Добавил:
Upload Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:
забор матер1.docx
Скачиваний:
20
Добавлен:
04.05.2019
Размер:
64.6 Кб
Скачать

Санитарно-микробиологическое исследование предметов обихода

При проведении контроля обсемененности предметов обихода и медицинского оборудования необходимо проводить санитарно-микробиологические исследования.

В случаях обследования предметов обихода, изготовленных из тканей и других мягких пористых и ворсистых материалов метод смывов недостаточно эффективен. В этом случае нужно использовать метод аппликаций: на исследуемые предметы делают аппликацию из однородной ткани размером примерно 5,0´ 10,0см. Через определенные промежутки времени их снимают с предметов и подвергают санитарно-вирусологическому исследованию.

Обнаружение в смывах с предметов обихода минимальных количеств вирусов, свидетельствует о том, что санитарно-вирусологическое состояние обследуемого учреждения неблагоприятно и требует проведения ряда профилактических мероприятий.

Бактериологические лаборатории санитарно-эпидемиологических и дезинфекционных станций проводят контроль не реже двух раз в год, бактериологические лаборатории лечебных учреждений контролируют санитарно-гигиенический режим (обсемененность различных объектов и воздуха) один раз в месяц, а контроль стерильности инструментов, перевязочного материала, операционного белья, рук хирурга и кожи операционного поля – 1 раз в неделю.

Объектами исследования при проведении бактериологического контроля являются: воздушная среда; различные объекты внешней среды; хирургический инструментарий, перевязочный материал, белье; шприцы, иглы, шовный материал; зонды, катетеры, бужи, резиновые перчатки и др. изделия из резины и пластикатов; хирургический шовный материал, подготовленный к использованию; руки хирургов и кожа операционного поля .

Санитарно-микробиологическое исследование воздуха

Бактериологическое исследование воздушной среды в ЛПУ предусматривает:

определение общего содержания микробов в 1,0м3 воздуха;

определение содержания золотистого стафилококка в 1,0м3 воздуха;

определение содержания плесневых и дрожжевых грибов в дм3 воздуха.

2.1.2. Отбор проб воздуха для бактериологического исследования проводят в следующих помещениях: операционных блоках; перевязочных; послеоперационных палатах; отделениях и палатах реанимации и интенсивной терапии и других помещениях, требующих асептических условий.»

Исследование микробной обсемененности объектов внешней среды.

(приказ №720 МЗ СССР от 31.07.78, приказ №215 МЗ СССР от 14.04.79)

«2.2.1. Бактериологическое исследование микробной обсемененности предметов внешней среды предусматривает выявление стафилококка, синегнойной палочки, бактерий группы кишечных палочек и аэромонад (строго по показаниям). Забор проб с поверхностей различных объектов осуществляют методом смывов.

2.2.2. Взятие смывов производят стерильным ватным тампоном на палочках, вмонтированных в пробирки, или марлевыми салфетками, размером 5х5см, простерилизованными в бумажных пакетах или в чашках Петри. Для увлажнения тампонов в пробирки с тампонами наливают по 2,0мл стерильного физиологического раствора…. Салфетку захватывают стерильным пинцетом, увлажняют физиологическим раствором из пробирки, после протирания исследуемого объекта помещают в ту же пробирку.

Контроль за стерильностью инструментов (шприцы, иглы, системы переливания крови многократного использования, зонды, бужи и другие изделия из резины), перевязочного материала, операционного белья, рук хирургов и кожи операционного поля проводят не реже 1 раза в неделю.

При этом «3.1. забор проб на стерильность проводит операционная сестра под наблюдением сотрудника бактериологической лаборатории в стерильные емкости с соблюдением строжайших правил асептики непосредственно перед проведением операции.

При контроле микробной обсемененности объектов окружающей среды исследованию на стерильность подлежат: инъекционные лекарственные формы; лекарственные формы для обработки слизистых оболочек и кожи новорожденных; растворы для питья; шовный и перевязочный материал; хирургические перчатки; материи для первичной и повторной обработки новорожденных; материал для новорожденных в стерильных коробках (биксах); материал для операционной; индивидуальные комплекты для приема родов; зонды, катетеры и другие изделия медицинского назначения.

Посевы на стерильность хирургического инструмента. Хирургический инструментарий с помощью стерильного пинцета извлекают из бикса или мягкой упаковки и целиком погружают в пробирки с питательными средами. Как исключение, в отдельных случаях, если все простерилизованные инструменты в одной упаковке крупных размеров (иглодержатели, ранорасширители и т.д.), производят смыв с поверхности инструмента стерильной салфеткой, смоченной в стерильном физиологическом растворе или стерильной водопроводной воде, и погружают салфетку в пробирку с тиогликолевой средой. смывы с других инструментов засевают в пробирки со средой Хоттингера и Сабуро.

Методика посева на стерильность игл и шприцов. Для контроля отбирают шприцы малой емкости (1,0мл или 2,0мл) в условиях бактериологического бокса, с соблюдением правил асептики погружают в пробирки с питательными средами отдельно цилиндр, поршень, иглы.

При необходимости контроля шприцев большей емкости (10,0-20,0мл и более) исследование стерильности производят методом смыва, при этом стерильной салфеткой, смоченной в стерильном физиологическом растворе или стерильной водопроводной воде, протирают с помощью пинцета внутренние части шприца и погружают салфетку в питательную среду.»

Контроль стерильности систем переливания крови многоразового использования, зондов, катетеров, резиновых перчаток и других изделий проводят путем полного погружения мелких изделий или небольших отрезанных кусочков (1-2см) в питательные среды.

Посев на стерильность хирургического шовного материала. Подготовленный к работе кетгут в операционном блоке хранят в спиртовом растворе йода. Из раствора моток кетгута перекладывают стерильным пинцетом в стерильный 10% раствор гипосульфита натрия и выдерживают в нем в течение 24 часов при комнатной температуре, затем перекладывают в пробирки с 20,0-30,0мл стерильной дистиллированной вод, где также выдерживают в течение 24 часов при комнатной температуре.

Подготовленный к работе шелк хранят в спиртовом растворе, поэтому перед посевом шелк (лавсан) помещают на 24 часа в стерильную дистиллированную воду при комнатной температуре. Непосредственно перед посевом кетгут (шелк) извлекают стерильным пинцетом и перекладывают в стерильную чашку Петри, затем его разрезают ножницами на мелкие кусочки длиной 1-2см. Кетгут при этом раздергивают для лучшего прорастания микроорганизмов.

Посев и кетгута, и шелка производится одинаково – в 2 пробирки с тиогликолевой средой, 2 пробирки со средой Сабуро и 2 пробирки со средой Хоттингера, помещая в каждую пробирку по 4-5 кусочков исследуемого материала.

Учет результатов. Материал считается стерильным при отсутствии роста во всех посевах. Материал не стерилен при росте микрофлоры.»