- •Методические указания по физиологии растений Клетка
- •1 Явление плазмолиза и деплазмолиза
- •2 Определение сосущей силы растительных тканей методом струек (по Шардакову)
- •3 Определение осмотического потенциала клеточного сока методом Уршпунга
- •4 Зависимость набухания семян от характера запасных веществ.
- •5 Определение интенсивности транспирации и относительной транспирации весовым методом.
- •6 Значение пробки для защиты растений от потери воды
- •7 Флюоресценция и химические свойства пигментов листа.
- •Флюоресценция
- •Химические свойства пигментов
- •8 Этиолированные растения. Обнаружение фотосинтеза методом крахмальной пробы (пробы Сакса). Путь с3
- •Путь с4 Хетча и Слэка
- •Фотосинтез по типу толстянковых (сам-метаболизм; «Crassulaceae acid metabolism»)
- •9 Методы определения площади листьев
- •10 Потеря сухого вещества при прорастании семян Гликолиз и брожение
- •11 Определение интенсивности дыхания по количеству выделенного со2 (методом Бойсен-Йенсена)
- •12 Определение дыхательного коэффициента прорастающих семян Электрон-транспортная цепь на мембранах митохондрий, переводящая энергию наd-н, наd(p)-н и янтарной кислоты (сукцината) в энергию атф
- •13 Озоление растительных материалов.
- •14 Влияние солей тяжелых металлов на всхожесть и рост проростков
- •15 Антагонизм ионов
- •16 Значение листа в процессе корнеобразования
- •17 Определение зоны геотропического изгиба у корня и стебля
- •18 Задерживающее и стимулирующее действие гетероауксина на рост корней в зависимости от его концентрации
- •19 Задерживающее влияние света на рост растений
- •20 Развитие проростков пшеницы при выращивании в синем и красном спектре 2 Фоторецепция
- •Действие красного света
- •Фотопериодизм
- •Действие синего света
- •21 Определение жизнеспособности семян
- •22 Влияние высокой температуры на проницаемость цитоплазмы
- •23 Защитное действие сахара на цитоплазму при замораживании
- •24 Определение активности амилаз в прорастающих семенах (по Вольгемуту)
- •25 Обнаружение нитратов в продукции растениеводства Азот
11 Определение интенсивности дыхания по количеству выделенного со2 (методом Бойсен-Йенсена)
В аэробных условиях пируват, образовавшийся в результате гликолиза, диффундирует из цитоплазмы в матрикс митохондрий и полностью окисляется до СО2 с образованием большого количества АТР.
Энергетика цикла Кребса. На каждую молекулу NADH или NADPH, окисленную в электрон-транспортной цепи митохондрий, образуется 3 молекулы АТР. При окислении одной молекулы FADH2 синтезируется 2 молекулы АТР.
При окислении глюкозы в гликолизе образуется две молекулы пирувата.
2 молекулы АТР и 2 молекулы NADH, образованы в гликолизе.
Глиоксилатный цикл активно функционирует у некоторых бактерий и плесневых грибов, в семенах масличных растений и других объектах, где запасные липиды превращаются в сахара. Глиоксилатпый цикл представляет собой модификацию цикла Кребса. Основные ферменты глиоксилатного цикла локализованы в специальных органеллах — глиоксисомах.
Пентозофосфатный путь окисления глюкозы, или апотомическое окисление глюкозы. Все реакции этого пути протекают в растворимой части цитоплазмы клетки, а также в пропластидах и хлоропластах. Пентозофосфатный путь окисления глюкозы особенно активен в клетках, в которых идет интенсивный синтез липидов, нуклеиновых кислот, элементов клеточной стенки, фенольных соединений. В ходе этого процесса синтезируется NADPH.
Цель занятия: Освоить методику определения интенсивности дыхания по количеству выделенного диоксида углерода.
Материалы и оборудование: проросшие и непроросшие семена, листья, стебли и др. растительный материал; 0,025 н раствор Ва(ОН)2; бюретки; 0,025 н НС1; фенолфталеин; весы; конические колбы на 250-300 мл с резиновыми пробками; марля; дистиллированная вода.
Вводные пояснения
Для определения интенсивности дыхания по количеству выделенного диоксида углерода в замкнутый сосуд помещают навеску исследуемого материала, и определенное количество раствора щелочи. Выделяемый в процессе дыхания диоксид углерода реагирует со щелочью, в результате чего концентрация раствора уменьшается: Ва(ОН)2 + СО2 = ВаСО3 + Н2О. Через определенное время оставшуюся в сосуде щелочь титруют: Ва(ОН)2 + 2НС1 = ВаС12 + 2Н2О.
Сравнивают полученную величину с результатом титрования такого же количества исходного раствора щелочи. Последнее необходимо для определения исходной концентрации щелочи и одновременно для учета того небольшого количества СО2, которое содержалось в сосуде до опыта, а так же поглощаемого щелочью во время открывания сосуда. Разность между результатами титрования контрольного и опытного сосудов прямо пропорциональна количеству выделенного при дыхании углекислого газа.
Продолжительность экспозиции зависит от размера навески и от интенсивности дыхания исследуемого объекта. При очень короткой экспозиции разность между результатами титрования контрольной и опытной колб будет недостоверной. Наоборот, если в колбе останется слишком мало барита, то может произойти неполное поглощение СО2. Желательно поэтому подобрать такую экспозицию чтобы на связывание СО2 было израсходовано 20-50 % щелочи (если, например, на титрование барита в контрольной колбе пошло 10 мл НС1, то на титрование раствора в опытной колбе должно пойти не более 8 и не менее 5 мл).
Ход работы
Поместить навеску исследуемого материала в марлевый мешочек и прикрепить его к пробке при помощи крючка, вставленного в пробку.
Провести пробную сборку установки, проверив, свободно ли проходит мешочек с материалом через горло колбы и не опускается ли он слишком низко. Внести в колбу 2-3 капли фенолфталеина и налить 10 мл раствора Ва(ОН)2. Быстро опустить в колбу материал, слегка смочить пробку водой (для герметичности) и плотно (вращательным движением) закрыть колбу пробкой.
Записать время начала экспозиции.
Задачей работы будет сравнение интенсивности дыхания разных объектов. Для этого нужно взять две колбы и поместить в них листья и стебли одного и того же растения или проросшие и не проросшие семена и т.п. В контрольную (пустую) колбу также налить 10 мл барита и 2-3 капли фенолфталеина и плотно закрыть пробкой.
Колбы с объектами, содержащими хлорофилл, необходимо на все время опыта поместить в темноту для исключения процесса фотосинтеза.
Время от времени колбы следует осторожно покачивать, чтобы разрушить пленку ВаСО3, препятствующую полноте поглощения СО2, не допуская попадания ни одной капли раствора на мешочек с материалом.
Через 1-2 часа вынуть материал, быстро закрыть колбу пробкой и отметить время окончания опыта.
Оттитровать оставшуюся щелочь, приливая через отверстие в пробки 0,025 н НС1 до исчезновения розового оттенка. Чтобы избежать уменьшение концентрации раствора барита из-за поглощения СО2 воздуха, следует провести титрование, закрыв колбу резиновой пробкой с двумя отверстиями, одно из которых закрыто трубкой с натронной известью, другое – плотно вставленным концом бюретки.
Контрольную колбу можно титровать через 20 мин после того, как налит раствор барита (за это время колбу необходимо периодически взбалтывать).
Задание 1. Результаты записать в таблицу
Растение |
Навеска, г |
Объем Ва(ОН)2, мл |
Время |
Расход НС1, мл |
Поправка к титру НС1 |
Интенсивность, дыхания, мг/г/ч |
|||
начало |
конец |
экспозиция, ч |
контроль |
опыт |
|||||
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
Задание 2. Вычислить интенсивность дыхания (ИД) по формуле:
ИД = (а – б)•К•0,55/рt, (5)
где а – результат титрования содержимого контрольной колбы, мл;
б – результат титрования опытной колбы, мл;
К – поправка к титру НС1;
0,55 – количество (мг) СО2 эквивалентное 1 мл 0,025 н НС1;
р – навеска, г;
t – экспозиция, ч.
Задание 3. Сделать вывод, сопоставив интенсивность дыхания различных растительных объектов.