- •Методические указания по физиологии растений Клетка
- •1 Явление плазмолиза и деплазмолиза
- •2 Определение сосущей силы растительных тканей методом струек (по Шардакову)
- •3 Определение осмотического потенциала клеточного сока методом Уршпунга
- •4 Зависимость набухания семян от характера запасных веществ.
- •5 Определение интенсивности транспирации и относительной транспирации весовым методом.
- •6 Значение пробки для защиты растений от потери воды
- •7 Флюоресценция и химические свойства пигментов листа.
- •Флюоресценция
- •Химические свойства пигментов
- •8 Этиолированные растения. Обнаружение фотосинтеза методом крахмальной пробы (пробы Сакса). Путь с3
- •Путь с4 Хетча и Слэка
- •Фотосинтез по типу толстянковых (сам-метаболизм; «Crassulaceae acid metabolism»)
- •9 Методы определения площади листьев
- •10 Потеря сухого вещества при прорастании семян Гликолиз и брожение
- •11 Определение интенсивности дыхания по количеству выделенного со2 (методом Бойсен-Йенсена)
- •12 Определение дыхательного коэффициента прорастающих семян Электрон-транспортная цепь на мембранах митохондрий, переводящая энергию наd-н, наd(p)-н и янтарной кислоты (сукцината) в энергию атф
- •13 Озоление растительных материалов.
- •14 Влияние солей тяжелых металлов на всхожесть и рост проростков
- •15 Антагонизм ионов
- •16 Значение листа в процессе корнеобразования
- •17 Определение зоны геотропического изгиба у корня и стебля
- •18 Задерживающее и стимулирующее действие гетероауксина на рост корней в зависимости от его концентрации
- •19 Задерживающее влияние света на рост растений
- •20 Развитие проростков пшеницы при выращивании в синем и красном спектре 2 Фоторецепция
- •Действие красного света
- •Фотопериодизм
- •Действие синего света
- •21 Определение жизнеспособности семян
- •22 Влияние высокой температуры на проницаемость цитоплазмы
- •23 Защитное действие сахара на цитоплазму при замораживании
- •24 Определение активности амилаз в прорастающих семенах (по Вольгемуту)
- •25 Обнаружение нитратов в продукции растениеводства Азот
18 Задерживающее и стимулирующее действие гетероауксина на рост корней в зависимости от его концентрации
на I—II этапах происходит дифференциация вегетативных органов, на III—IV — дифференциация зачаточного соцветия, на V— VIII — формирование цветков, на IX — оплодотворение и образование зиготы, на X—XII — рост и формирование семян.
Материалы и оборудование: зерновки пшеницы, 0,01%-й раствор гетероауксина, 5 чашек Петри, штатив, 5 мерных пробирок, фильтровальная бумага, линейка, карандаш по стеклу.
Ход работы
Пронумеровать пять мерных пробирок.
В пробирку 1 налить 9 мл Н2О (дистил.). В пробирку 2 - 9 мл 0,01 М раствора гетероауксина. В пробирку 3 - 1 мл 0,01 М раствора гетероауксина и 9 мл Н2О. В пробирку 4 - 1 мл из пробирки № 3 и 9 мл Н2О. В пробирку 5 - 1 мл из пробирки № 4 и 9 мл Н2О. Из пробирки 5 вылить 1 мл.
Подписать пять чашек Петри согласно схеме опыта (см. табл.).
4. Из фильтровальной бумаги вырезать пять кружков диаметром, равным диаметру чашки, и пять кружков, диаметром равным диаметру крышки.
Поместить кружки фильтровальной бумаги соответственно.
Фильтровальную бумагу, находящуюся на крышке чашки Петри, смочить 1 мл дистил. воды.
На фильтровальную бумагу в чашке Петри налить по 9 мл растворов согласно схеме
В каждую чашку Петри положить по 10 сухих семян пшеницы.
Ежедневно наблюдать за ходом прорастания, на 5-7-й день измерить длину корешков и отметить особенность прорастания зерна во всех вариантах опыта. Данные записать в таблицу.
Сделать выводы.
Таблица
Вариант опыта |
Длина корешков, мм |
Особенности прорастания |
||
всхожесть, % |
кол-во корней, шт. |
другие |
||
Контроль Н2О (дистил.) |
|
|
|
|
0,01%-й раствор гетероауксина |
|
|
|
|
0,001-й раствор гетероауксина |
|
|
|
|
0,0001%-й раствор гетероауксина |
|
|
|
|
0,00001%-й раствор гетероауксина |
|
|
|
|
Выводы
19 Задерживающее влияние света на рост растений
Материалы и оборудование: проростки гороха, подсолнечника, клубни картофеля, линейка.
Ход работы
Сосуды с проростками гороха или подсолнечника, выращенными в темноте, и клубни картофеля с росточками 3-4 см выставить на свет.
Измерить длину проростков, данные занести в таблицу.
Через 9-12 часов провести повторное измерение и поставить в темный шкаф.
Аналогичные измерения проводить в течение недели.
На основании полученных данных построить кривую.
Сделать выводы.
Таблица - Длина проростков, мм
Объект исследования |
дата |
||||||
|
|
|
|
|
|
|
|
проростки гороха |
|
|
|
|
|
|
|
проростки подсолнечника |
|
|
|
|
|
|
|
клубни картофеля |
|
|
|
|
|
|
|
Выводы