- •Раздел I общая микробиология: морфология, физиология и генетика микроорганизмов
- •Тема 1 ветеринарно-бактериологическая лаборатория. Техника микроскопирования. Основные формы бактерий. Определение размеров микроорганизмов
- •Тема 2 бактериологические красители. Приготовление бактериальных препаратов для световой микроскопии. Простые методы окраски бактерий
- •Задание для самостоятельной работы
- •Контрольные вопросы
- •Тема 3 сложные методы окраски бактерий: окраска по методам грама и циля-нильсена
- •Тема 4 окраска бактерий с целью выявления спор, капсул, цитоплазматических включений. Методы обнаружения жгутиков. Метод прямого флуорохромирования бактерий
- •Тема 5 микроскопические грибы
- •Тема 6 стерилизация
- •Тема 7 питательные среды и культивирование микроорганизмов
- •Тема 8 техника посева, методы выделения чистых культур и культуральные свойства микроорганизмов. Определение количества бактерий
- •Контрольные вопросы
- •Тема 9 ферментативные (биохимические) свойства и принципы идентификации микроорганизмов
- •Тема 10 бактериофаги
- •Тема 11 антибиотики. Определение чувствительности микроорганизмов к антибиотикам
- •Методические указания
- •Тема 12 генетика и генетические методы идентификации микроорганизмов
- •Раздел II инфекция и методы прикладной иммунологии
- •Тема 13 экспериментальное заражение лабораторных животных. Определение вирулентности и факторов патогенности микроорганизмов
- •Тема 14 методы определения факторов неспецифической резистентности и оценки иммунного статуса макроорганизма
- •Тема 15 серологические реакции: агглютинации (ра), непрямой гемагглютинации (рига), кумбса (рк). Оборудование для постановки серологических реакций
- •Тема 16 реакции преципитации (рп): кольцепреципитации (ркп), диффузионной преципитации (рдп); иммуноэлектрофорез
- •Тема 17 реакция связывания комплемента (рск)
- •Тема 18 метод флуоресцирующих антител (мфа). Иммуноферментный анализ (ифа)
- •Тема 19 реакция нейтрализации (рн)
- •Тема 20 средства специфической профилактики, терапии и диагностики инфекционных болезней
- •Тема 21 отбор, консервирование, транспортировка и хранение материала для микробиологического исследования. Принципиальная схема микробиологической диагностики инфекционных болезней
- •Раздел III частная микробиология
- •Тема 22
- •Лабораторная диагностика стафилококкозов и стрептококкозов. Биопрепараты
- •Тема 23 лабораторная диагностика рожи свиней и листериоза. Биопрепараты
- •Тема 24 лабораторная диагностика туберкулеза, паратуберкулеза, актиномикоза. Биопрепараты
- •Тема 25 лабораторная диагностика сибирской язвы. Биопрепараты
- •Тема 26 лабораторная диагностика злокачественного отека, анаэробной дизентерии ягнят, брадзота, инфекционной энтеротоксемии, эмфизематозного карбункула. Биопрепараты
- •Тема 27 лабораторная диагностика столбняка, ботулизма. Биопрепараты
- •Тема 28 лабораторная диагностика некробактериоза и копытной гнили. Биопрепараты
- •Тема 29
- •Тема 30 лабораторная диагностика сальмонеллеза. Биопрепараты
- •Тема 31 лабораторная диагностика чумы верблюдов и человека, псевдотуберкулеза. Биопрепараты
- •Тема 32 лабораторная диагностика бруцеллеза, туляремии.
- •Тема 33 лабораторная диагностика пастереллеза, гемофилезного полисерозита и актинобациллезной пневмонии свиней. Биопрепараты
- •Тема 34 лабораторная диагностика сапа, мелиоидоза и псевдомоноза норок. Биопрепараты
- •Тема 35 лабораторная диагностика лептоспироза, кампилобактериоза и дизентерии свиней. Биопрепараты
- •Тема 36 лабораторная диагностика микоплазмозов, риккетсиозов и хламидиозов. Биопрепараты
- •Тема 37 лабораторная диагностика дерматомикозов, микозов, вызываемых плесневыми и дрожжеподобными грибами. Биопрепараты
- •Тема 38 лабораторная диагностика микотоксикозов, вызываемых грибами родов aspergillus, penicillium, fusarium, stachybotrys, dendrodochium
- •Тема 39 санитарно-микробиологическое исследование воды, воздуха и почвы
Тема 4 окраска бактерий с целью выявления спор, капсул, цитоплазматических включений. Методы обнаружения жгутиков. Метод прямого флуорохромирования бактерий
Цель занятия. Ознакомить студентов с методами обнаружения у бактерий спор, капсул, жгутиков, цитоплазматических включений методом прямого флуорохромирования бактерий.
Оборудование и материалы. 24-часовая культура P. multocida на сывороточном МПА, культура В. cereus на МПА на стадии спорообразования; сенной настой, красители, предметные и покровные стекла, световые микроскопы.
МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ
Выявление бактериальных спор. Спора - особая форма существования грамположительных бактерий, формируется эндогенно, характеризуется специфическими структурами (многослойные белковые покровы, наружная и внутренняя мембраны, кортекс) и повышенной устойчивостью к неблагоприятным факторам внешней среды.
Споры с большим трудом воспринимают красители, но прочно удерживают их после окраски (рис. 15)
Рис. 15. Бациллы с различным расположением спор:
1 — вегетативная клетка; 2— субтерминальное; 3 — центральное; 4— терминальное
На этой особенности спор основаны все методы их выявления. Для окрашивания спор применяют красители с протравителями (карболовый фуксин и др.) и подогревание, чтобы увеличить проницаемость оболочки. Для разрыхления оболочки иногда перед окраской препараты обрабатывают хромовой или другими неорганическими кислотами.
Метод Мёллера. Фиксированный мазок обрабатывают 5%-м раствором хромовой кислоты при легком подогревании 10 мин, промывают водой, подсушивают фильтровальной бумагой. Затем на фильтровальную бумагу (1 см2), помещенную на мазок, наносят карболовый фуксин и подогревают до появления паров, дают остыть, повторяют нагревание два-три раза. Общая экспозиция окрашивания карболовым фуксином 7 мин (мазок должен быть влажным). Бумажку с краской сбрасывают бактериальной петлей; не промывая водой, мазок обрабатывают 5%-м раствором серной кислоты 5...7 с, после чего тщательно промывают водой и докрашивают метиленовым синим 3 мин. Препарат промывают водой и подсушивают фильтровальной бумагой.
Микроскопическая картина: споры окрашены в розово-красный цвет, вегетативные клетки — в синий.
Метод Вальдмана..На фиксированный мазок наносят щелочную синьку Леффлера и нагревают до кипения, дают остыть и промывают водой. Докрашивают 1%-м водным раствором нейт-ральрота 30 с, промывают водой, подсушивают.
Микроскопическая картина: споры синие, вегетативные клетки красные.
Метод Пешкова. Фиксированный мазок окрашивают метиленовым синим с подогреванием до закипания, затем промывают водой и докрашивают 1%-м водным раствором нейтральрота 10 с. Препарат промывают водой, подсушивают.
Микроскопическая картина: споры синие, вегетативные клетки красные.
Метод Ауески. Нефиксированный мазок обрабатывают 0,5%-м раствором соляной кислоты 2...3 мин при подогревании, затем промывают водой и фиксируют над пламенем. Окрашивают карболовым фуксином Циля при подогревании 7...8 мин. Краску сливают и препарат обрабатывают 5%-м раствором серной кислоты 5...7 мин, промывают водой и докрашивают метиленовым синим 4...5 мин, после чего вновь промывают водой и подсушивают.
Микроскопическая картина: споры красные, вегетативные клетки синие.
Метод Шеффера-Фултона. Фиксированный мазок покрывают фильтровальной бумагой, наливают 0,5%-й водный раствор малахитовой зелени и выдерживают 5 мин над кипящей водой, после чего промывают водой и окрашивают 2%-м водным раствором сафранина 30 с. Препарат промывают водой, подсушивают.
Микроскопическая картина: споры зеленые, вегетативные клетки красно-коричневые.
Выявление капсул бактерий. Капсула — это слизистое образование, обволакивающее клетку и сохраняющее связь с клеточной стенкой. У большинства прокариот капсула построена из полисахаридов гомо- или гетерополимерной природы. У некоторых видов бактерий капсула содержит полипептид — полимер D-тяута-миновой кислоты. Вещество капсулы обычно воспринимает красители слабее, чем другие клеточные компоненты, поэтому при специальных методах окраски можно дифференцировать капсулу от остальных структур. Многие виды патогенных бактерий образуют капсулу, которая выполняет защитную функцию в основном за счет снижения эффективности фагоцитоза (рис. 16).
Метод Михина. Препарат окрашивают щелочной синькой Леффлера с подогреванием до появления паров и затем выдерживают еще 5...6 мин (мазок должен быть влажным). Препарат промывают водой и подсушивают фильтровальной бумагой. Обычно используют старые растворы красителя, так как у них больше выражена способность к метахроматической окраске.
Микроскопическая картина: капсула розовая, клетки синие.
Метод Ольта. Фиксированный мазок окрашивают при подогревании 2%-м водным раствором сафранина, приготовленным ex tempore. Экспозиция окрашивания 1...2мин. Затем промывают водой, подсушивают. На мазок наносят каплю воды, накрывают покровным стеклом.
Микроскопическая картина: капсула бледно-желтая, клетка красно-коричневая.
М етод Антони. Нефиксированный мазок обрабатывают 1%-м водным раствором кристаллвиолета 2 мин, после чего промывают 20%-м водным раствором сульфата меди и подсушивают фильтровальной бумагой
Микроскопическая картина: капсулы сине-фиолетовые, клетки темно-синие.
Метод Романовского—Гимзы. Препарат, фиксированный в этаноле или жидкости Никифорова, кладут мазком вниз в чашку Петри с подставками (деревянные или стеклянные палочки). Под препарат наливают краску Романовского-Гимзы (15...20 капель краски на 10 мл дистиллированной воды). Выдерживают 15...20 мин. Препарат промывают водой, подсушивают.
Микроскопическая картина: капсула розовая, клетка темно-синяя.
Метод Ребигера. Нефиксированный мазок окрашивают 15...20 с раствором генцианвиолета в формалине (генцианвиолет— 15...20 г, 40%-й раствор формалина — 100 мл, раствор отстаивают, фильтруют). Препарат промывают водой, подсушивают.
Микроскопическая картина: капсула красно-фиолетовая, клетка темно-фиолетовая.
В мазках-отпечатках из тканей больного животного капсулированные клетки легко обнаружить благодаря контрастирующему фону, который образован плазмой и тканевыми элементами. Для имитации подобного фона при выявлении капсул у клеток бактериальных культур разработаны специальные методы окраски.
Метод Гисса. На предметное стекло наносят каплю нормальной сыворотки крови животного любого вида, петлей вносят в нее и суспендируют изучаемую культуру. Суспензию распределяют равномерным тонким слоем по поверхности стекла. Препарат фиксируют на пламени и окрашивают 0,1%-м водным раствором кристаллвиолета 1 мин. Мазок промывают 20%-м водным раствором сульфата меди, подсушивают фильтровальной бумагой.
Микроскопическая картина: капсула бледно-голубая, клетка темно-фиолетовая, фон фиолетовый.
Метод Гинса. На край предметного стекла помещают каплю черной туши, предварительно разведенной дистиллированной водой в соотношении 1 : 3 и центрифугированной при 3000 мин-1 15 мин. В капле туши петлей суспендируют бактериальную массу. Вторым предметным стеклом суспензию равномерно распределяют по поверхности стекла, т. е. мазок готовят так же, как мазки из капли крови. Мазок высушивают, фиксируют на пламени и окрашивают карболовым фуксином Циля, разведенным дистиллированной водой в соотношении 1 :3. Экспозиция окрашивания 4...5 мин. Препарат промывают водой и подсушивают.
Микроскопическая картина: капсула видна как светлый или розовый ободок вокруг темно-красных клеток бактерий, общий фон за счет туши черный.
Выявление цитоплазматических включений. При идентификации прокариот имеет значение обнаружение в их цитоплазме скоплений определенных химических веществ (включений): полифосфатов — волютина (метахроматина), полисахаридов — глюканов, состоящих из Д-глюкозы и некоторых других соединений.
Обнаружение волютина (по методу Нейссера). Готовят четыре раствора. Раствор А: метиленовый синий —0,1 г, 96%-й этанол — 2 мл, ледяная уксусная кислота — 5 мл, вода дистиллированная — 300 мл. Раствор Б: кристаллвиолет — 1 г, 96%-й этанол — 100 мл, вода дистиллированная — 300 мл. Раствор В: раствор Люголя. Раствор Г: хризоидин — 1 г, вода дистиллированная — 300 мл.
На фиксированный препарат наливают смесь растворов А и Б в соотношении 2 : 1 на 1 мин, краску сливают. Мазок, не промывая, обрабатывают раствором В 1 мин и промывают водой. Затем на препарат наносят раствор Г на 2...3 мин, промывают водой, высушивают.
Микроскопическая картина: клетки светло-желтые, зерна волютина темно-синие.
Обнаружение поли-β-оксимасляной кислоты. Фиксированный на пламени мазок окрашивают 0,3%-м раствором Судана черного «В» в этиленгликоле 5... 15 мин. Краску сливают и препарат, не промывая, подсушивают на воздухе, затем ополаскивают в ксилоле, высушивают и погружают в 0,5%-й водный раствор сафранина на 5...10 с, промывают водой, подсушивают.
Микроскопическая картина: включения видны на розовом фоне в виде черно-синих зерен.
Обнаружение полисахаридов. На фиксированный препарат на- • носят 1%-й спиртовой раствор алцианового синего на 1 мин (краситель перед использованием разводят водой в соотношении 1 :8). Препарат промывают водой, подсушивают, затем обрабатывают карболовым фуксином Циля и сразу же промывают водой, подсушивают.
Микроскопическая картина: цитоплазма красного цвета, по-лисахаридные включения — голубого.
Методы обнаружения жгутиков у бактерий. Жгутики — структуры нитевидной формы, белковой природы, определяют способность клетки к движению в жидкой среде (рис. 17). Количество и характер расположения жгутиков у бактерий различны. У монотрихов один-два жгутика расположены на одном из полюсов клетки (Pseudomonas); у лофотрихов пучок жгутиков расположен полярно или субполярно (Spirillum); у амфитрихов жгутики —на обоих полюсах клетки; у перитрихов — по всей поверхности клетки (Enterobacteriaceae).
Монотрихи двигаются прямолинейно и поступательно, при необходимости могут изменить направление движения на 180° (клетка переворачивается); движение лофотрихов прямолинейное вперед или назад; перитрихи передвигаются хаотично (рис. 18).
Жгутики легко повредить, поэтому препараты готовят с большой осторожностью. Стекла используют чисто вымытые, без царапин. Исследуемая культура должна быть не старше 12...18 ч. Бактериальную массу осторожно вносят в пробирку с несколькими миллилитрами физиологического раствора. Суспензию выдерживают 15...20 мин в термостате, затем петлей каплю жидкости из пробирки осторожно переносят на предметное стекло, высушивают, фиксируют на пламени и окрашивают одним из специальных методов.
Метод серебрения по Морозову. Готовят четыре раствора. Раствор А: вода дистиллированная — 100 мл, 40%-й раствор формалина — 2 мл, ледяная уксусная кислота — 1 мл. Раствор Б: танин — 5 г, жидкая карболовая кислота — 1 мл, вода дистиллированная — 100 мл. Раствор В: нитрат серебра —5 г, дистиллиро ванная вода — 100 мл. К 80 мл этого раствора по каплям добавляют аммиак до растворения осадка и образования легкой опалес-ценции. Для окраски раствор серебра разводят дистиллированной водой в соотношении 1 : 10.
На препарат наносят раствор А на 1 мин, затем раствор сливают и препарат промывают водой, обрабатывают раствором Б и подогревают 1 мин до отхождения паров, промывают водой, после чего наносят раствор В и подогревают 1...2мин до появления темно-коричневой окраски мазка, промывают водой, подсушивают.
Микроскопическая картина: тела бактерий угольно-черного цвета, жгутики в виде тончайших волнообразно извитых нитей коричневого или янтарно-черного цвета на прозрачном или желтоватом однородном фоне.
В повседневной бактериологической работе чаще используют косвенные методы обнаружения жгутиков — выявляют подвижность клеток исследуемой бактериальной культуры.
Препарат «раздавленная капля». На чистое обезжиренное предметное стекло пастеровской пипеткой наносят одну-две капли 18...20-часовой бульонной культуры, накрывают чистым покровным стеклом. Количество жидкости должно быть достаточным для заполнения всего пространства под покровным стеклом. Микроскопируют с объективом х 40 или х 90. Неокрашенные бактерии лучше видны при легком затемнении поля зрения, поэтому конденсор целесообразно опустить на 5... 10 мм ниже плоскости предметного столика. Клетки видны в виде светлых или серых «теней», при объективе х 90 четко видны только клетки, передвигающиеся в горизонтальной плоскости; бактерии, двигающиеся вертикально, быстро уходят из зоны четкого изображения.
Препарат «висячая капля». Каплю исследуемой культуры бактериологической петлей наносят на чистое покровное стекло. Берут специальное предметное стекло с углублением (лункой) в центре, края лунки смазывают вазелином, стекло переворачивают лункой вниз и прижимают к покровному таким образом, чтобы капля с бактериями была в центре лунки. Затем предметное стекло резко переворачивают, и капля зависает под покровным стеклом в лунке. При микроскопии бактериальные клетки легче обнаружить по краю капли, где слой жидкости тоньше.
Активное движение бактерий необходимо дифференцировать от броуновского — колебаний клетки под ударами молекул воды и пассивного движения всех клеток с током жидкости в одну сторону при наличии уклона.
Помимо перечисленных методов для выявления жгутиков нередко прибегают к посеву исследуемой культуры уколом в полужидкий агар (см. тему 8). Подвижные бактерии растут по всей питательной среде в пробирке, неподвижные — только по уколу.
Метод прямого флуорохромирования бактерий. Для обнаружения некоторых видов бактерий и их отдельных структур препараты обрабатывают флуорохромами с последующим изучением в люминесцентном микроскопе. Наиболее широко этот метод применяют для выявления возбудителя туберкулеза.
Готовят следующие растворы: раствор А (фиксатор Никифорова): 96%-й этанол, серный эфир —в соотношении 1:1; раствор Б: аурамин 00 —0,1 г, дистиллированная вода—100мл, 6%-й раствор фенола — 0,5 мл; раствор В: 96%-й этанол — 90 мл, соляная кислота — 4 мл, хлорид натрия — 4 г, объем доводят дистиллированной водой до 100 мл; раствор Г («тушитель»): кислый фуксин—1 г, дистиллированная вода —390мл, концентрированная уксусная кислота — 10 мл.
Мазки из исследуемого материала готовят, как для обычной микроскопии, фиксируют раствором А; окрашивают раствором Б 15 мин, промывают водой, затем обрабатывают раствором В 5 мин, промывают водой, наносят раствор Г на 2 мин, после чего препарат промывают водой и подсушивают.
Микроскопическая картина: при объективе х40 туберкулезные бактерии видны в виде золотистых черточек; под объективом х 90 (иммерсионным) на темном фоне обнаруживают светящиеся золотисто-зеленые палочки возбудителя.
Демонстративен способ выявления спор бактерий при окрашивании бриллиант-сульфофлавином, трипафлавином.
ЗАДАНИЯ ДЛЯ САМОСТОЯТЕЛЬНОЙ РАБОТЫ
Приготовить, окрасить и промикроскопировать препарат бактерий со спорами (В. cereus).
Окрасить одним из способов капсулы P. multocida и промикроскопировать.
Приготовить препарат «раздавленная капля» из сенного настоя, обнаружить методом микроскопии подвижные клетки бактерий.
Контрольные вопросы
На каких тинкториальных особенностях спор и капсул основаны методы их окраски?
Какие прямые и косвенные методы применяют для обнаружения бактериальных жгутиков?
Какое значение имеет выявление цитоплазматических включений для идентификации прокариот?