1.12. Методы патологоанатомического вскрытия погибших эмбрионов

Вскрытие яиц производят в определенные периоды для контроля инкубирования. Первое вскрытиепроизводится в период интенсивной дифференцировки зародыша в возрасте 1,5-2-х суток. Определяют размеры бластодермы, светлого поля, зародыша, подсчитывают число парсомитов.

Второе вскрытиепроизводится у кур на 6-7-е сутки инкубирования, у уток, индеек - 7-8-е сутки, у гусей - 9-10-е сутки, определяют размер и массу эмбрионов, состояние амниона, аллантоиса и желточного мешка.

Третье вскрытиепроизводится у кур - на 15-16-е сутки инкубирования, индейки, утки - 22-23-и сутки, гуси - 24-25-е сутки. Определяют размер и массу эмбрионов, количество неиспользованного белка, амниотической и аллантоисной жидкости.

Четвертое вскрытиепроизводят при переносе яиц на вывод у кур - 19-20-е сутки, индейки и утки - 25-26-е сутки, гуси - 27-28-е сутки. Определяют готовность эмбрионов к вылуплению, при этом учитывают состояние аллантоиса, втягивание желтка в брюшную полость, внешний вид эмбриона, его размер, массу и положение.

Для вскрытия погибших эмбрионов необходимо следующее оборудование и инструменты: большая и малая эмалированная кюветы, металлический ящик для складирования вскрытых эмбрионов, два хирургических пинцета, 4 чашки Петри, глазные ножницы, лупа, стерильные пробирки и пипетки Пастера, вата, фильтровальная бумага, хирургические перчатки или вазелин.

При помощи овоскопа от партии инкубированных яиц в 20-30 тысяч отбирают 100-150 яиц с погибшими эмбрионами.

Вскрывают скорлупу яйца ножницами по границе воздушной камеры, затем при помощи пинцета удаляют подскорлупные пленки. Эмбрион извлекают из скорлупы и осматривают. Также производят осмотр подскорлупной пленки, аллантоиса и амниона. После чего захватывают пинцетом нижнюю часть клюва и с помощью ножниц рассекают стенку ротовой полости, пищевода и грудную кость. Производят осмотр кишечника, желтка, паренхиматозных органов и околоплодных оболочек. Все патологоанатомические изменения записывают в протокол вскрытия, устанавливая патологоанатомический диагноз, и выводят % поражения различными болезнями.

При необходимости отбирают патматериал для гистологического, бактериологического, вирусологического, биохимического и химико-токсикологического исследований. Для гистологического исследования берут хорион-аллантоисные оболочки и эмбрион, фиксируя в 10%-ном растворе нейтрального формалина или в 96%-ном спирте.

Во время вскрытия погибших эмбрионов следует соблюдать основные меры профилактики, предупреждающие возникновение гнойничковых болезней кожи, вызванных кокковыми микроорганизмами. Для этого вскрытие лучше всего проводить в тонких резиновых перчатках или же перед вскрытием руки смазывают вазелином. На рот и нос желательно надевать марлевую повязку.

Тема 2.Оценка клинического и иммунного статуса организма птиц

Известно, что устойчивость организма птиц к вредным агентам окружающей среды во многом определяется факторами иммунной защиты. Интенсификация птицеводства ставит перед ветеринарными специалистами ряд проблем для решения которых важное значение имеет оценка клинического и иммунного статуса организма птиц.

При этом важное значение имеют показатели биохимического, морфологического и иммунологического исследования крови.

По данным Бабиной М.П. (1996) у цыплят после вывода в крови содержится гемоглобина - 100,9 +3,31 г/л, эритроцитов - 2,11+0,11^.10¹²/л, тромбоцитов - 61,0 + 4,81^. 10⁹/л, лейкоцитов - 34,7+1,68^.10⁹/л и иммуноглобулинов - 10,5 + 1,33 г/л. В этом возрасте отмечается самая высокая лизоцимная активность сыворотки крови. В то же время бактерицидная активность сыворотки крови и фагоцитарная активность псевдоэозинофилов очень низкие. Гематологические показатели крови у птиц разных видов представлены в таблице 1.

Установлено, что первоначальная защита цыпленка во многом зависит от пассивно перенесенных антител от курицы-матери (трансовариальный иммунитет), которые поступают в яйцо за 5-7 дней до овуляции, а также от уровня содержания лизоцима в белке яиц, каротиноидов и витамина А в желтке. По данным ряда ученых в белке яиц содержатся иммуноглобулины М и А и лизоцим, а в желтке - иммуноглобулины G. Более высокое содержание общего белка и белковых фракций в белке (иммуноглобулины М и А) и желтке (иммуноглобулины G) отмечается в начале и конце яйцекладки, а в период интенсивной яйцекладки содержание их значительно снижается (Бабина М.П., 1996).

В процессе инкубации наблюдается избирательное поступление иммуноглобулинов из белка и желтка развивающемуся эмбриону. В начале происходит передача иммуноглобулинов М и А, а к 14-18-му дню инкубации содержание их в белке резко уменьшается. При недостатке указанных иммуноглобулинов в яйце к концу первой недели инкубации увеличивается эмбриональная смертность.

За 7 дней до вывода, из желтка к эмбриону происходит передача иммуноглобулина G. При этом содержание его к 18-му дню инкубации уменьшается в 1,5-2 раза.

У цыплят после вывода по данным Бабиной М.П. (1996) в сыворотке крови содержится общего белка - 39,4 +1,21 г/л, иммуноглобулинов - 10,5+1,33 г/л (из них иммуноглобулина М - 1,8+0,31 г/л, иммуноглобулина А - 2,6 + 0,43 г/л, иммуноглобулина G - 6,1 + 1,10 г/л), что приближается к содержанию защитных факторов у взрослых кур.

Иммунный статус цыплят зависит от содержания у них защитных факторов. В жизни цыплят различают три критических иммунологических периода: первый возрастной иммунный дефицит возникает на 3-5-й дни жизни, второй - на 12-28-й и третий - к концу 2-го месяца жизни. Диагноз ставится путем лабораторного исследования иммунного статуса эмбрионов и цыплят путем исследования содержания в них иммуноглобулинов, лизоцима и каротиноидов (витамина А).

Иммунодефициты у цыплят характеризуются снижением в сыворотке крови количества иммуноглобулинов, а в дальнейшем и клеточных факторов защиты.

Профилактика иммунодефицитов: сбалансированное кормление кур-несушек, отбор качественных яиц для инкубации, полноценное кормление цыплят, отсутствие стрессовых ситуаций в птицеводстве.