Оглавление

Глава 4. Результаты и обсуждение 2

4.1. Изучение влияния лигноцеллюлозных субстратов на синтез основного фермента-биокатализатора деструкции 4

Культуру гриба Trametes hirsutа 56 выращивали методом глубинного культивирования в колбах Эрленмейера объемом 750 мл с объемом среды 150 мл на круговой качалке при 200 об/мин и температуре 30-32 0С. Среду инокулировали мицелиальной взвесью в количестве 10 % по объему с определением концентрации биомассы в среде после засева в пересчете на абсолютно сухую массу. 4

4.2. Изучение эффективности способов иммобилизации мицелия штамма-деструктора на носителях разных типов 7

4.2.1 Иммобилизация мицелия гриба в колбах на круговой качалке 7

4.2.1.2 Засев носителя поверхностной культурой 12

4.2.2. Иммобилизация мицелия гриба в стационарном состоянии 14

4.3 Изучение динамики оксидазной активности в культуральной жидкости Trametes hirsuta 56, иммобилизованного на различных носителях 17

4.4 Изучение динамики оксидазной активности культуральной жидкости базидиального гриба Trametes hirsuta 56, иммобилизованного с использованием различных способов засева носителя 19

4.5. Выбор модельного соединения для проведения экспериментов по биодеградации 22

4.6. Изучение влияния различных параметров на проведение процесса биодеградации модельного соединения 23

4.6.1. Изучение влияния концентрации модельного соединения на жизнеспособность продуцента 23

4.6.2. Изучение влияния активности лакказы на процесс биодеградации модельного соединения 28

4.6.3. Изучение влияния значения рН на процесс биодеградации модельного соединения 30

4.6.4.Изучение влияния температуры на процесс биодеградации модельного соединения 32

4.7. Изучение процесса биодеградации модельного соединения 35

4.7.1. Изучение процесса биодеградации модельного соединения в колбах 35

4.7.2.Разработка, монтаж и испытания экспериментальной установки 38

Список литературы 42

Глава 4. Результаты и обсуждение

В качестве носителей базидиальных грибов многие авторы предлагают различные материалы, среди которых поликапроамидные волокна, пеностекло, сосновая стружка, дубовые опилки, частицы вспененного полиуретана, Са-альгинатные шарики, растительная губка люфа, карбоксиметилцеллюлозные шарики, губки из нержавеющей стали, криогель ПВС.

Наиболее интересным и экологичным является использование в качестве носителей лигноцеллюлозных отходов, так как они не требуют специальных методов утилизации, в отличие от синтетических полимеров и металла, и могут быть подвергнуты биологическому разложению в естественных условиях. Либо они могут быть использованы как удобрение, поскольку такой отработанный носитель будет представлять собой ферментативно размягченный лигноцеллюлозный субстрат, обогащенный белком и ценными биологически активными веществами грибов. Известно, например, что обогащенный мицелием ксилотрофных базидиомицетов лигноцеллюлозный субстрат является хорошей кормовой добавкой для животных. Кроме того, известно, что лигноцеллюлозные субстраты индуцируют синтез лакказы при внесении их в питательную среду [Lor02], что будет способствовать повышению ферментативной активности в процессе биодеградации.