов, от свиней — поросят, от овец и коз — ягнят и козлят. Сус­пензию (1 : 10) вируссодержащего материала вводят подопытному животному в дозе 0,2...0,5 мл.

Дополнительными методами диагностики служат РИФ и РИД. Вирус выделяют, заражая культуру клеток и куриные эмбрионы.

Профилактические и оздоровительные мероприятия. Чтобы пре­дупредить возникновение болезни, необходим ряд ветеринарно-санитарных мер: карантин вновь поступающих животных, исклю­чение контакта животных разных хозяйств, ветеринарный конт­роль за поступлением кормов.

При возникновении оспы среди овец, коз, верблюдов и птиц на хозяйство накладывают карантин, при оспе коров, лошадей, свиней и других млекопитающих животных вводят ограничения. Больных и подозрительных по заболеванию животных изолируют и лечат. Клинически здоровых овец и коз переводят в другое по­мещение или на другой участок пастбища и вакцинируют. Для ак­тивной иммунизации овец против оспы применяют сухую культуральную вирусвакцину из штамма НИСХИ, живую сухую вакцину из штамма ВНИИЗЖ и сухую культуральную вакцину из штамма ВНИИВВиМ. Помещения дезинфицируют 3%-м раствором каус­тической соды, 2%-м раствором формальдегида.

Карантин с хозяйства снимают через 20 дней после полного выздоровления, падежа или убоя больных оспой овец и коз, заключительной дезинфекции и обработки кожного покрова всех животных. Ограничения при оспе коров и свиней снимают через 21 день. В птицеводческих хозяйствах больное поголовье убивают, мясо используют после проварки, условно благополучное — прививают против оспы сухой эмбрионвирусвакциной из штамма 27-AlU. Карантин с хозяйства снимают через 2 мес после ликвидации болезни и заключительной дезинфекции.

ЗАДАНИЕ ДЛЯ САМОСТОЯТЕЛЬНОЙ РАБОТЫ

Решить эпизоотологические задачи.

Задача 1. В овцеводческом хозяйстве в одной отаре в осен­нюю дождливую погоду среди овец всех возрастов возникло мас­совое заболевание, которое наиболее тяжело проявилось у молод­няка. Болезнь начиналась угнетением, анорексией и лихорадкой. Одновременно отекали веки, появлялись серозно-слизистые и серрозно-гнойные выделения из глаз и носа. Через 2...3 дня с начала болезни обнаруживали сыпь на коже головы, губах и крыльях носа, вокруг глаз, на внутренних поверхностях передних и задних

конечностей.

1. Установить диагноз, организовать лечение больных овец.

2. Разработать мероприятия по охране других отар от заноса

этой болезни.

3. Составить план мероприятий по ликвидации данной инфек­ции в хозяйстве.

Задача 2. На птицеферме в одной секции возникло массовое

заболевание птиц со следующими клиническими признаками: ка­таральное воспаление слизистых оболочек верхних дыхательных путей и ротовой полости. Через 2...3 дня появились беловатые воз­вышающиеся наложения округлой формы и желто-белой окраски, которые, сливаясь друг с другом, образовывали наложения, напо­минающие сыр и глубоко проникающие в слизистые оболочки.

1. Установить диагноз.

2. Разработать план мероприятий по профилактике болезни в остальных птичниках и ликвидации эпизоотического очага.

Занятие 35. Диагностика, лечение, профилактика и ликвидация столбняка

Цель занятия: изучить методы диагностики столбняка, систему профилакти­ческих и оздоровительных мероприятий.

Материалы и оборудование: диапозитивы, рисунки, противостолбнячные вак­цины и сыворотки, две-три белые мыши или две морские свинки, зараженные возбудителем столбняка за 3...4 дня до занятия.

Место проведения занятия: аудитория кафедры эпизоотологии.

МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ

Столбняк — острая инфекционная болезнь животных, вызыва­емая токсином бактерии С. tetani.

Методы диагностики. Диагноз на столбняк устанавливают на основании клинических признаков, а также лабораторных иссле­дований.

Клинические признаки столбняка характерны: судорожные со­кращения мышц (рис. 10). Течение болезни острое.

Лабораторные исследования ведут в двух направлениях—обна­ружение токсина и выделение культуры возбудителя с последую­щей проверкой ее токсичности.

В лабораторию направляют раневой секрет, пробы ткани, кото­рые берут из глубоких слоев мест поражения: подозрительные ме­ста освобождают от грязи, обрабатывают спиртом, затем стериль­ными инструментами делают глубокий разрез и извлекают кусоч­ки пораженной ткани. От павших животных кроме материала из мест поражения на исследование отправляют кровь (5...10 мл), ку­сочки печени, селезенки.

Диагноз считают установленным: при обнаружении столбняч­ного токсина в исходном материале (без выделения культуры);

при выделении из исходного материала культуры со свойствами, характерными для возбудителя столбняка, продуцирующего ток­син.

При дифференциальной диагностике необходимо исключить бешенство, при котором тоже бывает повышенная возбудимость животного, но отсутствует тризм, а кроме того, обнаруживают па­ралич нижней челюсти и агрессивность к животным и человеку.

Рис. 10. Клиническое проявление столбняка (клонические судороги) у животных разных видов:

А — лошади; Б — собаки; В— овцы

Профилактические и оздоровительные мероприятия. В качестве специфического лечебного препарата используют антитоксичес­кую противостолбнячную сыворотку. Для ослабления судорожных сокращений мышц животным вводят успокаивающие и наркоти­ческие средства: хлоралгидрат, сульфат магния, алкоголь, аминазин, а также сердечные средства. Полезны новокаиновые блокады.

Больное животное содержат в затемненном помещении с обильной подстилкой, устраняют внешние раздражители, назна­чают диетическое кормление (болтушки из отрубей, протертые корнеплоды). При необходимости применяют питательные клиз­мы с глюкозой (400 г на 1 л воды), вводят сердечные средства с гексаметилентетрамином (50 мл 20%-го раствора). Прямую кишку освобождают от кала, массируют мочевой пузырь.

При профилактике следует предупреждать травматизм живот­ных. Необходимо соблюдать правила асептики и антисептики при хирургических вмешательствах, включая полную первичную обра­ботку ран с удалением размозженных тканей и инородных тел. При обширных ранениях, особенно в области конечностей, а также при тяжелых родах с целью профилактики животным вводят анти­токсическую противостолбнячную сыворотку от 3 до Ютыс.ЕД (желательно не позднее 12ч после ранения). В хозяйствах, где в течение короткого времени зарегистрировано несколько случаев заболевания столбняком, животных иммунизируют анатоксином, чтобы создать активный иммунитет. Жеребцов желательно вакци­нировать за 1 мес до кастрации.

При установлении диагноза на столбняк всю тушу с внутрен­ними органами направляют на техническую утилизацию.

ЗАДАНИЯ ДЛЯ САМОСТОЯТЕЛЬНОЙ РАБОТЫ

1. Приготовить мазки из патматериала, полученного при вскрытии морских свинок, окрасить, изучить под микроскопом.

2. Разработать схему дифференциальной диагностики столбня­ка от бешенства, пастбищной тетании, менингита.

3. Перечислить препараты, которые применяют для лечения животных, больных столбняком, указать дозы и способы введе­ния.

Занятие 36. Диагностика, профилактика и ликвидация микотоксикозов

Цель занятия: изучить наиболее широко распространенные микотоксикозы, методы их диагностики, дифференциальной диагностики, профилактических и оздоровительных мероприятий.

Материалы и оборудование: пробы различных грубых кормов, пораженных грибами, плакаты, демонстрирующие строение конидий различных грибов, мик­роскопы, конидии грибов на сусловом агаре.

Место проведения занятия: аудитория кафедры эпизоотологии.

МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ

Микотоксикозы — болезни, возникающие после поедания жи­вотными кормов, пораженных токсическими грибами, и проявля­ющиеся острыми и хроническими токсикозами. Известно около 240 видов токсических грибов и более 100 микотоксинов (основ­ные — афлатоксины, стахиботриотоксины, дендродохины, фузариотоксины, эрготоксины и др.). Указанные грибы размножаются не в организме животных, а в растительных продуктах (кормах). Наибольшую опасность представляют корма, загрязненные микотоксинами, относящимися к двум группам.

Первая группа (роды Aspergillus и Penicillium) —так называемые складские грибы. Это в основном плесени хранения, грибы, не­способные поражать растения в период вегетации, попадающие в зерновые и грубые корма главным образом во время уборки, но интенсивно развивающиеся в массе корма, особенно при наруше­нии режима его хранения.

Во вторую группу отнесены полевые грибы рода Fusarium. По­ражают растения в период их вегетации, являются факультатив­ными паразитами, способными во время хранения кормов при благоприятных условиях продолжать развитие.

Микотоксины опасны с двух точек зрения. В больших дозах они вызывают ярко выраженные признаки отравления. Болезнь часто заканчивается гибелью животных. Поступление какого-либо микотоксина (или одновременно нескольких) в малых дозах в организм животного хотя и не вызывает заметных отклонений от нормы и даже не диагностируется, но способствует снижению продуктивности, прироста массы тела, ослаблению резистентности организма. При этом создаются условия для возникновения многих инфекционных болезней.

Методы диагностики. Диагноз устанавливают на основании эпизоотологических данных, клинических признаков и результа­тов лабораторных исследований кормов.

Согласно эпизоотологическим данным микотоксикозы регист­рируют в течение всего года: одни проявляются в стойловый пери­од, другие — в пастбищный. В основном все сельскохозяйствен­ные, мелкие домашние и лабораторные животные, а также рыбы восприимчивы к токсичным продуктам жизнедеятельности гри­бов. Для микотоксикозов характерна массовость поражения.

После приема токсичного корма первые клинические признаки бо­лезни проявляются через несколько часов, а иногда через 2...3 сут и более. Температура тела остается нормальной или слегка понижена.

При диагностике необходимо учитывать следующие характер­ные особенности микотоксикозов:

болезнь не передается контактным или воздушно-капельным путем;

химиотерапия лекарственными препаратами или антибиотика­ми обычно малоэффективна;

болезнь характеризуется сезонностью и зависит от климатичес­ких условий.

Однако при нарушении правил хранения зерна и технологии изготовления кормов сезонные особенности микотоксикозов час­то не проявляются. Тщательные исследования могут указать на связь заболевания с каким-либо видом корма.

Лабораторные исследования заключаются в микологическом (микроскопия, органолептическая оценка) и токсикологическом исследованиях корма. Токсичность определяют с помощью био­пробы (на простейших, растениях, лабораторных животных, кури­ных эмбрионах), а также специальным окрашиванием, люминес­центным и хроматографическим анализом.

Основным показателем для дифференциальной диагностики микотоксикозов служит обнаружение в кормах токсинов опреде­ленных видов методом тонкослойной хроматографии.

Профилактические и оздоровительные мероприятия. Профилак­тика микотоксикозов заключается в использовании качественных кормов, исследовании их на микотоксины во время заготовки и в процессе хранения, а также в соблюдении техники приготовления и хранения грубых кормов.

Многие из микотоксинов термоустойчивы, не разрушаются при гранулировании, консервировании и других операциях, при­меняемых в кормопроизводстве. Установлена возможность разру­шения микотоксинов с помощью озона, аммиака, пероксида во­дорода, гипохлорита кальция. Основные требования, предъявляе­мые кдетоксикации:

должна быть экономически выгодной;

разрушать или инактивировать микотоксины;

не образовывать и не оставлять токсических или канцероген­ных веществ в конечном продукте;

разрушать споры грибов и мицелий, которые могли бы при благоприятных условиях размножаться и образовывать новые ток­сины;

сохранять питательную ценность корма и существенно не ме­нять его важные технологические свойства.

ЗАДАНИЯ ДЛЯ САМОСТОЯТЕЛЬНОЙ РАБОТЫ

1. Разработать схему дифференциальной диагностики:

афлатоксикоза свиней от отравления зоокумарином, охраток-сикоза, рубратоксикоза, болезни Ауески, Тешена;

эрготизма овец (отравления спорыньей) от абортов другой этио­логии (бруцеллезные, сальмонеллезные, хламидиозные);

стахиботриотоксикоза лошадей от сапа.

2. Разработать основные принципы мероприятий по профилак­тике и ликвидации микотоксикозов у крупного рогатого скота, лошадей, свиней и овец.

Гл а в а 2 БОЛЕЗНИ ЖВАЧНЫХ

Занятие 37. Диагностика, профилактика и ликвидация эмфизематозного карбункула (эмкара)

Цель занятия: изучить методы диагностики эмфизематозного карбункула, сис­тему профилактических и оздоровительных мероприятии.

Материалы и оборудование: окрашенные по Граму мазки с возбудителем эмка­ра, микроскопы, диапозитивы, вакцина против эмкара, две морские свинки, зара­женные возбудителем эмкара за 3...4 дня до занятия.

Место проведения занятия: аудитория кафедры эпизоотологии.

МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ

Эмфизематозный карбункул, или эмкар, — острая инфекцион­ная болезнь, преимущественно крупного рогатого скота, а иногда и овец. Возбудитель — Clostridium chauvoei.

Методы диагностики. Диагноз на эмфизематозный карбункул устанавливают на основании клинических, патологоанатомичес-ких, эпизоотологических данных и результатов лабораторных ис­следований.

В лабораторию направляют кусочки пораженных мышц, экссу­дат из крепитирующего отека. Исследование включает в себя мик­роскопию мазков из исходного материала, окрашенных по Граму, посевы на питательные среды и заражение лабораторных живот­ных.

Очень важно собрать данные об эпизоотическом состоянии каждого пункта, неблагополучного по эмкару. В числе этих дан­ных следует указать количество случаев заболевания эмкаром в каждом пункте, наличие отдельных участков пастбищ (выгонов, дворов, водоемов), неблагополучных по данной инфекции, топог­рафические, почвенные и другие условия обследуемых пунктов, практику водопоя скота в пастбищный период.

Профилактические и оздоровительные мероприятия. В пунктах, неблагополучных по эмфизематозному карбункулу, осушают забо­лоченные пастбища, благоустраивают места водопоя, а также вак­цинируют животных: крупный рогатый скот в возрасте от 3 мес до 4 лет, при возникновении болезни прививают весь скот.

В хозяйствах, где зарегистрирован эмкар овец, прививают все поголовье начиная с 6 мес и старше. Вакцину вводят внутримы­шечно однократно в дозе 2 мл независимо от возраста и упитанно­сти животных.

При установлении диагноза на эмкар на хозяйство накладыва­ют карантин и в дальнейшем следуют положениям инструкции о мероприятиях против эмфизематозного карбункула.

Карантин с неблагополучного пункта снимают через 14 дней со дня последнего случая заболевания или падежа животных и зак­лючительной дезинфекции.

ЗАДАНИЯ ДЛЯ САМОСТОЯТЕЛЬНОЙ РАБОТЫ

1. Установить особенности патологоанатомических изменений в органах морских свинок при эмкаре. Приготовить мазки из ор­ганов, изучить их под микроскопом.

2. Разработать схему дифференциальной диагностики эмфизе­матозного карбункула, сибирской язвы и злокачественного отека.

3. Решить эпизоотологическую задачу.

В конце мая, вскоре после перевода животных на летнелагерное содержание, были кастрированы бычки текущего года рожде­ния. Бычков-кастратов содержали в отдельном загоне под навесом в течение 4 дней, затем начали выпасать с животными откормоч­ной группы. На следующий день у одного животного отмечена хромота опирающегося типа на правую заднюю конечность. Со слов пастухов известно, что во время выгона животных на пастби­ще больных не было. До приезда ветеринарного врача животное пало. При осмотре трупа установлено, что труп слегка вздут, об­ласть кастрационной раны без признаков посткастрационных ос­ложнений. Область крупа с правой стороны отечная. Труп пере­везли на территорию скотомогильника. При разрезе кожи и под­лежащих тканей области крупа с правой стороны стекала красно­ватая жидкость с пузырьками газа. Мышцы темно-красного цвета. Вскрытие трупа прекращено.

Выбрать материал для лабораторного анализа и указать методы его исследования.

Составить план противоэпизоотических мероприятий.

Занятие 38. Диагностика, профилактика и ликвидация паратуберкулеза

Цель занятия: изучить методы диагностики паратуберкулеза, систему оздоро­вительных и профилактических мероприятий. - Материалы и оборудование: действующая инструкция по профилактике и лик­видации паратуберкулеза крупного рогатого скота, биопрепараты, слайды, схемы.

Место проведения занятия: аудитория кафедры эпизоотологии.

МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ

Паратуберкулез, или паратуберкулезный энтерит, — хроничес­кая болезнь в основном крупного рогатого скота, которую вызы­вает Mycobacterium paratuberculosis.

Методы диагностики. Первичный диагноз устанавливают на ос­новании характерных клинических признаков болезни с обяза­тельным подтверждением диагноза лабораторными методами.

Клиническая картина при паратуберкулезе непостоянна и часто имеет много общего с проявлением других болезней. Типичные "ризнаки паратуберкулеза: истощение, понос, вначале перемежающийся, затем постоянный. Снижается удой, появляются отеки в

области подгрудка и подчелюстного пространства, глаза западают кожа становится менее эластичной. Фекалии жидкие, со слизью с пузырьками газа, иногда с кровью и резким зловонным запахом. Однако у животного сохраняется аппетит и температура остается нормальной. По мере развития болезни нарастают общее угнете­ние животного, вялость. Резко выражена шилозадость. Слизистые оболочки бледные, к концу болезни аппетит обычно отсутствует усиливается жажда.

Для уточнения диагноза прибегают к патологоанатомическому методу исследования (рис. 11).

Лабораторные методы включают в себя бактериологическое и гистологическое исследования.

Мазки (не менее 10) из соскобов со слизистой оболочки пря­мой кишки и из каловых масс окрашивают по Цилю—Нильсену. При этой окраске темно-красные микобактерии паратуберкулеза располагаются на синем фоне кучками по 2...3 и больше.

Чистую культуру получают, высевая патологический материал на модифицированную казеиновую среду Дюбо—Смита с добав­лением фактора роста (экстракт микобактерии тимофеевой травы) и для контроля — на среду Петраньяни. Посевы выдерживают при температуре 38 "С в течение 2...4мес. Культура вырастает в виде плоских колоний с ядром в центре, которые в дальнейшем приоб­ретают бугристость. Сроки роста от 18 дней до 3 мес.

Возбудитель паратуберкулеза непатогенен для лабораторных животных.

При отрицательных результатах бактериологического исследо­вания прибегают к диагностическому убою. На вскрытии харак­терную картину для паратуберкулезного энтерита всегда обнару­живают в тонком отделе кишечника. Подтверждают диагноз мик­роскопией мазков со слизистой оболочки пораженных кишок и гистологическим исследованием материала.

Для гистологического анализа вырезают кусочки из стенки ки­шечника шириной до 2 мм, из лимфатических узлов — не толще 2 мм и готовят срезы. Одну часть препаратов окрашивают гематоксилин-эозином, а другую — по Цилю—Нильсену для обнаружения возбудителя. Гистологические изменения при паратуберкулезе отличаются от изменений при энтеритах другой этиологии на типичных разростов эпителиоидных клеток в слизистой оболочке, а иногда в подслизистом слое. Разросты располагаются диффузно и в виде гранулем, среди которых находятся и ги­гантские клетки типа Лангерганса. В срезах, окрашенных по Пилю—Нильсену, микобактерии паратуберкулеза обнаруживают в эпителиоидных и гигантских клетках и реже — вне их.

Для массовой диагностики паратуберкулеза в неблагополучных хозяйствах используют аллергические и серологические методы.

Аллергическую диагностическую пробу ставят с птичьим тубер­кулином. Аллерген вводят внутрикожно в дозах (мл): телятам до Змее—0,1; от 6 до 12 мес—0,15; от 1 года до 2 лет—0,2; до 3 лет—0,3; старше 3 лет — 0,4...0,5 . Реакцию учитывают через 48 ч. При образовании разлитого отека на месте введения препа­рата и утолщения кожной складки на 7 мм и более результат счи­тают положительным, при менее выраженной реакции и утолще­нии кожи от 5 до 7 мм — сомнительным. Всем животным с отри­цательной и сомнительной реакцией аллерген вводят повторно через 48 ч, реакцию учитывают через 24ч. Овцам птичий тубер­кулин вводят на внутренней поверхности бедра в дозе 0,3 мл од­нократно, реакцию учитывают через 48 ч. За положительный ре­зультат принимают выраженный воспалительный отек на месте введения туберкулина.

Серологическими методами исследуют животных старше 18 мес в соответствии с временным наставлением по постановке РСК для диагностики паратуберкулеза крупного рогатого скота и овец (с антигеном Сибирского научно-исследовательского ветери­нарного института).

Профилактические и оздоровительные мероприятия. В зоне, не­благополучной по паратуберкулезу, в системе профилактических мероприятий предусмотрена регулярная диспансеризация с целью контроля за общей резистентностью организма животных, состоя­нием их минерального и витаминного обмена.

При появлении в хозяйстве болезни все поголовье исследуют клиническим, серологическим и аллергическим методами. Боль­ных животных, подозрительных по заболеванию, а также с поло­жительным результатом аллергического или серологического ис­следования направляют на убой. При оздоровлении хозяйства ру­ководствуются положениями инструкции «О мероприятиях по профилактике и ликвидации паратуберкулезного энтерита круп­ного рогатого скота».

ЗАДАНИЯ ДЛЯ САМОСТОЯТЕЛЬНОЙ РАБОТЫ

1. Изучить инструкцию «О мероприятиях по профилактике и ликвидации паратуберкулезного энтерита крупного рогатого скота».

2. Составить план оздоровления мелочно-товарной фермы от паратуберкулезного энтерита крупного рогатого скота.

Занятие 39. Диагностика, профилактика и ликвидация лейкоза крупного рогатого скота

Цель занятия: изучить методы диагностики лейкоза крупного рогатого скота, систему профилактических и оздоровительных мероприятий.

Материалы и оборудование: микроскопы, мазки крови, содержащие незрелые

клетки крови, диапозитивы, таблицы: гематологический ключ, схемы классификации лейкоза,

Место проведения занятия: аудитория кафедры эпизоотологии.

МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ

Лейкоз крупного рогатого скота — хроническая инфекционная болезнь опухолевой природы. Возбудитель классифицирован как вирус лейкоза крупного рогатого скота (ВЛКРС), семейство Retrovindae. В естественных условиях ВЛКРС поражает чаще крупный рогатый скот. Вирус лимфоцитотропен, факторами пе­редачи служат кровь, секреты, экскреты и другие биологические жидкости, контаминированные кровью.

Методы диагностики. Диагноз устанавливают на основании се­рологических исследований (РИД), данных клинического, гема­тологического и гистологического исследований.

Эпизоотологический метод диагностики используют в качестве ориентировочного, с его помощью исключают наличие других ин­фекционных болезней.

Клинический метод малонадежен, однако необходим при пер­вичной диагностике. Осматривают доступные для исследования на­ружные и внутренние лимфатические узлы. Обращают внимание на упитанность животного, затрудненность дыхания, акт глотания наличие опухолей, пучеглазия и т.д. При поражении жизненно важных органов можно наблюдать самую разнообразную патоло­гию — истощение, расстройство функции сердечно-сосудистой си­стемы, отеки и т.д. Выраженные клинические признаки проявля­ются у животных лишь в терминальной стадии заболевания.

Специфические признаки при лейкозах: лимфатические узлы (подчелюстные, предлопаточные, надвыменные, глубокие пахо­вые) симметрично или асимметрично увеличены, подвижны, плотной консистенции. Иногда отмечают одно- или двусторон­ний экзофтальм (пучеглазие).

При ретикулезах соматические лимфоузлы увеличены, поверх­ностные — малоподвижны, зачастую спаяны с окружающими тка­нями и кожей.

В терминальной стадии заболевание сопровождается развитием неспецифических признаков: гипотонией или атонией преджелудков, бесплодием, параличами и т.д.

Лейкоз следует дифференцировать от туберкулеза, бруцеллеза, паратуберкулеза, актиномикоза.

Гематологическая диагностика основана на тестировании коли­чественных и качественных изменений форменных элементов крови (табл. 7). Показателями служат общее количество лейкоци­тов в 1 • Ю-³ мл крови, относительное (%) и абсолютное количе­ство лимфоцитов и других групп лейкоцитов, а также наличие не­дифференцированных и патологических форм клеток.

Результаты гематологических исследований оценивают с уче­том возраста животных в соответствии с диагностическим «лейкозным ключом», применяемым в РФ согласно действующей ин­струкции по борьбе с лейкозом.

Стойкий или прогрессирующий лейкоцитоз (рис. 12) и лимфоцитоз, отмеченные при трехкратном исследовании (с интервалом 2...3 мес), — достоверный показатель лейкоза. Необходимо учиты­вать, что гематологическим методом не всегда удается диагности­ровать болезнь. Нередки случаи алейкемического течения заболе­вания, когда картина крови остается в пределах нормы, характе­ризуется несколько пониженным общим количеством форменных элементов. Именно в этих случаях особенно велико значение все­го комплекса диагностических методов.

При массовых гематологических исследованиях крупного рога­того скота на лейкоз следует учитывать возможность у животных лейкемоидных реакций, обусловленных развитием таких патоло­гических процессов, как туберкулез, бруцеллез, маститы, эндомет­риты, токсикозы и др. При дан­ных заболеваниях в отличие от лейкоза изменения в показателях крови обычно носят временный характер.

Серологические тесты направ­лены на выявление в сыворотке крови животных антител к спе­цифическим антигенам ВЛКРС, с которым ассоциирован лейкоз. Основной и наиболее доступный метод серодиагностики — РДП в агаровом геле (рис.13).

Рис.-12. Увеличение содержания лейкоци­тов в крови животного при лейкозе:

1 —лейкоциты; 2— эритроциты

Рис. 13. Результат исследования сывороток крови в РДП на лейкоз (схема):

АГ—антиген; СПС — контрольные специфические сыворот­ки; 1...4— исследуемые сыворотки.

В качестве антигенов используют: гликопротеидный антиген (ГП), входящий в состав оболочек ВЛКРС; полипептидный ан­тиген (р24) — внутренний белок ВЛКРС;

двойной антиген (ГП + р24).

Обнаружение в РДП сывороточных преципитируюших антител к антигенам ВЛКРС отражает развитие у животного лейкоза.

Сравнительные данные, полученные в результате диагностики лейкоза с помощью гематологического и серологического тестов, свидетельствуют о преимуществах последнего.

Патологоанатомические изменения при разных формах лейкоза различаются.

При собственно лейкозах (гемабластозах) селезенка увеличена (при всех формах), размер зависит от стадии заболевания (до 1 м в длину). Отмечают гиперплазию фолликулов. Возможен разрыв капсулы с последующим кровоизлиянием в брюшную полость.

Лимфоузлы увеличены в начале заболевания незначительно, в терминальной стадии—до 20х10 см (надвымянные). Капсула гладкая, легко снимающаяся. На разрезе ткань лимфоузлов саловидная, рисунок ее сглажен.

В других органах патологические изменения устанавливают в поздние сроки развития заболевания. В печени, сердце, почках могут быть диффузные или очаговые разрастания серо-белого или серо-розового цвета.

При ретикулезах обнаруживают следующие изменения. Селе­зенка при лимфо- и ретикулосаркоме без изменений, при систем­ном ретикулезе и лимфогранулематозе всегда увеличена. Лимфо­узлы увеличены неравномерно в различных областях тела. Кап­сула шероховатая, часто сросшаяся с соседними тканями и органами. Характерны опухолевидные разрастания различных размеров—от горошины до больших конгломератов (25...30 кг). Опухоли плотные, серо-белого цвета, с очагами некроза и крово­излияний (мраморный вид). В паренхиматозных органах отмеча­ют дистрофические изменения. В сердце, сычуге, матке, почках возможны разрастания опухолевой ткани.

Гистологическое исследование обязательно для подтверждения диагноза на лейкоз. С помощью данного метода определяют фор­му болезни в зависимости от характера клеток пролиферата, сте­пени их дифференцировки, а также устанавливают стадию пато­логического процесса.

При собственно лейкозах гистологическим методом обнаружи­вают следующие изменения: при лимфолейкозе — избыточное об­разование в ткани селезенки и лимфоузлов клеток лимфоидного ряда с последующей метаплазией костного мозга и появлением в ряде случаев инфильтративных разрастаний в органах, не связан­ных с кроветворением у взрослых животных; при миелолейкозе — поражение в первую очередь костного мозга и селезенки: нару­шенную клеточную структуру этих органов, пролиферацию мало­дифференцированных полиморфноядерных клеточных форм и присутствие миелоидных элементов. При гемобластозе развитие кроветворных органов прекращается на стадии малодифференци­рованных родоначальных клеток преимущественно в костном мозге и селезенке с последующим распространением процесса на лимфатические узлы и вовлечением ретикулоэндотелиальной сис­темы всего организма.

Для ретикулезов также характерны различные изменения. При системном ретикулезе поражаются костный мозг, селезенка, лим­фоузлы. В них наблюдают диффузную пролиферацию малодиф­ференцированных полиморфноядерных ретикулярных клеток. В патологический процесс вовлекаются также сердце, сычуг, кишеч­ник, почки, матка, легкие и другие органы с развитием в них опу­холевых разрастаний недифференцированных ретикулярных эле­ментов. При лимфо- и ретикулосаркоме поражения селезенки и костного мозга отсутствуют. Пролиферация лимфоидных элемен­тов клеток (при лимфосаркоме) или ретикулярных (при ретикуло­саркоме) возникает в лимфоузлах, сычуге, сердце, кишечнике, матке. При лимфогранулематозе поражаются лимфоузлы с вовле­чением в ряде случаев селезенки и других органов. Клеточный со­став пораженных органов полиморфен. Для этой формы ретикуле­зов характерно появление гигантских клеток Березовского— Штернберга.

Диагноз на лейкоз считают установленным, а хозяйство небла­гополучным по этой болезни, если серологическим методом выяв­лены антитела к вирусу лейкоза крупного рогатого скота; а также если клинические, гематологические и Патологоанатомические изменения, характерные для лейкоза, подтверждены гистологи­ческими исследованиями, а при жизни у этих животных установ­лены специфические антитела к ВЛКРС.

Животных, у которых в крови обнаружены специфические ан­титела к ВЛКРС, но отсутствуют гематологические изменения и клинические признаки, оценивают как инфицированных вирусом лейкоза.

Животных, у которых установлены в крови антитела к ВЛКРС, а также гематологические изменения или клинические признаки, характерные для лейкоза, оценивают как больных лейкозом.

Профилактические и оздоровительные мероприятия. Система ме­роприятий по профилактике и ликвидации лейкоза крупного ро­гатого скота определена инструкцией.

ЗАДАНИЯ. ДЛЯ САМОСТОЯТЕЛЬНОЙ РАБОТЫ

1. Изучить инструкцию о мероприятиях по борьбе с лейкозом крупного рогатого скота.

2. Составить комплексный план оздоровления хозяйства от лейкоза крупного рогатого скота.

Задание 40. Диагностика, профилактика и ликвидация клостридиозов овец

Цель занятия: изучить методы диагностики клостридиозов овец, систему про­филактических и оздоровительных мероприятий.

Материалы и оборудование: окрашенные по Граму мазки с возбудителями брадзота и инфекционной энтеротоксемии овец, диапозитивы, вакцины против клостридиозов овец.

Место проведения занятия: аудитория кафедры эпизоотологии.

МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ

Б р ад з от—быстро протекающая инфекционная болезнь овец, вызываемая анаэробной бактерией Clostridium septicum.

Инфекционная энтеротоксемия— остро протекаю­щая болезнь животных различных видов (овец, телят, поросят, пушных зверей, птиц).

Анаэробная дизентерия ягнят—аналогичная бо­лезнь новорожденных ягнят.

Возбудитель энтеротоксемии овец—спорообразующийанаэ-роб С. perfringens типов С и D, анаэробной дизентерии ягнят— типа В.

Методы диагностики. Диагноз на клостридиозы овец устанавли­вают на основании эпизоотологических, клинических, патологоанатомических данных и результатов лабораторных исследований.

Исследование на брадзот включает в себя микроскопию мазков из патологического материала, посевы на питательные среды и за­ражение лабораторных животных.

В лабораторию направляют паренхиматозные органы, изме­ненные участки стенки сычуга, отечную ткань, трубчатую кость, часть двенадцатиперстной кишки, перевязанную с двух сторон, экссудат грудной и брюшной полости, инфильтрат подкожной клетчатки.

Диагноз на брадзот считают установленным в случае:

выделения из исходного материала культуры со свойствами, ха­рактерными для возбудителя данного заболевания, и гибели хотя бы одной морской свинки из двух, зараженных исходным матери­алом, и выделения из ее органов культуры возбудителя;

гибели хотя бы одной морской свинки из двух, зараженных ис­ходным материалом, при наличии у нее типичной для данного возбудителя патологоанатомической картины и выделении из ор­ганов культуры возбудителя, если даже в посевах из исходного ма­териала культура возбудителя не выделена.

Лабораторные исследования на инфекционную энтеротоксемию и анаэробную дизентерию ягнят включают в себя: обнаружение ток­сина в содержимом тонкого отдела кишечника; выделение культу­ры возбудителя из исходного материала с последующей проверкой ее токсичности.

В лабораторию направляют труп животного целиком или наи­более пораженные отрезки тонкого отдела кишечника с содержи­мым, а также часть печени, селезенку и почку. Патологический материал следует брать в течение З...4ч после смерти животного.

Диагноз на инфекционную энтеротоксемию животных и анаэ­робную дизентерию ягнят считают установленным в случае:

обнаружения токсина в фильтрате содержимого тонкого отдела кишечника методом биопробы и определения его типа в РН с типоспецифическими сыворотками;

выделения из содержимого тонкого отдела кишечника культу­ры с характерными для данного возбудителя свойствами, проду­цирующей токсин, тип которого установлен в РН с типоспецифическими сыворотками.

Профилактические и оздоровительные мероприятия. Профилак­тика заболевания овец и коз клостридиозами предусматривает полноценное кормление животных без резких изменений рацио­на, а также соблюдение санитарных и зоогигиенических норм со­держания поголовья.

В пунктах, ранее неблагополучных по этим болезням, всех овец не позднее чем за 20...30 дней до сезона появления заболевания или выгона животных на пастбище иммунизируют соответствую­щими вакцинами.

В хозяйстве, неблагополучном по брадзоту овец или инфекци­онной энтеротоксемии, вводят ограничения. Всех больных и по­дозрительных по заболеванию животных изолируют и назначают им бивалентную гипериммунную сыворотку в лечебных дозах, здоровых переводят на стойловое содержание и вакцинируют.

Трупы утилизируют вместе со шкурами (шерсть не снимают). Помещения дезинфицируют 3%-м раствором хлорной извести, 5%-м раствором гидроксида натрия, 10%-м раствором формальде­гида.

Ограничения с хозяйства снимают через 20 дней со дня последне­го случая падежа животных от указанных инфекций и заключи­тельной дезинфекции.

ЗАДАНИЯ ДЛЯ САМОСТОЯТЕЛЬНОЙ РАБОТЫ

1. Изучить под микроскопом окрашенные мазки.

2. Разработать схему дифференциальной диагностики брадзота, инфекционной энтеротоксемии, сибирской язвы, эмфизематоз­ного карбункула, пастереллеза, пироплазмоза.

3. Решить эпизоотологическую задачу.

Овцеводческое хозяйство было благополучно по инфекцион­ным болезням. В последние дни отмечено заболевание ягнят пер­вых двух дней жизни, реже — в возрасте 2...3 нед. Клинические признаки: температура тела 41 "С; пульс 120 уд/мин; дыхание 50 дв/мин. Общее состояние угнетенное, аппетит отсутствует. Ди­арея, фекалии жидкие, вначале желтоватого цвета, затем более темные, с примесью крови. Болезнь длится от 2 до 8 дней. Леталь­ность 20...50 %.

Установить первоначальный диагноз.

Указать, какие необходимы исследования для уточнения диаг­ноза.

Составить план противоэпизоотических мероприятий.

Занятие 41. Диагностика парагриппа-3, инфекционного ринотрахеита, вирусной диареи и аденовирусной инфекции крупного рогатого скота

Цель занятия: изучить методы диагностики парагриппа-3, инфекционного ринотрахеита, вирусной диареи и аденовирусной инфекции крупного рогатого ско­та.

Материалы и оборудование: диапозитивы, таблицы, рисунки. Место проведения занятия: аудитория кафедры эпизоотологии.

МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ

Диагноз при этих болезнях может быть установлен только с ис­пользованием всего комплекса исследований.

Парагрип п-3 — остропротекающая контагиозная болезнь. Возбудитель — вирус семейства Paramyxoviridae.

При установлении диагноза нужно учитывать эпизоотологические данные, симптомокомплекс и патологоанатомические из­менения и в первую очередь результаты вирусологических и серо­логических исследований.

Согласно эпизоотологчческим данным болеют главным образом телята до 6-месячного возраста.

Основной клинический признак болезни — поражение органов дыхания.

Лабораторная диагностика основана на выделении возбудителя из носовых истечений больных животных и идентификации его с помощью реакции гемадсорбции и ее торможения в культуре кле­ток, реакции торможения гемагглютинации и выявления прироста специфических антител в парных сыворотках.

Инфекционный ринотрахеит — остропротекающая кон­тагиозная болезнь, вызываемая вирусом семейства Herpesviridae.

У крупного рогатого скота известно пять форм клинического проявления инфекционного ринотрахеита: респираторная, глазная, менингоэнцефалитная, или нервная, генитальная и суставная. При попадании вируса в половые органы животного развивается пустулезный вульвовагинит, характерны аборты. У телят часто ре­гистрируют пневмонию. Гибель плода в утробе матери и аборты отмечают через 3 нед после заражения.

Лабораторный диагноз основан на выделении и идентификации вируса в тканевой культуре почек, легких, тестикул бычков. При­сутствие вируса инфекционного ринотрахеита в зараженных куль­турах клеток выявляют по цитопатическому действию (ЦПД) и идентифицируют с помощью РН.

Вирусная диарея (ВД)— острая контагиозная болезнь, вызываемая пестивирусом семейства Flaviviridae.

Согласно эпизоотологическим данным болеет крупный рогатый скот обычно в возрасте от 2 мес до 2 лет.

Клинические признаки болезни зависят от ее течения (острое, подострое, хроническое и латентное). При остром течении у жи­вотных резко повышается температура тела (40,5...42,4 °С), разви­вается угнетение. Одновременно отмечают гиперемию слизистых оболочек носовой полости, а затем слизистые истечения из носо­вых отверстий.

Для лабораторного исследования направляют кусочки слизистой оболочки носа, кишечника, внутренних органов и лимфатические узлы в термосе со льдом. Вирус выделяют на первичных культурах клеток тестикул быка, почки эмбриона коровы и титруют в РН на культуре клеток, в РИД, РСК, РИФ, РИА.

Аденовирусные инфекции—остропротекающие бо­лезни животных многих видов (чаще болеет КРС). Поражается в основном молодняк, у взрослых животных болезнь протекает ла­тентно. Возбудитель принадлежит к семейству Adenoviridae.

Клинические признаки у телят: лихорадка, снижение аппетита, слезотечение, слизисто-гнойное истечение из носа. Затем отмеча­ют затрудненное дыхание, кашель, диарею с примесью крови. Ле­тальность до 60 %. При переболевании телята долго отстают в раз­витии.

Диагноз устанавливают на основании лабораторных исследова­ний — выделения вируса в культурах тканей и идентификации его в РСК, РИФ, РДП, РН, РНГА и результатов исследования парных сывороток в РНГА.

Учитывая возможность смешанной инфекции, параллельно ис­следуют материал бактериологическим методом. Дифференциаль­ная диагностика вирусных респираторных болезней крупного ро­гатого скота приведена в таблице 8.

ЗАДАНИЯ ДЛЯ САМОСТОЯТЕЛЬНОЙ РАБОТЫ

1. Разработать схему дифференциальной диагностики инфек­ционного ринотрахеита и хламидиоза.

2. Решить эпизоотологическую задачу.

Комплекс по откорму молодняка крупного рогатого скота. За­болевание телят возникло через 1 сут после их перевозки в холод­ную дождливую погоду в открытых автомашинах. Болезнь харак­теризовалась быстрым распространением. В течение 10 дней забо­лело 80 % телят. При типичном течении болезни животные через 1...2 нед выздоравливали. У отдельных телят (10 %) болезнь при­няла затяжное течение и тяжелую форму, при этом нередко окан­чивалась смертью, особенно при поражении легких.

Клинические признаки болезни: температура тела 41... 42 "С;

пульс 110...120 уд/мин; дыхание 60...84 дв/мин. Общее состояние угнетенное. Животные плохо поедают корм. Серозно-катаральный конъюнктивит, ринит. Серозное истечение из носовой поло­сти. Сильный сухой кашель. У одних животных наблюдают слю­нотечение, на слизистой оболочке ротовой полости эрозии, уси­ленную перистальтику, жидкие фекалии. У других—вначале се­розный конъюнктивит и ринит, а затем слизисто-гнойное истечение из носовой полости, усиливающийся кашель, признаки бронхопневмонии.

Установить первоначальный диагноз.

Выбрать дополнительные методы диагностики, разработать схему дифференциального диагноза.

Занятие 42. Лечение, профилактика и ликвидация парагриппа-3, инфекционного ринотрахеита, вирусной диареи и аденовирусной инфекции крупного рогатого скота

Цель занятия: изучить способы лечения вирусных респираторных заболеваний крупного рогатого скота, систему профилактических и оздоровительных меропри­ятий.

Материалы и оборудование: аппаратура для получения аэрозолей лекарствен­ных средств (САГ, ДАГ), специфические сыворотки, водорастворимые антибио­тики (пенициллин, стрептомицин и др.), сульфаниламидные препараты (норсуль­фазол натрия, сульфацил натрия), бронхолитики (эфедрин, эуфиллин).

Место проведения занятия: аудитория кафедры эпизоотологии или хозяйство, неблагополучное по респираторным болезням.

МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ

Способы лечения. Для лечения респираторных болезней круп­ного рогатого скота применяют сыворотку крови выздоровевших животных, которую вводят парентерально или аэрозольным спо­собом. Если есть возможность, из сыворотки готовят иммунные глобулины, которые назначают с лечебной целью в виде аэрозолей или парентерально. Лучший эффект всегда получают от аэрозоль­ного применения.

Из лекарственных препаратов используют антибиотики, сульфаниламидные средства, аэрозоли лимонной и молочной кислот, лактат этакридина и другие препараты.

Животных обрабатывают в течение 40...60 мин непосредствен­но в помещениях, где создают герметичность.

Целесообразно использовать антибиотики пролонгированного действия (бициллин, дибиомицин, дитетрациклин, экмоновоцил-лин и др.). Дибиомицин и дитетрациклин вводят внутримышечно по 4000...5000 ЕД на 1 кг массы животного трехкратно каждые 5...7 дней. Эффективность препаратов повышается при назначе­нии их в комплексе с витаминами А, В^, С и гормональными пре­паратами. Последние способствуют восстановлению функции ды­хательных путей и положительно влияют на резорбцию антибио­тиков. Применяют гидрокортизон (25 мг ДВ) подкожно по 1 мл или преднизолон внутрь по 20 мл в течение 5...6 дней. При разви­вающихся патологических процессах в легких рекомендуют ферментотерапию: смесь трипсина с дезоксирибонуклеазой. По 10 мг каждого фермента растворяют в 10 мл физиологического раствора и вводят внутримышечно больному теленку 1 раз в сутки до кли­нического выздоровления. При бронхопневмонии телят эффек­тивна новокаиновая терапия. На ранней стадии болезни одно- и двукратная блокада грудных нервов и симпатических стволов вполне достаточна, чтобы купировать воспалительный процесс.

При респираторных болезнях антибактериальные и антивирус­ные препараты лучше использовать в форме аэрозолей, так как при этом способе введения удается достичь терапевтических кон­центраций в местах первичной локализации возбудителя. Ингалируемые лекарственные вещества начинают проявлять свое дей­ствие в 20 раз быстрее, чем те же средства, введенные паренте­рально. При этом дозы ингалируемых веществ в 4 раза меньше. Кроме того, из легких препараты попадают в большой круг крово­обращения через малый, минуя печень, и активность их не умень­шается.

Оздоровительные и профилактические мероприятия. Мероприя­тия против респираторных болезней в основном базируются на выполнении общих ветеринарно-санитарных мер и сводятся к ох­ране хозяйств от заноса возбудителя, улучшению условий содер­жания (комплектование равновозрастных групп), кормления и повышению общей ветеринарно-санитарной культуры на фермах. Больных животных необходимо строго изолировать.

На крупных фермах (комплексах) рекомендуют использовать средства, которые характеризуются не только лечебными, но и дезинфицирующими свойствами: могут санировать воздух и поме­щения, кожный покров животных. К таким веществам относят: йодсодержащие препараты (йодтриэтиленгликоль, мастистерил, хлорид йода, йодид алюминия); хлорсодержащие (гипохлорит кальция или натрия, хлорамин); кислоты (надуксусная, молочная, уксусная) и ряд других средств.

Для специфической профилактики в производственных усло­виях применяют моно- и ассоциированные культуральные вакци­ны.

Многие исследователи и практики отдают предпочтение при­менению сывороток крови реконвалесцентов или приготовленных из них иммунных глобулинов. Последние содержат антитела ко всем антигенам, которые имеются в данном хозяйстве. Введенные аэрозольным методом иммуноглобулины оказываются прекрас­ным профилактическим лечебным средством.

ЗАДАНИЯ ДЛЯ САМОСТОЯТЕЛЬНОЙ РАБОТЫ

1. Изучить схемы и методику аэрозольной обработки телят раз­личными препаратами.

2. Разработать схему мероприятий по профилактике и ликвида­ции респираторных болезней в хозяйстве по откорму бычков.