- •Методические рекомендации для преподавателей к практическому занятию
- •3.2. Конкретные цели и задачи.
- •5. Задания для самостоятельной подготовки к практическому занятию:
- •5.1. Перечень контрольных вопросов для самоконтроля знаний.
- •5.2. Задания для срс во внеучебное время
- •Методические указания по выполнению практической работы с полным регламентом протокола занятия и его оформлением
- •Тестовый контроль исходного уровня
- •Тестовый контроль итогового уровня
- •Аэробных бактерий
- •Физические методы культивирования анаэробов
- •Химический метод культивирования анаэробов
- •Биологический метод культивирования анаэробов (м-д Фортнера)
- •Биохимическое определение газообразных веществ при оценке протеолитической активности
Аэробных бактерий
Ι этап. Накопление или рассев микробного материала.
ΙΙ этап. Получение изолированной колонии.
ΙΙΙ этап. Накопление (получение) чистой культуры.
ΙVэтап. Идентификация микробного вида.
Параметры идентификации микробного вида:
- морфология и тинкториальные свойства
- культуральные свойства
- антигенная характеристика
- биохимическая характеристика
- факторы патогенности
- фаготипирование
- чувствительность к антибиотикам
V. Заключительный этап: на основе учета результатов, изучения морфологии, структуры, тинкториальных, культуральных, биохимических, серологических свойств, чувствительности к антибиотикам и бактериофагии дают полное заключение.
СХЕМА ВЫДЕЛЕНИЯ ЧИСТОЙ КУЛЬТУРЫ АНАЭРОБОВ
Iэтап. Накопление инфекционного материала.
IIэтап. Получение изолированной колонии.
IIIэтап. Накопление чистой культуры.
IVэтап. Идентификация микробного вида.
Vэтап. Заключение.
Приложение 2
Физические методы культивирования анаэробов
Полужидкая среда столбиком под слоем вазелинового масла с резиновой пробкой, посев уколом.
Редукцией среды – удаление кислорода с кипячением и с последующим нанесением слоя вазелинового масла.
Микроанаэростат Аристовского.
Трубки Вейон – Виньяла с запаянными или парафинированными концами.
Эксикатор с горящей свечой.
Метод Перетца с заливкой инфицированной расплавленной среды между спичками на дне чашки под предметное стекло. Чашка герметически закрывается, под пластилином или парафином.
Приложение 3
Химический метод культивирования анаэробов
Эксикатор, на котором помещается один из поглотителей кислорода, например пирогалол. Крышка плотно притерта.
Пробирка Бюхнера с шаровидным расширением и шейкой внизу, куда также помещается поглотитель О2, а над шейкой устанавливается косячок с посевом. Пробка резиновая.
Приложение 4
Биологический метод культивирования анаэробов (м-д Фортнера)
Метод основан на одновременном посеве в чашку со средой, разделенной по диаметру канавкой, испытуемого материала или чистой выделенной культуры анаэробов и какого-либо штамма-аэроба – жадного потребителя кислорода (Bac. prodigiosum, Sarcina lutea– из воздуха).
Чашкaс посевом герметически закрывается с помощью утрамбованной ваты, пластилина или парафина, и становиться для инкубации в термостат.
Вначале в связи с присутствием в чашке О2бурно растут анаэробы.
Приложение 5
Биохимическое определение газообразных веществ при оценке протеолитической активности
Метод Сальковского для определения индола
Бульонную культуру микроорганизмов нагревают с 4 мл 10% серной кислоты, затем с 0,5 – 2 мл, 0,05 раствора азотисто-натриевой соли. Реактивы приливают по стенке пробирок.
Появление красно-фиолетового кольца указывает на наличие индола.
Определение индола по методу Эрлиха
Культуру выращивают на МПА, после чего делают густой посев в пробирки жидкой средой с казеином, нагретой до 30-35С0.
Пробирки инкубируют 2 часа в термостате, а затем добавляют сначала 5 мл раствора №1, а затем 5 мл раствора №2. Через 5 минут, при наличие индола, появляется красное окрашивание среды.
Раствор №1:
парадиметиламинобензальгид – 1г
Этиловый спирт (95о) - 95мл
Соляная кислота (удельный вес 1,19) -20мл
Раствор №2:
насыщенный раствор K2Cr2O2.
Определение сероводорода по методу Хоменко
К расплавленному МПА добавляют уксусно-кислый свинец, охлаждают до 45 0 C, добавляют яичный белок в количестве 2%, тщательно смешивают со средой, разливают по пробиркам и стерилизуют текучим паром (3 дня по 30 мин).
Посевы делают уколом. При наличии способности образовывать H2Sсреда по линии укола чернеет.