Список литературы:

1. Багманов М.А. Диагностика, лечение и профилактика заболеваний животных. // Ульяновск.  1999. стр. 25

2. Багманов М.А., Терентьева Н.Ю. Методическое пособие. К лабораторно-практическим занатиям по специализации «Акушерство и гинекология с.-х. животных». // Ульяновск. 2002. стр. 36

3. Ветеринарная энциклопедия. Том 6. // Москва.  Советская энциклопедия, 1976.

4. Воскобойник В.Ф., Козлов Г.Г. Эффективный метод лечения коров с послеродовым эндометритом. // Ветеринария № 5 1991. стр. 44-46

5. Григорьева Т.Е. Лечение и профилактика эндометритов у коров. //     Москва. Росагропромиздат, 1988.

6. Гончаров В.П.  Профилактика и лечение гинекологических заболеваний коров. // Москва. Росагропромиздат, 1991.

7. Гончаров В.П. Справочник по акушерству и гинекологии животных. //

     Москва. Россельхозиздат. 1985.

8. Захаров П.Г. Профилактика и лечение гинекологических заболеваний                                                      коров. Практические рекомендации. // Санкт-Петербург. 1997.

     стр.45-48

9. Зверьева Г.В. Гинекологические болезни коров. // Киев. Урожай. 1976.

10.  Кирюткин Г.В. Справочник ветеринарных препаратов. //  Киров. 1977.

11.  Конопаткин А.А. Эпизоотология и инфекционные болезни. // Москва. Колос. 1993.

12. Малакин Л.Г. Справочник. Ветеринарные  препараты. // Москва. Росагропромиздат, 1988.

13.  Машковский М.Д. Лекарственные средства. // Москва. Новая волна, 1996.

14.  Мозгов И.Е.  Антибиотики в ветеринарии. // Москва. Колос. 1971.

15.  Незаразные болезни сельскохозяйственных животных, их лечение профилактика. //  Омский СХИ. Омск. 1983.

16.  Онегов А.П. Справочник по гигиене сельскохозяйственных животных.  // Москва. Россельхозиздат. 1977.

17.  Панков Б.Г., Жаров А.В., Соколова Н.А.  «Эндометриты у коров».                                              // Практик. № 8 2001. стр. 44

18.  Полянцев В.И. Ветеринарное акушерство и биотехника репродукции животных. // Ростов-на-Дону. Феникс, 2001.

19. Стравский Я.С. «Лазерная диагностика хронического и скрытого эндометрита у коров». // Ветеринария. № 3 2000. стр. 37

20. Студенцов А.П. Ветеринарное акушерство и гинекология. // Москва.   Колос. 1970.

21. Терешенков А.С. Профилактика и лечение акушерско-гииекологических заболеваний коров. // Минск. Ураджай. 1990.

) Реферат:

Использование: ветеринария, способы диагностики дисфункции яичников у коров. Сущность изобретения: способ предусматривает внутрикожное введение в области шеи антигена из тканей желтого тела яичников в дозе 0,2 мл. Диагностический препарат получают по общепринятой методике органных антигенов. Проверку реакции на антиген приводят через 12, 24 и 48 ч после введения. При наличии ограниченной папулы диаметром более 10 мм делают вывод о дисфункции яичников. Использование способа повышает точность диагностики персистентного желтого тела у коров, выявленность патологии, связанной с нарушением половой цикличности, составляет свыше 90% 1 табл.

Изобретение относится к ветеринарии, а именно к способам диагностики дисфункции яичников у коров.

Известен способ диагностики персистентного желтого тела у коров, основанный на результатах двукратной (с 3-4 недельным интервалом) ректальной пальпации яичников. Наличие желтого тела в том же яичнике и прежних размеров дает основание поставить диагноз на персистентное желтое тело (В.П. Гончаров и В.А.Карпов. Профилактика и лечение гинекологических заболеваний коров. М. Росагропромиздат, 1991, с. 151).

Недостатком этого способа является продолжительность, после первого исследования необходимо записать местоположение, величину, форму, консистенцию желтого тела и вести повседневное наблюдение за животным. Способ трудоемок, необходимо проводить ректальное исследование.

Известен способ диагностики персистентного желтого тела, включающий применение подкожных и внутривымянных введений питуитрина [1] При наличии в крови гормона желтого тела матка слабо или совершенно не реагирует на массаж. После подкожной инъекции 4 мл питуитрина матка на пальпацию через прямую кишку отвечает сокращениями. После инъекции в сосок вымени 2 мл питуитрина молоко выделяется через катетер струей, а при наличии желтого тела каплями.

Недостатком этого способа является необходимость проведения ректального исследования, что обуславливает трудоемкость, негигиеничность метода. Этот способ требует высокой квалификации специалиста.

Наиболее близким по технической сущности к предлагаемому способу является метод, используемый в медицинской гинекологической практике для диагностики дисфункции желтого тела, при котором применяется кожно-аллергический тест [2] Диагноз основан на введении 2,5%-ного масляного раствора прогестерона. Покраснение и увеличение папулы в период предполагаемого максимального функционального состояния желтого тела является положительной реакцией.

Недостатком этого способа является недостаточная точность данного диагностического теста и выявляемость патологического состояния, связанного с задержкой функционирования желтого тела.

Цель изобретения повышение точности диагностики. Животным вводят внутрикожно в область шеи 0,2 мл антигена из тканей желтого тела яичников и проводят проверку реакции через 12,24 и 48 ч после введения. При наличии ограниченной папулы диаметром более 10 мм делают вывод о дисфункции яичников, ставят диагноз персистентное желтое тело.

Для внутрикожного введения испытаны дозы антигена 0,1; 0,15; 0,20; 0,25; 0,30 мл. Положительная аллергическая реакция антигена при введении 0,2 мл; 0,25 мл; 0,30 мл; оптимальной дозой является 0,2 мл.

Наблюдение за проявлением реакции на месте внутрикожного введения аллергена показало, что изменения в виде образования папулы диаметром 10-15 мм происходит в срок от 24 до 48 ч. После указанного времени происходит рассасывание новообразования.

Способ диагностики апробирован на 103 коровах черно-пестрой породы (возраст 3-7 лет).

П р и м е р. Животные были разбиты на три группы по принципу аналогов. В первой группе 45 коровам с задержкой течки и половой охоты свыше 30 дней после отела ввели внутрикожно в область шеи 0,2 мл тканевого антигена. Во второй группе 58 коровам с предварительно установленным клиническим методом диагнозом персистентное желтое тело также ввели внутрикожно 0,2 мл тканевого препарата. В третьей группе 36 коровам с предварительно установленным диагнозом на персистентное желтое тело внутрикожно ввели 0,2 мл 2,5%-ного масляного раствора прогестерона. Третья группа была контрольной.

Проверку реакции на препараты производили через 12, 24 и 48 ч после введения. Положительной считали реакцию при наличии ограниченной папулы на месте инъекции диаметром более 10 мм, отрицательной реакцией отсутствие изменений после введения диагностического препарата.

Результаты диагностических исследований приведены в таблице.

В первой группе положительная реакция на введение антигена из тканей желтого тела яичника была отмечена у 16 коров (35,5%). При клиническом исследовании (ректальной пальпацией) яичников наличие персистентного желтого тела подтвердилось. У 29 коров (64,5%) персистентное желтое тело отсутствовало и нарушение половой цикличности было установлено другими причинами.

Во второй группе с заранее установленным наличием желтого тела на введение антигена реагировало положительно 55 (94,8%) из 58 коров. Отрицательная реакция была у 3 (5,2%) животных. В третьей группе на внутрикожное введение прогестерона реагировали положительно 10 (27,7%) коров. У 26 (72,3%) животных отмечена отрицательная реакция.

Таким образом, применение предложенного способа позволяет повысить точность диагностики персистентного желтого тела у коров. Выявляемость патологии, обусловленной функционированием желтого тела и нарушением функции яичников, с использованием антигена из тканей желтого тела яичников составляет 94,8% Это на 67,1% выше, чем при использовании кожно-аллергического теста, включающего введение 2,5% масляного раствора прогестерона.

Формула изобретения

СПОСОБ ДИАГНОСТИКИ ПЕРСИСТЕНТНОГО ЖЕЛТОГО ТЕЛА У КОРОВ, включающий введение диагностикума и учет реакции, отличающийся тем, что в качестве диагностикума животным вводят внутрикожно в области шеи антиген из тканей желтого тела яичников в дозе 0,2 мл, а учет реакции проводят через 12, 24 и 48 ч после введения диагностикума, причем при появлении на месте введения папулы диаметром более 10 мм диагностируют персистентное желтое тело.

СПОСОБ ДИАГНОСТИКИ ПЕРСИСТЕНТНОГО ЖЕЛТОГО ТЕЛА У КОРОВ

(57)

Персистентным называется желтое тело, задержавшееся в яичнике небеременного животного свыше 25-30 дней. Оно может образовываться из желтого тела беременности, полового цикла или возникать путем лютеинязации фолликула без овуляции, т.е. как следствие ановуляторного полового цикла. В настоящее время не существует единого мнения о роли желтого тела в этиологии бесплодия и в частоте его распространения. Некоторые авторы считают, что персистентное желтое тело имеет место у 30-60%, другие oTWi?-i;a.oT его наличие даже у 80-90% бесплодных коров. В то же время имеются сведения о наличии пер-систентных желтых тел только у 5,2-7,4% бесплодных коров. Такое различие мнений, очевидно, связано с диагностическими неточностями. В течение года мы диагностировали персистентные желтые тела в яичниках 18% бесплодных коров, однако во второй половине зимнего стойлового содержания эта патология встречается чаще (К. Д. Валюшкин). Этиология. Причины задержания желтых тел в яичниках животных могут быть самыми разнообразными. Чаще всего персистентное желтое тело образуется в результате несбалансированного кормления, обусловливающего истощение, гиповитаминозы, минеральную недостаточность или ожирение. Персистенция желтых тел может быть обусловлена высококонцент-ратным типом кормления жвачных животных, односторонним силосным кормлением, отсутствием моциона, плохими условиями содержания. Зарегистрировано массовое задержание желтых тел у коров-кормилиц при подсосном методе выращивания телят. Частой причиной персистенции желтых тел являются патологические изменения в матке (воспаления, дистрофические процессы), а также другие заболевания животных, возникшие при нарушении обмена веществ, интоксикации и расстройства координирующего влияния центральной нервной системы на функции гипоталамуса, гипофиза и половых органов. Имеются сообщения о предрасположенности к персистенции желтых тел высокопродуктивных коров. В действительности причиной задержания желтых тел у таких коров является не высокая молочная продуктивность, а несбалансированность рационов под более высокий уровень продуктивности. Патогенез. Персистентное желтое тело выделяет в кровь гормон прогестерон, который задерживает развитие и созревание новых фолликулов, так как снижается секреция фолликулостимулирующего гормона передней доли гипофиза. Сократительная функция матки угнетается, чувст вительность к окситоцину резко падает, что приводит к прекращению секреции лютеолитического фактора. Так наступает персистенция желтых тел при неполноцен В яичниках задТрживается рост и созревание фолликулов. Живот-; ые не проявляют половой цикличности в течение 3 меси более после родов. Считают, что причиной персистениии желтых тел могут быть эндометриты, так как приэтом в гипоталамус постоянно поступают импульсы при раздражении матки микробами и токсинами Клинические признаки. Характерным признаком персистенции желтого тела является длительное отсутствие течки и охоты у животных после родов илм предыдущего полового цикла. При ректальн.олт исследовании находят низкую сократительную фуы-;и:-:;о матки. Иногда матка становится атоничной, дряблой, не реагирует на массаж и свисает в брюшную no;;oi"iL. У .молодых коров не всегда можно обнаружит!, изменения функции матки. В одном из яичников (чаще в правом) обнаруживают жалтое тело, выступающее над поверхностью в виде гржювидного возвышения с небольшим углублением в центре. Иногда в этом же или другом яичнике нахо-ЛИ несколько Фолликулов различной вели- Лечение. Нередко после устранения основной причины персистенции желтого тела эта железа перестает функционировать сама по себе и половая цикличность у животных восстанавливается. При наличии сопутствующих заболеваний матки нужно принимать меры по их устранению. Все терапевтические приемы при персистентных желтых телах можно подразделить на симптоматические и оперативные. Для ускорения рассасывания персиетентного желтого тела (рис. 145) прежде всего следует нормализовать условия жизни животного, применять массаж яичников через стенку прямой кишки с интервалом 2-3 дня на протяжении 2-3 недель; корове каждые 2-3 дня инъецировать подкожно по 2000-2500 ЕД фол-'"сулина. Рекомендуется использовать 0,5%-ный ра-< твор прозерина в дозе 2,0-2,5 мл путем подкожных инъекции, а через 1-5 дней 2-3 мл 1%-ного масляного !);" ' ""Ра синестрола. Можно применять СЖК или КЖК (6 МЕ/кг массы животного), а также их сочетание с нейро-тропными препаратами. Достаточный терапевтический эффект получают от применения 2 мл простагландинов, которые обеспечивают рассасывание желтого тела и рост фолликулов. Основным оперативным приемом при удалении желтого тела является энуклеация его через прямую кишку. Для выполнения этой операции руку вводят в прямую кишку и освобождают ее от каловых масс. В краниальной части прямой кишки захватывают яичник так, чтобы яичниковая связка оказалась между указательным и средним пальцами. Большим пальцем создают необходимое давление на ткани между паренхимой яичника и основанием желтого тела и отторгают желтое тело.

 ГОСУДАРСТВЕННОЙ А1ТОПГОМЫШЛЕНННЙ КОЖГГЕГ СССР

ЛЬВОВСКИЛ ОРДЕНА ТРУДОВОГО КРАСНОГ'О ЗНЛАЕНИ 3003ЕТЕГОНАРНЫЙ ИНСТИТУТ

На правах рукописи

ДАРКВА КВАСИ БОВИ

УДК 619:618.11-0С8.64:636,2

СРАВНИТЕЛЬНАЯ ОЦЕНКА НЕКОТОРЫХ МЕТОДОВ- ЛЕЧЕШЯ КОРОВ С ГИШ5УШЦИЕЙ И ПЕРСИСТЕЖННМ НЕЛТЫЙ ТЕЛОМ ШЧШНОВ

/16.00.(77 - акушерство и искусственное осеманение/

Автор цкссертации на степени кандидата

е ф е р а т соискание ученой ветеринарных наук

Льпои - 1969

Работа выполнена на кафедре акушерства и искусственного осеменения сельскохозяйственных животных Украинской ордена Трудового Красного Знамени сельскохозяйственной академии.

Научный руководитель

Официальные оппоненты:

доктор ветеринарных наук, профессор НЛГОРНЫй И.С.

доктор биологических наук, старший научный сотрудник ЧУХРИЯ Б.Н.

Бедущее предприятие

доктор ветеринарных наук, доцент ХОМИН С.П.

Каменец-Лодольски н сельскохозяйственный институт

Защита состоится 1939 г. в

в аудитории № I на заседании специализированного совета Д 120.17.01 по защите диссертации на соискание ученой степени доктора наук при Львовском ордена Трудового Красного Знамени зооветеринарном институте - (290010, г.Львов, ул. Пекарская, 50).

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке Львовского ордена Трудового Красного Знамени зооветеринарного института.

Автореферат разослан " ^ 1989 г.

Ученый секретарь специализированного совета, кандидат биологических наук,

доцент П.И.ГОЛОВАЧ

шстхш-тш ш

!': ? ОБЩЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ

¡ссертаЫздуалъность .теш. Дня развития любого государства необходимо всестороннее развитие всех отраслей народного хозяйства, и в трм числе сельского хозяйства.

Сельскохозяйственное производство, в тем числе животноводство* должно полностью удовлетворить возрастающие потребности населения в продуктах питания и промышленность в сырье.

В данное время существуют острые проблемы.обеспзчения народа Ганы мясом, молоком, яйцами, а промышленность - сырьем в необходимом" количестве.

Основным тормозом развития животноводства в республике Гана является бесплодие животных. В связи с этим ставится проблема ликвидации I! профилактики бесплодия тавотных и повышения их продуктивности.

Нашими исследованиями в 1987 году на фермах крупного рогатого скота южной провинции Гани установлено, что бесплодие коров составляет 47,95?.

Необходимо отметить, что в республике Гана недостаточно изучены причини бесплодия товотннх, и поэтому существующие мероприятия по ликвидации и профилактике бесплодия животных являются малоэффективными.

• Среди заболеваний органов размножения животных большой процент занимают функциональные нарушения яичников, особенно гипофункция и персистентное желтое тело яичников у коров. В свизи с отим, разработка методов диагностики, лечения и профилактики этих заболеваний будет иметь большое практическое значение для животноводческих хозяйств республики Гана.

Состояние изученности вопроса. В литературных -источниках излагаются разные причины гипофункции и перенгтенцин долгого тела яичников у коров и авторы подразделяют их на внутренние и внешние. К внешним причинам относятся болезни матки, интоксикации, инфекции, нарушения гипоталамо-гипофизарчой функции» понижение эндокринной секреции, заболевания сердечно-сссуднстой и нервной систем к другие.

В отношении распространения гипофункции яичников у коров авторы приводят разные статистические данные - от 27 до 60% и больпе по отношению ко веем бесплодным -чвотиш.

Что касается распространения персистентного желтого тела яич-нмкоб у коров, мнении разноречивы. Одни исследователи (В.С.Шипкдов,

Л.И.Филоненко, 1975; Л.Г.Нежданов, 1984) сообщают, что персистечтноа желтое тело яичников встречается очень редко - от 5,4% до 7,2% бесплодных коров, другие авторы (В.Я.Никитин, Э.Н.Грига, 1974) утверждают, что персистентное желтое тело яичников встречается у 73-74% бесплодных коров.

В литературе имеется много данных о методах лечения коров с гипофункцией и персистентным желтым телом яичников, .но нет единого мнения в отношении эффективности отдельных методов. Многие авторы, применяя различные методы лечения, получают разную эффективность.

В доступных нам работах советских и иностранных авторов мы не нашли данных о наличии скрытого эндометрита у короп с гипофункцией яичников и нет сведений об изменении количества прогестерона в крови коров в зависимости от сроков нарушения функции яичников.

Цель и задачи исследования. При проведении исследований по выполнению темы кандидатской диссертации мы поставили для разрешения следующие задачи:

1. Изуиять распространение и причины гипофункции и персистенции желтого тела яичников у коров и установить процентное соотношение их к общему числу бесплодных животных.

2. Изуччть биохимические показатели и концентрацию прогестерона в крови коров при гипофункции и ппрсистектном желтом теле яичников.

3. Провести сравнительную оценку некоторых методов лечения корог с гипофункцией и персистентным желтым телом яичников и установить процент коров со скрытым эндометритом среди животных с функциональными нарушениями яи'шиков.

4. Изучить гистологические изменения эндометр/я при скрытом эндометрите у коров с гипофункцией и персистентгым желтым телом яичников .

5. Определить электропроводимость течковой слизи у коров при нормгльном состоянии половых органов и после лечения животных с гипофункцией и персистентным хелтым телом яичников.

Научная новизна исследования. Впервые установлено наличке скрытого эндометрита у керов о гипофункцией яичников. При'от см животные со скрытым ячдеметритом составляют 13,5%.

Нами установлено, что наиболее эффективным методом лечения коров с гипофункцией яичнгков является применение тканевого препарата, npt'i отовленнчго из печени крупного речтого гкота по й.П. уилатегу в кодификации кафедры акугсеретва и искусственного ооеч-енения Укрлпк-с'-. се*'-'5кохозя£сг б<л нс-Г; акадгмии.

Новыми являются данные об уменьшении количества прогестерона в сыворотке крови коров с увеличением сроков гипофункции и персистен-ции желтого тела яичников.

Впервые установлено, что электропроводимость течковой слизи коров после ликвидации гипофункции и персистентного желтого тела яичников повышается при наличии в ней серусодеруащнх аминокислот (скрытый эндометрит).

Теоретическая значимость и практическая ценность работы.

Изучены распространение и причины гипофункции и персистепцяи - -желтого тела яичников у коров. Установлено, что коропы с: гипофункцией яичников среди бесплодных животных в совхозе "Хотовскнй" составляют в среднем 33,0$, а на трех фермах республики Гана - 45,9$, Коровы с пэрсистентннм желтым телом яичников среди бесплодных животных в совхозе "Хотопский" составляют в среднем 16,®, а на трех фермах республики Гана - 23,4?.

Установлено наличие скрытого эндометрита у коров с гипофункцией и персистекгным желтым телом яичников в 18,9 и 17,2$ случаев соответственно, что имеет важное теоретическое и практическое значение в разработке мероприятий по ликвидации и профилактике этих нарушений у коров.

Установлена высокая эффективность лечения коров с гипофункцией яичников. Наряду с улучшением кормления и условий срдержания, применяли тканевой препарат, приготовленный из печени крупного рогатого скота по В.П.Филатову в модификации кафедры акушерства и искусственного осеменения УСХА.

Введение тканевого препарата подкожно в дозе 25 мл 2-3 раза с интервалом 7 днзй вызвало восстановление полового цикла у 95,0$ животных, а оплодотпоряемость наступала у 89,4$' коров.

Нами установлено, что синтетические аналоге простагландика Ф-2 альфа (энзапрсот и эстрофан) обладают высоким терапевтическим действием при пзрсиг.тентном желтом теле яичников у кЬров.

Реализация результатов исследований. Результаты исследований внедрены в сояхозе "Хотовский" Киево-СвятоЕинского-рзйона.

Апробация гавоты. Основные результаты работы были доложены и обсужденч на иаувдо-теоретичееких конференциях профессорско-преподавательского состава и аспирантом Украинской сельскохозяйственной академии в 1986 и 1987 г.г. и получиди полотатзльпуп оценку.

Публикация -результатов исследован??*. Основные положения дмссер-

тации изложены в 3 статьях общим объемом 12 страниц машинописи, которые сданы в печать.

Структура и объем работы. Диссертация изложена на'131 странице машинописного текста, содержит 18 таблиц, 10 рисунков. Состоит из введения, обзора литературы, описания материала и методов исследований, результатов собственных исследований и их обсуждения, выводов, предложения для производства и списка литературы, который включает Т. 80 работ, в том числе 09 иностранных авторов.

СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ

Материал >; методика исследований. Исследования, проведены в течение 1985-IP83 г.г. на 202 коровах черно-пестрой породы в возрасте от 3 до 0 лет, принадлежащих совхозу "Хотовский" Киево-Святопинского района и на 300 коровах в возрасте от 4 до 10 лет, зебувидной породы, принадлежащих трем фермам республики Гана. Из этого числа яивотных у 300 коров нами установлена гипофункция яичников, у 182 коров -персистентное желтое тело и только у 20 коровнормальное состояние половых органов.

Материалом для лабораторных исследований служили: кровь, взятая из яремной вены, течковая слизь, которую брали при помощи ложи-катетера Г.К.Корчака -л влагалищного зеркала и кусочки стенки матки размером 1x1 см, взятые после убоя жпеотных со скрытым эндометритом и фиксированные в 10?'-лом нейтральном формалине для гистологических иссле • дований с целью подтверждения диагноза на скрытый эндометрит. В сыворотке крови коров определяли:

- общий белок рефрактометрическим методом;

- общий кальций комплексометрическнм методом с индикаторе?* флуорек-сона по Внчеву к Каракашеву;

- неорганический фосфор-ванадат-молибденовым реактивом по Пулсу п модификации В.Ф.Коромыслоаа и J'.А..Кудрявцевой (К'72);

- каротин по аарр-Прайсу в модификации Юдкина; ■

- цепочной резерв - диффузионным методом с помощью сдвоенных колб 1 по И.П.Кондрахпну;

- концентрацию прогестерона - тадро»ммунологическ"м методом с применением набора Стероп-П-л'"°1.

В тетгковой слизи определяли:

- электропроводимость пр>• помощи кондуктометра У J (производства П;!Р) ;

- муцины при помощи 1^-ного раствора уксусной кислоты;

- с еру содержащие аминокислоты (метнонин, цисчин, цистеин) пробой Фоля;

- циклические аминокислоты (фенилаланин, тирозин, тргптофан) ксантопро-теиновой пробой по Г.Н.Калиновскому (1975);

- белки-полипептиды биуретовой реакцией.

Показатель рН течковой слизи определяли при помощи рН-метра № 5123 (производства ПНР).

Гистологические исследования эндометрия проводили на материале от 10 коров после лечения гипофункции яичников и 10 коров после регрессии персистентного желтого тела яичников.

Материал для гистологических исследований обрабатывали по мето^ дике Г.Л.Меркулова (1969) и гистологические препараты изучали с помощью микроскопа МБП-15. Микросъемку осуществляли при помощи .автоматической съемочной установки, соединенной с микроскопом.

Сравнительную оценку некоторых методов лечения коров с гипофункцией и персгстентными желтыми телами яичников проводили на нескольких группах животных с применением синтетических аналогов простагландина Ф-2 альфа (эстрофан, энзапрост), тканевого препарата, приготовленного из печени крупного рогатого скота по методу В.П.Филатова в модификации кафедры акушерства и искусственного осеменения УСХА, а также делали массам матки и яичников'.через прямую кишку и энуклеацию персистентного желтого тела.

РЕЗУЛЬТАТЫ 11ССЛЕД0В\НИЙ

Каш изучалось распространение гипофункции к персистентного желтого тела яичнмков у бесплодных коров молочной фермы совхоза "Хотовский" Киево-Святошинского района в течение 1985-1968 г.г., и на трех молочных фермах республики Гана.

Гинекологические исследования бесплодных коров проводили с целью диагностики гипофункции и персистентного желтого тела яичников с учетом анамнестических данных.

Диагноз на гипофункцию яичников у коров ставши на основании длительного отсутствия стадии возбуждения ползвого цикла после отета и данных двукратного ректального исследования с интервалом 3 недели.

Нашими исследованиями ултанов1ено, что гипофунг;цн опальное состояние яичников у коров.характеризуется длчтельикм отсутствием про- ( явления паловой цикличности и малыми размерам! яичников, не содержит;«

созревающих фолликулов и желтых тел.

Диагноз на перси.стентное келтое тело яичников у коров ставили на основании длительного отсутствия проявления стадии возбуждения полового цикла после отела и результатов двукратного ректального исследования с интервалом 3 недели.

Результаты научения распространения гипофункции и персистентного желтого тела лг-.чнкков у коров показали, что в совхозе "Хотовский" коровы с гипофункцией яичников составляют в среднем 33,8?? к общему числу бесплодных животных, а на трех фермах республики Гана - 45,9^. И совхозе "Хотовскпй" коровы с персистентным желтым телом яичников составляют в среднем 16,8$ к общему числу бесплодных животных, а на трех фермах республики Гана - 23,4%.

Причины гипофункции и персистенции желтого тела яичников у корон изучались в совхозе "Хотовскпй" и на трех фермах республики Гана путем проведения анализа кормления, условий содержания и эксплуатации животных, а такке биохимического анализа крови.

В зкмке-весенниГ: период рационы для коров всего стада в совхозе "Хотсвский" былине сбалансированными по следующим показателям: кормовым единицам - 6,2 (потребность - 9,6); переваримому протеину -375 г (потребность - 940 г); кальцию - 4?.,6 г (потребность -66 г); сырой клетчатке - ?.8Х г (потребность 3700 г); фосфору - 30,6 г (потребность - 45 г); каротину - 327 мг (потребность - 410 мг). На трех фермах республики Гака кормление коров такг<е не было сбалансировано.

При анализе условий содержания коров в совхозе "Хотовсхпй" установлено, что микроклимат в помещениях для животных не соответствовал зоогигиенииеским нормам. Воздух в помещениях содержал повышенную концентрацию аммиака из-за отсутствия принудительной вентиля-ни" V несвоевременной уборки навоза. В зимний перирд коровы находились на привязи в помещениях и не пользовались активным моционом, боровы трех ферм республики Гана е-тедневно находились па пастбище без укрытия от солнца.

Согласно даннгх отчетов о состоянии воспроизводства стада по совхозу "Хотсвский" за 1933-1535:. г.г., яловость коров превышала 20?, а за КСС-1£88 г.г. ятовось 'ила в пределах Р?, т.е. уменипи-лас-, на в результате проведенных нами лечебно-пгофилактчческих мероприятий.

плл выяснения состояния обмена веществ у коров в совхозе "Хотев "к»}!" бы.то прсред енс С--:охин"Чб "к:е иселедоран"е крови сг к еров с Я'пофунулг'с? якчи5'ксв и персчстенгчьм «еятьи телек .яичников. ''т;овь

для исследования брали-от 13 коров о гипофункцией и от 13 коров с пур-систентным ;~елтым телом яичников.

Результаты лабораторного исследования крови коров при гипофункции и персистентном желтом теле яичников показали, что общий белок, общй кальций, неорганический фосфор, каротин и щелочной резерв были ниже корму.

Рез.ульталечения коров с гипофункцией и персгстентнт зделтач толом яич::нков. В сзохозе "Хстовский11 было подобрано У ксрочы с' гипофункцией я:-;'-л :коа в возрасте от 3 до 3 лет, черно-пестрой породы, средней упитанности, яизой массой 4£0-550 кг, которых разделили на 5 групп по принципу аналогов, четыре группы подопытные и одна - контрольная.

Для лечения коров первой группы применяли острофмн (синтетический аналог простагла.чд^ча 5-2-альфа (внутримышечно, в дозе 2 мл -500 мкг препарата); для коров второй группы - энзапрост внутримышечно, в дозе 5 мл (20 мг препарата); для коров третьей группы - тканевый препарат, приготовленный из.пе^енч крупного рогатого скота'по. В.П.Филатову в модификации кафедры акусерстю ;; искусственного осеменения УСХА, подко-ч:о г области трехглавой мышцы плеча, в дозе 25 мл 2-3 раза с интервалом 7 дней; коровам четвертой группы делали массаж улт-ки и яи"ников через прямую кишку I раз в день 5 минут 3-4 раза с интервалами I день.

Результату лечения коров с гипофункцией яичников представлена в таблице I.

Из таблицы I видно, что после лечения 15 коров первой группы пришли в охоту 2 коровы после первого введения препарата а среднем через 4,4+1,3 дня и после осеменения оплодотворились.

После второго введения эстрофана пришли".в охоту б коров, «э которых оплодотворилась одна корова. Повторно пришли -в охоту 5 коров,но после осеменения не оплодотворились. Таким образом, всего пришли в охоту,.' 8 коров (53,3'г), из которых оплодотворились 3 (3?,Е°0. ?

Из 15 коров второй группы пришли в охоту II (73,'3%) в среднем через 3,2+2,1 дня, из которых оплодотзорилнсь 5 коров' (45,-4$). При ятол; 3 коровы оплодотворились в первую охоту, одна' корова во втору» охоту и одна корова после третьего осеменения.

В третьей группе из 20 коров после лечения приютэ в охоту 19 (СО,С?.) керов в среднем через 1С,,2 дня и оплодотворились 17, или! 09,керов; в том число в первую охоту .12 коров: яо вторую охоту 3 коровы и в третью - :3 коровы.

Таблица I

Результаты лечения коров с гипофункцией яичников

Группа !Кол ! "ее <-! Возраст! г-!(в ср. ! Метод !К-во коров,при-'Колмчест-!шедших в охоту !во дн.от Полово "т цикл 1Количество .дней от на- 'Про! цент Индекс 'Колчче-'стео

коров ЙроЛ ! • ? т ! ? ? 1 ¡всего ! в т.ч.со ; качала ле 'скрытым !чения до !эндомет- !1 охоты !ритом. !(в ср.) I 2 ! 3 г ) .'чзла лече-!ния до оп-'лодотворэ-!ния(в ср.) ! опло •до-тво-!рени 'олло-!коров, !дотво!не при' рения'шедших 1 ! в охоту

т X тг 5,5 Эстрсфан '3,0-^,0)после первого введения 2 4,4+1,3 7 2

после второго введения 6 3 14,2+2,1 & I 5 2 7,5+1,2 37,5 1.0 7

о ТГ 5,0 Энзалрост (4,С-б,0) И 4 3,2+2,1 II 3 8 Т 7 Т 10,3+3,8 45,4 1,6 4

20 4,5 Тканевый (4,0-5,С)препарат из печеьи 19 т 10,8+3,2 13 17 Г? 4 к 13,8+2,6 .89,4 1.4 I

о * 6, С !.ксса-к (4,С-8,0)матки к яичников 13 <-> 3,3.1,2 18 12 о 2 ■ 10,1+3,1 77,7 и 6

5,5 Контроль а, с-7,о) р т 34,2+4,1 2 Т I - 31,2 10,0 2,0 8

Пуме' ль'/е: числитель - количество осемененных коров; знаменатель - количество оплодотвори впихся ксров; процент юров со скрытым эндометритом = 18,9%.

Иа 24 коров четветой группы пришло в охоту 18 (75,0$) п среднем через 8,3+1,2 дня после качала лечения, из которых оплодотворились 14 (77,7$) коров, из них в первую охоту оплодотворились 12 коров, ео вторую - 2 коровы.

Пятая группа коров служила контролем. Из 10 коров этой группы пришло в охоту только 2 (20,0$) в течение 34,2+1,1 дня, а оплодотворилась только одна корова.

У 18,неоплодотворившихся коров было установлено субклиническое воспаление матки.

После применения тканевой терапии из 19 бесплодных коров скрытый эндометрит выявлен только у одной коровы, а при других методах лечения больных коров было значительно больше. Возникает вопрос, почему при тканевой терапии обнарут о меньшее количество коров со скрытым эндометритом. Это объясняется тем, что тканевый препарат,приготовленный из печени крупного рогатого скота, является такке эффективным средством для лечения короп со скрытым эндометритом.

Наиболее эффективным методом лечения коров с гипофункцией яичников является тканевая терапия, менее эффективным - маесаг матки к яичников через прямую к>»шку и мало эффективным - применение эсгрофа-на и энзапроста.

В опыт для сравнительной оценки некоторых методов лечения коров с персистентнмм желтым телом яичников было взято 40 бесплодных коров в возрасте от 3 до 9 лет, черно-пестрой породы, средней упитанности, живой массой Б00-5Б0 кг с продолжительностью бесплодия з среднем 91,5+10,2 дней. Подопытные коровы с персистентным желтым телом яичников б-лли разделены на 5 групп по принципу аналогов - 4 группы подопытные и одна группа контрольная.

Коровам первой группы применяли синтетический аналог простаглан-дина Ф^-2 ал^фа (эстрофан) ^чутримышечно в дозе 2 мл/Ь00 мкг препарата/ двукратно с интервалом II дней; коровам второй группы - энзапрост внутримышечно г дозе Е мл (20 мг препарата); коровам третьей группы -тканевый препарат, приготовленный из печени крупного рогатого скота, подкожно в дозе 25 мл 2-3 раза с интервалом 7 дней; у коров четвертой группы проводилась энуклеатдоя персистентного келтого тела черр-* прямую кишку. Результаты лечения коров с пзрсистентким желтым телом яичников представлены в таблице 2.

Из таблицы 2 видно, ^то из 10 коров первой группы припло в охоту 9 (90,0$) в среднем через 15,2+1,6 дней после впедениг пр парам, из которых оплодотворились в первую охоту 7 коров и зс в-сруп охоту -од!а корова и одна корова со скрыты:/, эндометрите« не оп."сдотвсри.т-х':I..

Таблица Z

Результаты лечения коров с персрстентннм келтым телом яичников

ГpvH-Kio.«-!ВозрастТК-во! ! !ол-во коров. .„,„..

та сл. !дк. !Мвгод!гтр:жеда-х в !зо днзй .^-Оловои ц-<к.,

коров! но ' лзт? ! бес-!? охоту_от нао.ле!

îi-.cooijf !пг.о-!ния fвсе-!вт.ч.-ю !чения до! I ! 2 ! 3

' * ! !дкя ! ! го скрытым эк-П охоты ! ■ !

' ! !до ле ! !доматрнт.!(в ср.) ! ! !

! ! !чения ! ! ! ! ! _!

!Ксличестзо'Про-!Кн- 'Нолнчс -дней от на~!цзнт!декс !ство ! чала лече-!спло! сило-!горов,иг • ния до оп-!до- !дотвэ!цришздв:гх !лодотворе-1тво-!рения!в охоту !ния(в ср.)^ения! !

6,0 93.4+ Эс.'тю- 9 (4.С-ЗР) фан"1

4,5 "2.7+ Энза- 10 (3,0-с\0 ) 4,3 ~ прост

5,С 84,3+ Тканевый 6 (40-6,0) +6,-1"" препарат из печени

5,5 101,3+ Энуклеа- 4 (5,0-5,0) 1?. ,2~ ц-ля

4,С 104,6+ Контроль -(3,0-5,0) +li,3-

15,2+1,6 *

3,1+1,2 15,8+3,1

Птулмеуание: числитель - количество осемененных коров,

знаменатель - колт:честйо оплодотворенных коров, процент короз со скрыты:.; эндометритом - 17,Л .

3 22,0+1,7 | 1 |

15,5+4,3 Б3,9 1,1 Одна корова не пришла в

ОХОТу-йсЛТОС-тело осталось.

5,1+1,3 90,0 1,1

16,8+3,2 83,3 1,2 4 коровы не пришли в охо ту-желтые тела остались.

22,0+1,7 25,0 1,0 б коров ке

пришли в

Одна корова не пршлла в охоту и желтое тело не рассосалось.

Во второй группе все 10 (ЮОЯ коров пришли з охоту в среднем через 3,1+1,2 дня, из которых оплодотворились 9 (90$) коров (из 9 коров в первую охоту оплодотворились 3, во вторую охоту одна короьа).

Из 10 коров третьей группы пришло в охоту ß (СО ,05?) в среднем через 1С,8+3,1 дня после начала лечения, из которых оплодотзорились 5 (03,Ж) коров (ил 5 коров оплодотворились в первую охоту 4, во вторую - одна корова).

Из 10 коров четвертой группы пришло в охоту Л (<10,0$)короЕЫ в среднем через 22,0+1,7 дня, из которых оплодотворилась только одна (2Е>,0?о) корова. У 3 коров выявлен скрытый эндометрит. За период опыта 8 коров пятой группы (контрольная) не пришли в охоту.

Исследования по определению аг ктропроводимост1*' течковой слизи проводили на <'5 коровах черно-пестрой породы в возрасте от 3 до 8 лет, '¡сивой массой '1С0-4С0 кг г средней упитанности. Подопытные коровы были разделены на три группы по принципу аналогов.

В первую группу пошли 15 коров после регрессии персистеитиого желтого тела яичников (применяли острофан); по вторую групп" - 15 коров посхе восстановления функции яичников (применяли тканевый npenapt из печени) и третью группу составили 15 коров с нормальным состоянием половых органов. Пробы точкозой слизи исследовали на электропроводимость, сег>усодержащие и циклические аминокислоты.

Исследование и наблюдение за животными всех групп осуществляли в течение 90 дней.

Все IE? коров первой группы после рассасывания персистеитиого желтого тела яичников пришли в состояние охоты и были искусственно осеменены разыррокенной спермой двукратно с интервалом 10-12 часов ректоцервикалььнм способом. После осеменения оплодотворилось ТО коров и не оплодотворилось Г> чорс (со скрытым эндометритом).

о течковой слизи 10 опгодотвор*»впетхе я коров, взятой до осеменения. злектропрсвогшост?. йч.та в среднем О,F5+0,03 Симоне (I Сименс --I Ом"') (Р4 0,01). Серусодертерпс i: циклических аминокислот в слизи че обнару veno. Электропроводимость течковой слизи £ неоплодотворивга'хся керов г'ыла в среднем I,2BfO,2f- Сименс и в ней обнаружены еерусодер;:сч";ие аминокислоты (скрыты,1 эндометрит).

!!з 1!; коров вторе* группы, пуччедаих в соту после прпдонепиг тк-и-евого препарата, не сплодотвор'лгсь 3 коровы, в течког.ой с^изи которых были обнаружены серусодергаа^е av/HOKvc;стк (скрытый эгд<и<Л7-

Э.-ектропрспсд»мост' течкозей слизи неоплодотгор-лгг/ч:' короа л

среднем была 1,17+0,18 Сименс (Р 0,01), а у коров, которые оплодотворились - 0,59+0,02 Сименс (Р <, С,01).

У коров третьей группы с нормальным состоянием половых орх'анов электропроводимость течковой слизи была в среднем 0,75+0,02 Сименс. Серусодержащие и циклические аминокислоты не обнаружены и все коровы после осеменения оплодотворились. Из приведенных данных видно, что повышенная электропроводимость течковой слизи у коров со скрытым эндометритом, по нашим данным, зависит от наличия в ней серусодержащих аминокислот.

Результаты изучения содержания прогестерона в сыворотке крови коров при гипофункции у персистептном желтом теле яичников.

Ha.ur.: изучено содерланчс прогестерона в сыворотке кров- при гипофункции и персистентном желтом теле яичникое и при нормальном состоянии половых органов.

. В опыте находилось 5 коров с гипофункцией яичников, 5-е пер-систентным желтым телом и 5 - с нормальным состоянием половых органов.

Е сыворотке крови определяли содержание прогестерона радиоиммунологическим методом с использованием набора Стерон-П-^1 и антисывороток .о

Регистрацию радиоактивности проводили с помощью жидкостного сциптиляционного счетчика. Количество прогестерона в сыворотке крови коров при гипофункции яичников было в пределах от 0,56 нмол/л до 1,45 нмоль/л, в среднем 0,97+0,05 нмолъ/л (при Р ^ 0,01), причем концентрация гормона уменьшается с удлинением сроков гипофункции яичников.

Количество прогестерона в крови короэ с персистентным желтым телом яичников колебалось в пределах от 1,52 нмоль/л до 5,63 нмоль/л, в среднем 3,54+Т,37нмолъ/л (при Р { 0,01). С удлинением сроков пер-систенции телтог" тола количество прогестерона в крови коров понижается, что объясняется недостаточной функцией Литвиновых клеток пер-систеьтнсго желтого те на.

Через 3 дня после введения простагландина Ф-2-альфа (эстрофан) б лозе 500 мкг внутримышеино коровам с перс.иетентнш желтым телом, количество прогестерона в крови подопытных коров снизилось в среднем от 3,54+1,37 нмоль/л до 0,64+0,14 нмоль/л и затем гормональная функция желтого тела прекратилась.

Количество прогестерона в крови коров с нормальным состоянием половых органов на 9-ТЗ день полового цикла было в пределах от 10,24 нмоль/л до2Т,32 нмоль/л; в среднем 15,31+2,13 нмоль/л (Р (. 0,01)

Результаты гистологических исследований эндометрия при скрытом эндометрите у коров.

При гистологическом исследовании препаратов из стенки матки подопытных коров обнаруживали морфологические изменения в поверхностных лоях слизистой оболочки матки (в покровном и подпокровном эпителиях) в виде альтерации и слущивания покровного эпителия, диффузной лим{;о-идноклеточной инфильтрации под измененным покровным эпителием, разрушение и ршширение ш.точных желез возле их устьев, отек стромы эндометрия и гиалиноз кровеносных сосудов.

На основании полученных нами рзультатов исследований сделаны следующие выводы:

Т, Основными причинами гипофункции и порсистенции желтого тела яичников у коров являются недостаточное и неполноценное кормление, а такте нарушения условий содержания животных.

2. В совхозе "Хотовскнй" коровы с гипофункцией и переи^тентнымп желтым' телами яичников составляют 33,6$ и 16,8$ соответственно ко всем бесплодным коровам. На молочных фермах республики Гана коровы с гипофункцией яичников составляют 45,9% и животные с переистентными желтыми телами - 23,4? ко всем ^есплоднш коровам.

3. Содержание общего белка, общего кальция, неорганического фосфора, каротина и щелочного резерва в крови коров с гипофункцией и персистентиым желтым телом яичников находилось ниже нормы.

4. Наиболее аффективным методом лечения коров при гипофункции яичников является применение тканевого препарата, приготовленного из пе«ени крупного рогатого скота по 3.П.Филатову в модификации кафедры акушерства и искусственного осеменения УСХА. Менее эффективным является масоая матки и яичников через прямую кишку и низкоз'*фективнкм -применение синтетического аналога простагландина Ф-''-альфа (острофчн и онзапрост).

5. Наиболее эффективным методом лечения коров при персистентном желтом теле яичников является применение эназпроста и эстрофша; оп~ лодотворяемость коров составила 90,07' и 38,97 соответственно.

".'енее эффективным является применение т (.нового препарата из пе-"рн» и низкз:>ффект"ЁНЫм - энуклеация персистентного желтого тела прямую кивку.

С. Суо'клиническое воспаление эндометрия установлено у 1*3,кор-.г при гипофункции и 1™,27 ксро! при персистентном ге.ттсм толе тичнигор..

При скрытом эндометрите в большинстве случаев функция яичников сохраняется. Кировы с э- им заболеванием регулярно приходят в состояние охоты и течки, но после осеменения не оплодотворяются.

Гистологическими "сследованиями эндометрия при скрытом эндометрита установлено, что морфологические изменения локализуются в поверхностных слоях слизистой оболочки матки - в покровном и подпокровном г.-пителии.

Лабор.тсрный метод диагностики скрытого эндометрита у коров пробой на обнаружение серусодержащих аминокислот в течковой слизи является наиболее эффективным, простым и лел:ошполнимым в производственных условиях.

V. Электропроводимость течковой слизи у коров при отсутствии скрытого эндометрита составляет в среднем 0,80+0,02 Сименс, а у коров с наличном скрытого эндометрита - 1,23+0,22 Сименс.

Фактором, поЕылаицим электропроводимость течковой слизи, ..вляетея наличие в ней с еру с оде рян щи х аминокислот.

8. Количество прогестерона в сыворотке крови коров при гипофункции л ы'р.истептпог.: желтом теле сочников составляет в оредпсм 0,97+ +0,05 ниоль/л и 3,54^.1,37 чмсль/л соответственно. При удлинении сроков гипофункции и персистенции желтого тела в яичнике количестве прогестерона в сыворотке крови коров понижается.

ГШГОМЕЩ11ИИ ПРОИЗВОДСТВУ

1. Для предупреждений гипофункции и персистенции желтого тела яичников у коров необходимо обеспечить животных достаточным и полноценным кормлением, хорошими условиями содержания с предоставлением им регулярного моциона. а

2. Для диагностики гипофункции м персистентного желтого тела яичник^э у коров п льзоааться анамнестическими данными и данными двукратного ректального исследования с интервалом 3 недели.

3. Дня лечения коров с гииофучкциой яичников применять тканевый препарат, приготовлении« из печени крупного рогатого скота по методу В.П.<млат'та в модификации кафедры акушерства и искусственного осеменения УСХА, подкорке в дозе 25 мл 2-3 раза с интервалом 7 дней.

Для лечения коров 1 персистентным яёлтым телом яичников применять синтетические аналоги простагландкна Ф-2-альфа энзапром внутримышечно, едиж^й-тно, в дозе 5 мл (20 мг препарата) или эотрофан вкутри-мнше'-.но, двукратно, в дозе 2 мл (500 ккг) препарата о интервалом ,11 дней. .

СПИСОК ОПУБ-МЮВШШХ РАБОТ ПО ТЕМЕ ,ДИССЕРТАЦИИ

1. Даркт К.Е. Лечение коров с гипофункцией яичников. Сдана в [ечать. Сборник научных трудов сотрудников Украинской сельскохозяй-:твенной академии.

2. Дарква К.Б. Лечение коров с персистентпкм желтым телом яичниц-сов. Сдана в печать: Сборник научных трудоп сотрудников УСХА.

3. Лдрква К.Б. Гистологические изменения эндометрия при скрытом эндометрите у коров с гипофункцией и перечете! шшм желтым тзлом яич-жков. Сдана в печать: Сборник научных трудов сотрудников УСХА.

Подписано к печати 29.04.Ь9 г. Печать опер.Усл.печ.л. О,9.Уч.изд. лист.1,0.Тираж 100. Зак.» 444

УПК УСХА, 252041 Киев, Сельскохозяйственный переулок, 4

Медицинские Диссертации http://medical-diss.com/veterinariya/sravnitelnaya-otsenka-nekotoryh-metodov-lecheniya-korov-s-gipofunktsiey-i-persistentnym-zheltym-telom-yaichnika#ixzz2iwsgjIVf

Автореферат диссертации по ветеринарии на тему Функциональная морфология желтых тел яичников коров в норме и при патологии

На правах рукописи

Шарипов Ансар Радикович

Функциональная морфология желтых тел яичников коров в норме и при патологии

16.00.02 - патология, онкология и морфология животных

АВТОРЕФЕРАТ на соискание ученой степени кандидата ветеринарных наук

Уфа-2004

Работа выполнена в ФГОУ ВПО «Башкирский государственный аграрный университет»

Научный руководитель - доктор ветеринарных наук, профессор

Сковородин Евгений Николаевич

Официальные оппоненты - доктор ветеринарных наук, профессор

Галеев Рафаэль Фаррахович

кандидат ветеринарных наук Буканов Азамат Мухтарович

Ведущая организация — ВГО «Башкирский институт перепод-

готовки и повышения квалификации кадров АПК»

Защита состоится «22» декабря 2004 года в 12 часов на заседании диссертационного совета Д 220.003.02 при ФГОУ ВПО «Башкирский государственный аграрный университет» 450001, г. Уфа, ул. 50 лет Октября, корпус 4.

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке ФГОУ ВПО «Башкирский государственный университет»

Автореферат разослан «_18 » ноября 2004 г.

Ученый секретарь диссертационного совета, доцент

Каримов Ф. А.

1. ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ

Актуальность темы. Изучение функциональной морфологии органов размножения сельскохозяйственных животных в норме и при патологии является одной из наиболее сложных и актуальных проблем биологии и ветеринарной медицины (Шипилов, 1977; Соколовская, Милованов, 1981; Буянов, 1986; Эрнст, Сергеев, 1989; Валюшкин, Гуков, 1998; Миролюбов, 2003; Нежданов, 2003; Hammond, 1927; Hunter, 1980). Большой интерес к ним не исчерпывается чисто теоретическими соображениями, поскольку достижения в данной области непосредственно связаны с кардинальными вопросами воспроизводства, находят прямой и эффективный выход в практику (Полянцев, Синявин, 1989; Зверева, 1991; Иноземцев, Таллер, 1997; Шутов, Буканов, 2001; Пронин, 2003; Noakes, 1986).

Среди работ, раскрывающих проблемы функциональной морфологии яичников крупного рогатого скота (Хватов, 1955; Литвинова, 1964; Хонина, 1984; Курило, 1985; Еремин, 1987; Садирова, Хрусталева, 1993; Свиридов, 1993; Ско-вородин, 1999; Еремин, 2004; Erickson, 1966; Guraya, 1977; Singh, Roy, 1999), недостаточно исследований касающихся строения желтых тел и других лютеи-низированных структур яичников (Киршенблат, 1973; Долинина, 1977; Пономарева, 1981; Середин, 1998; Грига, 1999; Gasse, 1983; Konsaka et al. 1982; Weber et al., 1993; Singh, Roy, 1999). Дефицит информации, относящийся к морфологическому эквиваленту функции этой эндокринной железы, не позволяет эффективно решать целый ряд современных задач, поставленных практикой, таких как трансплантация эмбрионов, синхронизация охоты, профилактика симптоматического бесплодия, дифференциальная диагностика болезней органов размножения, их профилактика и лечение, разработка лютеолитических препаратов. По данным многих исследователей (Кононов, Буянов, 1973; Долинина, 1977; Муруев, 1985; Полянцев, Калашник, 1991; Середин, 1998; Грига, 1999; Нежданов, Душкаева, 1999; Jabb et al., 1985) персистентное желтое тело - одна из причин симптоматического бесплодия. Существующие в настоящее время методы диагностики, основанные на клиническом и, прежде всего, ректальном исследовании, не отражают всей сложности патологических процессов, происходящих в овариальных железах и матке при этой патологии. Не выяснены механизмы лютеинизации и лютеолизиса (Carlson et al., 1989; Bove et al., 2000; Murphy, 2000). Практически не изучены другие типы лютеиновых структур яичников, не выяснена их роль в патологии овариальных желез.

Цель и задачи исследований. Изучить функциональную морфологию желтых тел и лютеиновых структур яичников коров в норме и при патологии. Для достижения указанной цели были поставлены следующие задачи.

1. Провести макроскопическое исследование органов размножения коров на протяжении стельности и полового цикла, при дисфункциях овариальных желез.

2. Определить органометрические показатели яичников коров и находящихся в них желтых тел на протяжении стельности и полового цикла, при дисфункциях яичников.

3. Изучить гистологические, гистохимические и гистоэнзиматические показатели желтых тел яичников стельных и циклирующих коров, персистент-ных желтых тел.

4. С помощью электронной микроскопии определить ультраструктурные показатели желтых тел яичников стельных и циклирующих коров, перси-стентных желтых тел.

5. Исследовать морфологию лютеолитических процессов в яичниках коров при беременности, половом цикле, персистенции желтых тел, а также в эксперименте после введения синтетического аналога простагландина Р2о (эстуфалан) с использованием биопсии желтого тела яичника. Научная новизна настоящей работы заключается в том, что впервые с

помощью комплекса клинико-гинекологических, патанатомических, макроскопических, морфометрических, гистологических, гистохимических, электронно-микроскопических методов, а также биопсии проведено исследование органов размножения и желтых тел яичников стельных и циклирующих коров, животных с дисфункциями овариальных желез на фоне патологии матки.

Подробно описаны макроскопические и морфометрические изменения в желтых телах яичников коров на протяжении беременности, полового цикла и при персистенции.

Дана подробная гистологическая, гистохимическая и ультраструктурная характеристика клеток, соединительной ткани, межклеточных взаимодействий, сосудов микроциркуляторного русла активно функционирующих желтых тел беременности, полового цикла, а также персистентных желтых тел яичников коров.

С помощью биопсии и исследования послеубойного материала показано ведущее значение нарушений микроциркуляторного русла, формирования внутриклеточных и мезенхимальных дистрофий, а также роль макрофагов в лютеолитических процессах, развивающихся в норме и при патологии в желтых телах яичников коров, а также при экспериментальном введении аналога про-стагландина Р2а (эстуфалан).

Практическая ценность работы. Описана морфология яичников коров в норме и при дисфункциях яичников. Установленные макроморфологические критерии структуры желтых тел яичников крупного рогатого скота в разные сроки стельности, полового цикла и персистенции можно использовать с целью установления состояния репродуктивной системы в норме и при патологии.

Доказана возможность проведения биопсии желтого тела яичника для диагностики дисфункций овариальных желез и при экспериментальном изучении действия лютеолитических и других биологически активных препаратов на структуру овариальных желез.

Результаты диссертационной работы, иллюстративный материал используются в учебном процессе на кафедре акушерства, патанатомии и хирургии Башкирского государственного аграрного университета.

Полученные данные включены в монографию "Возрастная морфология органов размножения самок крупного рогатого скота" (Сковородин Е. Н., Мень-кова А. А., Брянск, 2002. 208 с.) и в учебное пособие «Руководство к лабора-

торным занятиям по патологической анатомии животных» (Кадыров У. Г, Ско-вородин Е. Н., Уфа, 2003.180 с).

Они также могут быть использованы для разработки способов диагностики болезней яичников у крупного рогатого скота и других видов животных, оценки фармакологических препаратов и рационов, а также в учебных целях по курсам анатомии, гистологии, акушерства и биотехнологии, патологической анатомии, при написании учебников и монографий по сравнительной и патологической морфологии, ветеринарной гинекологии.

Апробация работы. Материалы диссертации доложены, обсуждены и получили положительную оценку на Международной научно-практической конференции «Проблемы акушерско-гинекологической патологии и воспроизводства сельскохозяйственных животных», посвященной 100-летию А. П. Студен-цова (Казань, 2003), Всероссийской научно-методической конференции патологоанатомов ветеринарной медицины (Уфа, 2003), Международной научно-практической конференции «Проблемы и пути интенсификации племенной работы в отраслях животноводства» (Уфа, 2004), УИ Конгрессе Международной ассоциации морфологов (Казань, 2004), расширенном заседании кафедры акушерства, патанатомии и хирургии Башкирского государственного аграрного университета (Уфа, 2004).

Публикации. Положения диссертационной работы достаточно полно отражены в трех научных статьях.

Объем и структура диссертации. Диссертация изложена на 152 страницах машинописного текста, состоит из разделов «Общая характеристика работы», «Обзор литературы», «Собственные исследования», «Обсуждение полученных результатов», «Выводы», «Практические предложения», «Список литературы». Список использованной литературы включает 225 источников, в том числе 106 иностранных авторов. Диссертация содержит 4 таблицы, 80 рисунков, в том числе 8 макрофотографий, 12 микрофотографий, 55 электронно-грамм и 5 графиков.

Основные положения диссертации, выносимые на защиту.

1. Макроскопическая и органометрическая характеристика овариальных желез и желтых тел яичников коров на разных сроках стельности и полового цикла, персистентных желтых тел.

2. Гистологическая и гистохимическая характеристика желтых тел яичников коров на первом-втором месяцах стельности, на 8 - 12-е сутки полового цикла, персистентных желтых тел разной морфофункциональной активности.

3. Ультраструктура лютеоцитов, межклеточных взаимодействий, элементов стромы и микроциркуляторного русла желтых тел яичников коров на первом-втором месяцах стельности, на 8 - 12-е сутки полового цикла, персистентных желтых тел разной морфофункциональной активности.

4. Морфологические проявления лютеолитических процессов в желтом теле полового цикла после экспериментального введения аналога простагландина Б (эстуфалан).

2 СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ

2.1 Материал и методы исследований

Работа выполнена в 2001 - 2004 годах на кафедре акушерства, патанато-мии и хирургии ФГОУ ВПО «Башкирский государственный аграрный университет», в учебно-опытном хозяйстве БГАУ «Мидовское» Уфимского района Республики Башкортостан, в убойном цехе Уфимского мясоконсервного комбината, а также в лаборатории морфологии, гистохимии и электронной микроскопии Всероссийского центра глазной и пластической хирургии «Аллоплант».

В хозяйстве исследовали условия кормления, содержания и эксплуатации животных, анализировали воспроизводительную функцию коров с учетом распространенности патологии половых органов. Клиническое состояние животных определяли по общепринятым в ветеринарной медицине методам, а также выборочного биохимического исследования крови на содержание общего белка, неорганического кальция, фосфора, кислотной емкости и каротина.

На основании этих данных отбирали животных и делили их на следующие группы. Первая группа — 27 стельных коров (по три коровы на каждый месяц стельности). Вторая группа — 21 корова на разных стадиях полового цикла. Половой цикл условно дели на семь стадий (одна стадия составляла последовательно три дня). Третья группа - бесплодные коровы с дисфункциями яичников, а именно: с персистентным желтым телом (п = 10), с гипофункцией яичников (п = 5), с лютеиновыми и фоликулярными кистами яичника (п = 10).

На мясокомбинатах проводили тщательный послеубойное исследование органов коров с последующим макроскопическим, гистологическим, гистохимическим и электронномикроскопическим изучением полученного материала.

После извлечения проводили измерения различных отделов органов размножения. У коров яичники осматривали, отмечая их величину, наличие фолликулов, желтых тел, красных и белых атретических тел. Разрезали поперечно с помощью пластинчатого аппарата, состоящего из двух штоков от шприца типа "Рекорд-Правац" и закрепленных на них с помощью шайб лезвиями от безопасных бритв. Полученные пластинки осматривали и фиксировали в жидком азоте, жидкости Карнуа, 10% растворе нейтрального формалина, в охлажденном 2,5% глютаральдегиде.

Материал, зафиксированный в жидкости Карнуа или в 10% растворе нейтрального формалина, обезвоживали и заливали в парафин по схеме Г. А. Меркулова (1969). С помощью микротома получали срезы толщиной 5-6 мкм которые после депарафинации окрашивали гематоксилином и эозином, паноптиче-ским методом по A. Pappenheim. Коллагеновые волокна выявляли по ван Гизо-ну. Дезоксирибонуклеопротеиды (ДНП) и рибонуклеопротеиды (РНП) - по L. Einarson, по J. Brchet, гликоген и нейтральные гликозаминогликаны - по А. Л. Шабадашу, кислые гликозаминогликаны - по Н. F. Steedman. Из материала, фиксированного в формалине, срезы, полученные на замораживающем микротоме, окрашивали Суданом черным по Лизону, Суданом III по Дадди (Конон-ский, 1976).

Из кусочков яичников, фиксированных в жидком азоте, в криостате получали срезы толщиной 10 мкм и в них, по прописям Пирса (1962) и Лилли (1969), выявляли активность дегидрогеназ сукцината (СДГ), лактата (ЛДГ), ни-котинамидадениндинуклеотидфосфата восстановленного (НАДНгДГ), никоти-намидадениидинуклеотидфосфата восстановленного щелочной и

кислой фосфатазы по Берстону в модификации Лойда и др. (1982).

Электронную микроскопию проводили по общепринятой методике. Материал фиксировали в охлажденном 2,5 % глютаральдегиде на фосфатном буфере с рН 7,3 с последующей дофиксацией 1% раствором осьмиевой кислоты на фосфатном буфере. Кусочки заливали эпон-аралдитной смесью. После получения и окраски полутонких срезов, блоки окончательно затачивали и готовили ультратонкие срезы на ультратоме LKB-III-8800A (Швеция), монтировали их на опорные сетки и контрастировали цитратом свинца по Е. Reynolds (1963). Просматривали на электронном микроскопе JEM-100CXII при увеличениях на 6000-27000.

В криостатных срезах материала, фиксированного в жидком азоте, изучали активность окислительно-восстановительных и гидролитических ферментов. Гистохимическую активность энзимов оценивали по В.В.Семеновой-Тян-Шанской и ЛАСайковой (1977) с использованием микроскопа МБР-3 (ок.7, об. 90), для чего в тубус микроскопа вставляли измерительный окуляр с сегкой, содержащей 16*16 квадратов (8*8 мм), и с ценой деления квадрата 0,5*0,5 мм. Сетку накладывали на различные участки срезов желтых тел, подсчитывали количество зерен продукта гистохимической реакции.

В поперечных срезах яичника, проходящих через весь орган вплоть до брыжейки, подсчитывали число лютеиновых образований, а также фолликулов с учетом их состояния. При этом использовали Международную гистологическую номенклатуру (1983) и классификацию овариальных фолликулов, предложенную Л. К. Эрнстом и др. (1980) с учетом особенностей ее приложения к гистологическим срезам. Количество гликогена, нуклеопротеидов, гликозами-ногликанов и липидов оценивали по балльной шкале.

Изучение морфологического проявления лютеолитической активности синтетического аналога простогландина Fzu (эстуфалан) было проведено на 24 коровах с использованием биопсии желтого тела яичника. 18-ти коровам опытной группы эстуфалан вводили однократно внутримышечно в дозах 250, 500 и 1000 мкг на восьмые-двенадцатые сутки полового цикла на фоне активно функционирующих желтых тел. Биопсию желтого тела яичника проводили двукратно через 48 часов (девять коров) и 96 часов (девять коров) после введения препарата. Коровам контрольной группы (шесть коров) вводили физиологический раствор и проводили биопсию желтого тела двукратно через 48 часов (три коровы) и 96 часов (три коровы).

Биопсию желтого тела яичника осуществляли следующим образом. Корову фиксировали. Место пункции, находящееся в области средней трети линии, соединяющей наружный бугор подвздошной кости с кожной подхвостовой складкой, выстригали и дезинфицировали. При исследовании правого яичника левую руку вводили в прямую кишку. Правой рукой делали укол иглой с манд-

реном перпендикулярно поверхности крупа. Иглу продвигали вглубь тканей настолько, чтобы ее конец можно было обнаружить пальцем через стенку прямой кишки. Затем захватывали яичник, оттягивали его каудально и несколько вверх, к своду тазовой полости, где находится конец иглы. Правой рукой иглу вводили глубже, извлекали мандрен и прокалывали желтое тело. При этом небольшая часть ткани остается в просвете иглы. Иглу извлекали, ее содержимое помещали в фиксатор или на предметное стекло. При проведении биопсии левого яичника пункцию проводили левой рукой, а яичник через прямую кишку фиксировали правой.

Количественные данные подвергали математической обработке с помощью прикладных программ на персональном компьютере с использованием критерия Стьюдента.

2.2 Результаты собственных исследований

2.2.1 Макроскопическая характеристика яичников стельных и бесплодных коров

Масса яичника, содержащего желтое тело, изменяется на протяжении беременности. К концу первого месяца стельности этот показатель достигал 12,1 гр., к двухмесячному возрасту достоверно увеличивался на 20,7 % (14,6 гр.), к трем месяцам достоверно снижается на «27,4 % (10,6 гр.), а дальнейшем оставался относительно стабильным (9,3 — 10,1 гр.). Масса яичника, не содержащего желтое тело, на протяжении стельности остается относительно одинаковой (5,3 -6,3гр.).

Изменяется величина желтого тела беременности. К двухмесячному возрасту диаметр желтого тела достоверно увеличивается на 39,2 % и достигает в среднем 28,4 мм. К трехмесячному возрасту этот показатель достоверно снижается на 18,7 % (23,1 мм) и в дальнейшем, несколько снижаясь, остается относительно стабильным (18,9-21,4 мм).

Желтые тела беременности располагаются преимущественно в правом яичнике. Их локализация соответствует расположению плода. К двум месяцам оно возвышается над поверхностью яичника, в центре имеется углубление, под капсулой хорошо выражены кровеносные сосуды. В более поздние сроки кровеносные сосуды видны не так ясно, и поверхность желтого тела становится более гладкой.

Форма яичников стельных коров бугристая вследствие наличия не только желтого тела, но и полостных фолликулов различной величины, выступающих над поверхностью органа. В яичнике с желтым телом число небольших полостных фолликулов диаметром до 10 мм достоверно снижается к двухмесячному возрасту на 44,8 % (8,2), когда желтое тело беременности достигает своего расцвета, в дальнейшем достоверно повышается на 75,6 % (14,4), достигая своего максимума к четырем месяцам (20,1). В дальнейшем снижается к шести месяцам стельности, оставаясь в дальнейшие сроки относительно стабильным (8,1 -12,3). Аналогичная закономерность изменения количества полостных фоллику-

лов диаметром до 10 мм выявлена в яичнике без желтого тела.

На протяжении первых шести месяцев беременности в яичниках можно обнаружить один — два крупных полостных фолликула диаметром более 10 мм. В более поздние сроки эти структуры обнаруживаются чрезвычайно редко.

Число красных тел в обоих яичниках достоверно не изменяется на протяжении беременности. Мы рассматриваем их как остатки желтых тел предыдущей беременности или половых циклов.

Число белых атретических тел, достоверно увеличивается к двум месяцам стельности, когда количество полостных фолликулов снижается. К трем месяцам этот показатель достоверно снижается, а число полостных фолликулов повышается. К четырем месяцам достоверно увеличивается и, снизившись к пяти месяцам, остается стабильным. В яичнике без желтого тела наблюдается такая же закономерность, однако менее выраженная.

У коровы во время полового цикла яичники представляют собой парные органы, лежащие в тазовой или брюшной полости близко к яйцепроводу и рогам матки. Они имеют овальную форму, массу 20-25 г, объем 21-25 см3, длину 5-9 см. В связи с тем, что значительная часть яичника образована временными структурами, такими как фолликулы и желтые тела, относительные его размеры меняются в течение цикла.

ГТерсистентные желтые тела на фоне субъинволюции матки характеризовались крупными размерами (20 — 25 мм в диаметре), выступают на поверхность яичника на 5 — 8 мм, грибовидные, с углублением в центре. Яичник, содержащий желтое тело, обычно бобовидной формы, достигает массы 10-11 гр., длины 35 - 40 мм, высоты 20 - 25 мм, толщины 15-30 мм. Он содержит много фолликулов — от едва заметных глазом, до достигающих величины красных и белых атретических тел. Парный яичник массой 6-8 гр., веретенообразной формы, также может содержать более мелкие желтые тела и фолликулы, достигающие 9 мм в диаметре.

Персистентные желтые тала в яичниках животных с хроническим эндометритом располагаются внутри овариальной железы и имеют меньший размер (10-15 мм в диаметре). На поверхность яичника выступают незначительно, без грибовидного возвышения. Яичник, содержащий персистентное желтое тело длиной 34 - мм, высотой 20 - мм, толщиной 18 - мм, массой 5 - 8 гр. содержит умеренное количество фолликулов, некоторые из которых достигают 10 мм в диаметре. Парный яичник массой 3—6 гр., бобовидной формы, длинной 30 — 35 мм, высотой 15-20 мм, толщиной 5-10 мм, не содержит желтые тела.

У животных с клиническим диагнозом гипофункция яичников после убоя овариальные железы были небольшого размера. Их длина колебалась в пределах от 3 до 4,5 см, ширина - от 1,5 до 2,5 см, высота — от 1,5 до 2,5 см, а объем варьировал в диапазоне от 9 до 28 см3.

2.2.2 Гистологические и гистохимические показатели желтых тел яичников крупного рогатого скота

Поверхность желтого тела беременности покрыто соединительнотканной оболочкой, от которой внутрь его отходят перегородки, содержащие кровеносные и лимфатические сосуды. При окраске по Ван Гизону фуксинофильных волокон не выявляли. Паренхима желтого тела беременности состоит, в основном, из крупных лютеиновых клеток с зернистой цитоплазмой, редко с небольшими вакуолями. В среднем диаметр, лютеоцитов равнялся 27,1±5,3 мкм. Ядро у них крупное, светлое, гетерохроматин располагается по периферии кариоплазмы. Его средний диаметр равен 10,1±1,2 мкм. Встречаются клетки очень крупных размеров, с одним крупным ядром или двумя ядрами. Реже встречаются клетки несколько меньшей величины с крупными вакуолями и небольшим гиперхромным ядром.

Аргирофильные волокна образуют в желтом теле сеточку, в ячейках которой располагаются лютеиновые клетки. По ходу этих волокон располагаются тека-лютеиновые клетки, они более мелкие, вытянутой формы с небольшими ядрами. Их средний диаметр равняется 11,9+2,3 мкм и существенно не отличается от величины этих клеток в желтом теле полового цикла. Величина ядра в среднем составляет 8,5+1,2 мкм в диаметре.

Гликоген выявляли только в капсуле и стенках кровеносных сосудов желтого тела. Рибонуклеопротеиды в цитоплазме крупных лютеиновых клеток содержатся в среднем количестве. Нейтральных жиров в паренхиматозных элементах мало. В крупных лютеиновых клетках они располагаются пылевидно, а в тека-лютеиновых — в виде капель средней величины. Фосфолипиды распределены в паренхиме желтого тела беременности равномерно, в виде мелких капель.

Желтое тело полового цикла достигает максимального расцвета на деся-тые-двенадцатые сутки полового цикла. Оно покрыто соединительнотканной капсулой, от которой к центру направляются тонкие прослойки, содержащие кровеносные и лимфатические сосуды. В середине желтого тела располагается "сердцевина" или "ядро", сформированное из волокнистой соединительной ткани. В единичных случаях в середине желтого тела полового цикла мы обнаруживали полость диаметром от нескольких миллиметров до одного сантиметра. В полости находится мутная тягучая жидкость, содержащая клетки крови и слущенный эпителий. Полость выстлана плоским эпителием и окружена волокнистой соединительной тканью. Фуксинофильных волокон при окраске по Ван Гизону в строме желтого тела полового цикла не выявлено.

Между прослойками соединительной ткани располагаются паренхима желтого тела, представленная крупными лютеиновыми клетками, со средним диаметром 24,2+2,8 мкм. Они имеют зернистую цитоплазму и светлое округлое ядро, расположенное в центре. Средний его диаметр равнялся 9,4+0,9 мкм. Хроматин в виде мелких гранул располагается по периферии ядра. В центре находится крупное ядрышко. Иногда встречаются крупные лютеоциты с вакуоли-зированной цитоплазмой, в которой выявлялись липиды. По сравнению с жел-

тым телом беременности гистограмма распределения диаметров гранулезо-лютеиновых клеток свидетельствует о том, что в последнем больше относительно крупных клеток, хотя по средним показателям разница не достоверна.

По ходу соединительнотканных трабекул и вокруг крупных лютеиновых клеток располагаются мелкие тека-лютеиновые клетки. В среднем их диаметр равнялся 12,1+1,7 мкм. Форма клеток вытянутая или полигональная. Ядра относительно крупные - 8,1 ±0,9 мкм в диаметре, более темные вследствие равномерного распределения гранул хроматина.

Клеточный состав в различных участках желтого тела полового цикла: по периферии преобладают мелкие лютеоциты, а ближе к центру крупные. По мере инволюции желтого тела, деструктивные изменения прежде всего обнаруживаются в крупных лютеиновых клетках. Они выражаются признаками белково-жировой дистрофии, пикнозом ядра или развитием апоптоза. Участки, где располагались крупные лютеиновые клетки, заполняются соединительной тканью. Характерно, что на этом фоне мелкие лютеоциты сохраняются длительное время без видимых изменений. В стреме появляются фуксинофильные коллагено-вые волокна, утолщаются стенки кровеносных сосудов.

Персистентные желтые тела имеют разную структуру и их можно разделить на два типа. У одних животных они состоят в основном из крупных клеток с темной эозинофильной вакуолизированной цитоплазмой. Соединительнотканные прослойки содержат мало фуксинофильных волокон. Характерно, что клетки располагаются неравномерно. В центре желтого тела группы клеток с пикнотизированными ядрами и темной эозинофильной цитоплазмой. Тека-лютеиновых клеток в этих участках относительно больше. По периферии люте-оцитов в состоянии жировой дистрофии меньше.

У других животных персистентные желтые тела имеют более толстую капсулу и соединительнотканные прослойки. Лютеиновые клетки сморщены и вокруг них образуются полости. Тека-лютеиновых клеток больше, и они содержат капли жира. Характерны выраженные фиброзные изменения кровеносных сосудов, накопление в их стенке кислых гликозаминогликанов, что свидетельствует о гиалинозе соединительной ткани. Тучные клетки многочисленны, гранулированы, в состоянии низкой морфофункциональной активности.

При гипофункции яичников структуры, напоминающие желтые тела, почти полностью состоят из грубоволокнистой, с участками гиалина, соединительной ткани и единично расположенными сморщенными лютеиновыми клетками. Кроме того, имелись структуры со своеобразным строением. Центр их заполнен грубоволокнистой соединительной тканью, волокна которой идут от белочной оболочки, и радиально отходящими от центра прослойками, между которыми располагаются сморщенные лютеиновые клетки.

В ферментном отношении более активными являются желтое тело беременности и циклическое желтое тело.

Проведенные исследования показали, что одной из причин симптоматического бесплодия коров является персистентное желтое тело яичника. Последнее по своим гистологическим, гистохимическим и гистоэнзиматическим свойствам отличается от желтого тела полового цикла и характеризуется атрофией и

жировой дистрофией лютеоцитов, нарастанием фиброзных изменений соединительной ткани и гиалинозом сосудов. Важную роль в этих процессах играет снижение активности окислительно-восстановительных и гидролитических ферментов, которое особенно ярко выражено в состоянии инволюции.

Для фолликулярных кист характерно не только лютеинизация отдельных участков стенки кист, но и наличие значительного количества лютеиновой ткани, расположенной в корковом веществе яичников и образованной вследствие лютеинизации крупных полостных фолликулов. Структура этой ткани имеет своеобразные черты, не обнаруживаемые при других состояниях яичника. Прежде всего, эти образования имеют сплющенную форму и располагаются между корковым веществом и кистой, что они происходят из лютеинизированных фолликулов, имевших полость, а не желтых тел возникающих в результате овуляции.

Гистологическая структура лютеиновой ткани характеризуется наличием хорошо сохранившихся крупных лютеиновых клеток диаметром в среднем 21,2±2,4 мкм. Они имеют вытянутую форму и крупные округлые светлые ядра. Лежат они в виде отдельных скоплений. В то же время мелких тека-лютеиновых клеток мало. Они заполнены пигментом и концентрируются преимущественно вокруг кровеносных сосудов и по ходу трабекул. Гистохимическая активность ферментов в этих структурах относительно высокая и приближается показателям в персистентных желтых тел.

2.2.3 Ультраструктурная характеристика желтых тел коров 2.2.3.1 Ультраструктурная характеристика желтых тел стельных коров

При ультраструктурном исследовании желтых тел коров двух месячной стельности (стадия расцвета желтых тел беременности) различали несколько типов лютеоцитов. Прежде всего, это крупные лютеиновые клетки. Они характеризуются следующими показателями: ядро крупное светлое, хроматин располагается по краям в виде глыбок, имеющих сетчатое строение, а также вокруг ядрышка. Иногда в ядрах можно обнаружить участки цитоплазмы, появляющиеся там в результате тангенциальных срезов инвагинаций, что свидетельствует об обширных контактах ядра и цитоплазмы. Ядерная мембрана имеет типичное строение и содержит большое количество пор.

Цитоплазма богата органеллами, имеющими характерное строение. Митохондрии в цитоплазме распределены относительно равномерно. В крупных лютеоцитах они чаще удлиненные, извитые или округлые, в зависимости от того, как прошел срез. На продольных срезах митохондрий их кристы обычно расположены перпендикулярно или под углом к внутренней митохондриальной мембране. Но иногда располагаются и параллельно ей. На поперечном срезе митохондриальные кристы расположены радиально. Кристы митохондрий, как правило, пластинчатого (ламеллярного) типа.

В цитоплазме достаточно много лизосомоподобных и плотных телец, которые располагаются по периферии клетки и контактируют с митохондриями и

эндоплазматическим ретикулумом. Последний образован мелкими округлыми пузырьками или небольшими уплощенными мешочками, наружная мембрана которых обычно не содержит рибосом. В то же время, цитоплазме крупных лю-теоцитов очень редко встречаются липосомы.

Между пузырьками эндоплазматического ретикулума и митохондриями располагаются группы свободных рибосом, образующих розетки. Количество таких групп в крупных лютеоцитах заметно большее, чем в других клетках. Ближе к ядру обычно располагаются узкие каналы гранулярного эндоплазматического ретикулума в виде локальных скоплений (эргастоплазма). Эти усыпанные рибосомами цистерны очень плотно упакованы и лежат параллельно друг другу.

Комплекс Гольджи крупных лютеоцитов хорошо развит и расположен вблизи ядра. Он представлен параллельно ориентированными ламеллами, небольшими вакуолями и микропузырьками, гладкими и окаймленными. Необходимо подчеркнуть, что комплекс Гольджи, в крупных лютеоцитах развит очень хорошо, часто встречается при просмотре ультратонких срезов. Вблизи комплекса Гольджи обнаруживается то большее, то меньшее количество плотных телец, имеющих различную форму и отграниченных четко выраженной однослойной мембраной. По своей ультраструктурной организации они соответствуют лизосомам. Иногда обнаруживаются вторичные лизосомы, образованные в результате слияния вакуолей с первичными лизосомами.

Вторая разновидность крупной лютеиновой клетки характеризуется наличием в цитоплазме липосом, часто контактирующих с гранулярным эндоплазматическим ретикулум. Ядро более темное. Митохондрий в цитоплазме меньше, они более мелкие, по форме чаще округлые или овальные. Локализуются в зонах, где отсутствуют липосомы. Групп свободных рибосом относительно мало. Комплекс Гольджи встречается реже, чем у предыдущего типа клеток. При этом, чем больше в клетке липосом, тем ярче выражены признаки низкой функциональной активности. Ближе к мембране клеток встречаются окаймленные пузырьки с «пушистой» оболочкой.

Третий тип клеток - тека-лютеиновые. Они характеризуются удлиненной формой. Ядро также удлиненное с выраженными инвагинациями и выпячиваниями. На некоторых срезах инвагинации напоминают внутриядерные включения. По периферии ядра хроматин расположен в виде относительно крупных глыбок, а в кариоплазме - он мелкогранулярный и пылевидный. Ядрышко располагается эксцентрично и имеет следующее строение: нуклеолонемная часть выражена хорошо, фибриллярные зоны невелики и не выделены в обособленные участки. Ядерная оболочка с хорошо выраженным трехслойным строением и многочисленными ядерными порами. Все это свидетельствует о высоком уровне синтеза белка.

Цитоплазма богата митохондриями, собранными группами у одного из полюсов ядра. Митохондрии округлые, овальные, мешковидные, реже - удлиненные. Их внутренняя структура характеризуется тем, что кристы обычно сконцентрированы в одной части органеллы. Они короткие и расположены перпендикулярно, под углом к внутренней митохондриальной мембране или

радиально. На поперечном срезе митохондриальные кристы расположены ра-диально. Кристы митохондрий, как правило, пластинчатого (ламеллярного) типа. Внутренняя часть крист светлая, а межкристное пространство темное, содержит пылевидную массу. В отдельных митохондриях обнаруживаются внут-римитохондриальные электронноплотные гранулы.

Между митохондриями и ядром располагаются профили гранулярного эндоплазматического ретикулума и хорошо развитого комплекса Гольджи. Между перечисленными органеллами располагаются округлые и вытянутые пузырьки гладкой эндоплазматической сети. Свободных рибосом мало. Характерно наличие единичных лизосом и электронноплотных телец.

Наружная плазматическая мембрана имеет глубокие впячивания и выросты, направленные в обширное межклеточное пространство, окружающее клетки. Часто с одной из сторон клеток идут нежные коллагеновые волокна и располагаются другие тека-лютеиновые клетки.

Частой находкой в строме желтых тел беременности являются малодиф-ференцированные клетки, фибробласты и макрофаги, расположенные в межклеточном веществе, содержащим многочисленные вакуоли и тельца различной электронной плотности.

Структуированные межклеточные контакты особенно выражены между крупными лютеоцитами и имеют вид простого контакта. При этом плазматические мембраны разделены пространством 15-20 нм. В некоторых участках устанавливали контакт в виде «замка», который представляет собой выпячивание поверхности плазматической мембраны одной клетки в инвагинат (впячивание) другой. На срезе такой тип соединения напоминает плотничий шов. Межмембранное (межклеточное пространство) и цитоплазма в зоне «замков» имеет те же характеристики, что и в зонах простого контакта.

Межклеточные контакты между крупными лютеоцитами и другими клетками простые, но с широкими межмембранными щелями (более 20 нм), содержащими межклеточное вещество, вакуоли и отростки, контактирующие между собой.

Между тека-лютеиновыми клетками эти пространства еще более широкие и менее электронноплотные. В них наряду с клеточными отростками можно обнаружить миелиноподобные тельцы, капли липидов, коллагеновые волокна.

Сосуды желтого тела беременности хорошо развиты. На полутонких срезах видно, что внутренняя оболочка артериол состоит из эндотелиальных клеток, для которых характерна выраженная неровность поверхности и выступающие в просвет сосуда.

При ультраструктурном исследовании кровеносных капилляров хорошо видно, что его стенка состоит из эндотелиальных клеток, образующими между собой стыки по типу «замка» и зоны слипания. Эндотелиальные клетки расположены на хорошо выраженной базальной мембране, контактирующей с отростками окружающих лютеоцитов, фибробластов, коллагеновыми волокнами и аморфным веществом, что свидетельствует о высокой проницаемости капилляра. Хорошо выражены фенестры. Ядра эндотелиальных клеток характеризуются крупными размерами относительно цитоплазмы. Примерно половина их

объема заполнена хроматином. Хроматин располагается по периферии ядра, а в центральной части он мелкодисперстный. Цитоплазма светлая. Органеллы немногочисленны и располагаются в околоядерной зоне.

Цитоплазматическая мембрана, расположенная внутри капилляра, покрыта слоем гликопротеидов (параплазмолеммальный слой) и образует хорошо выраженные «ворсинки» которые увеличивают поверхность эндотелия. Все это свидетельствует об интенсивном транспорте веществ через стенку капилляра. Кроме того, вдоль внутренней и наружной поверхностей эндотелиальных клеток располагаются пиноцитозные пузырьки, отображающие трансэндотелиаль-ный транспорт различных веществ и метаболитов.

Очень хорошо выражены цитоплазматические выросты. Наружная поверхность сосудов снабжена хорошо выраженными отростками, цитоплазма которых содержит свободные рибосомы, а на мембране ядра эндотелиоцита заметны инвагинации и выступы, многочисленными поры.

Строение капилляров желтого тела имеет органные особенности которые характеризуются наличием многочисленных и узких капилляров. На своей лю-минальной поверхности они несут большое число микроворсинок, разнообразных по величине и форме, которые в некоторых случаях образуют ундулирую-щие мембраны. Характерны выросты и на базальной поверхности, которые перфорируют межклеточный компонент базального слоя и вступают в контакт с клетками окружающей паренхимы. Капилляры можно отнести ко второму типу - фенестрированный тип с локальными истончениями (фестрами) цитоплазмы эндотелия, что характерно для органов с выраженной эндокринной активностью.

2.2.3.2 Ультраструктурная характеристика желтых тел полового никла

Изучали ультраструктурную характеристику желтых тел коров на восьмые — двенадцатые сутки полового цикла. Установили, что крупные лютеоциты содержат ядро с большим количеством хроматина. Последний расположен не только по периферии, но ив других частях ядра в виде глыбок. Ядро обычно несколько вытянутое. При этом ярко выражена инвагинации оболочки ядра, по сравнению с желтыми телами стельных коров. Ядрышко небольшое, расположено в центре ядра, с хорошо выраженными фибриллярной и гранулярной зонами.

В цитоплазме число митохондрий снижено, но они более крупные. Встречаются гипертрофированные митохондрии с аномальной внутренней структурой, содержащей крупные вакуоли и электронноплотные включения. Преобладают митохондрии округлой формы, реже — овальной или вытянутой. Внутренняя структура митохондрий несколько меняется. Появляется значительное число органелл с трубчатыми кристами с расширенными профилями и прозрачным содержимым.

Гладкий эндоплазматический ретикулум образован мелкими округлыми пузырьками или небольшими овальными мешочками, наружная мембрана которых не содержит рибосом. Характерно, что эти структуры очень хорошо раз-

виты в инвагинациях ядра. Между пузырьками эндоплазматического ретикулу-ма и митохондриями располагаются группы свободных рибосом, образующих розетки. Этих структур относительно много. Гранулярный эн'доплазматический ретикулум умеренно развит и представлен короткими профилями, расположенными в перинуклеарной зоне клетки.

Комплекс Гольджи крупных лютеоцитов хорошо развит и расположен вблизи ядра. Он представлен параллельно ориентированными плотно расположенными ламеллами с узкими профилями.

Число плотных телец, имеющих различную форму и отграниченных четко выраженной однослойной мембраной, значительное. Во всех клетках, но в разной степени распространенности встречаются липосомы и аутофагосомы.

Четкой дифференциации между крупными лютеоцитами с разной синтетической активностью нет. Различия выражены между функционирующими клетками и гибнущими, структура которых описана ниже.

Тека-лютеиновые клетки желтого тела полового цикла содержат ядро вытянутой формы с хроматином, расположенным по периферии. В других зонах клетки он менее конденсирован и лежит в виде мелких гранул или пылевидной зернистости. Ядрышко хорошо выражено, располагается эксцентрично. Ядерная оболочка с хорошо выраженным трехслойным строением и многочисленными ядерными порами.

Цитоплазма бедна митохондриями, которые собраны группами у одного из полюсов ядра. Но как и в случае с крупными лютеиновыми клетками они очень крупные, с трубчатыми кристами. Внутренняя часть крист светлая, а межкристное пространство темное, содержит пылевидную массу. В отдельных митохондриях обнаруживаются внутримитохондриальные электронноплотные гранулы.

Между митохондриями и ядром располагаются профили гранулярного эндоплазматического ретикулума. Комплекс Гольджи обнаруживается в виде расположенных в узкой части цитоплазмы диктиосом. Это удлиненные, плотно расположенные мембранные структуры, практически не имеющие прослойки гиалоплазмы. Гладкая эндоплазматическая сеть умеренно развита и представлена округлыми, чаще вытянутыми структурами. Свободных рибосом не много. Встречаются единичные лизосомы, электронноплотные телеца, липосомы.

Наружная плазматическая мембрана имеет неглубокие впячивания и выросты, направленные в расширенное межклеточное пространство.

Строма желтого тела полового цикла богата фибробластами, фиброцитами, малодифференцированными макрофагами. Последние содержат части гибнущих клеток и липиды.

В желтом теле полового цикла межклеточные контакты между крупными лютеоцитами имеют вид простого контакта с широкими пространствами. Это характерно и для взаимодействий лютеоцитов не только между собой, но и с другими клетками. В межклеточных пространствах содержатся межклеточное вещество, вакуоли и отростки, редко контактирующие между собой.

Между гибнущими клетками эти пространства еще более широкие и менее электронноплотные. В них наряду с клеточными отростками можно обна-

ружить миелиноподобные тельца, капли липидов, коллагеновые волокна, фрагменты мембран и ультраструктур.

Строма желтого тела полового цикла представлена более грубыми колла-геновыми волокнами, расположенными в виде плотных пучков, по ходу которых расположены фибробласты, фиброциты и малодифференцированные макрофаги.

Сосуды желтого тела полового цикла развиты. Но капилляры находятся в разном морфофункциональном состоянии. Одни из них сильно расширены, кровенаполнены, в некоторых участках разрушены. Фенестры выражены плохо. Ядра эндотелиальных клеток пикнотизированы, гиперхромные. Цитоплазма также темная. Органеллы малочисленны и представлены единичными митохондриями с темным матриксом, лизосомами и темными профилями эндоплаз-матической сети. Вокруг таких сосудов отмечается выраженный периваскуляр-ный отек.

Часть капилляров, напротив сужены до исчезновения внутреннего просвета. Рисунок микроворсинок сглажен и цитоплазма эндотелия практически не содержит пиноцитозных пузырьков. Выросты и на базальной поверхности эн-дотелиоцита отсутствуют, и межклеточный компонент базального слоя частично разрушен. В некоторых случаях, наряду с периваскулярным отеком, наблюдается контакты с макрофагами. Последние, вероятно, участвуют в разрушении базальной мембраны и стенки капилляра.

Можно описать механизмы лютеолизиса. Прежде всего, это упрошение межклеточных контактов с развитием широких пространств. Таким образом клетки изолируются друг от друга и не способны кооперироваться для выполнения своей функции. Не последнюю роль играет соединительная ткань, которая фиброзно изменяется, становится грубоволокнистой и приводит к атрофии паренхимы железы.

Несомненна роль в лютеолизисе нарушений циркуляции крови в регионе микроциркуляторного русла. Расширение или сужение сосудов, дистрофия, разрушение их стенок и базальной мембраны с последующим фагоцитозом, пе-риваскулярные отеки и нарушения реологических свойств крови, очевидно, является пусковым механизмом последующих атрофических, дистрофических процессов в паренхиме и фиброзных изменений стромы железы.

По нашим данным ранними признаками начавшейся гибели клетки являются: расширения цистерн эндоплазматической сети, отделение рибосом от мембран шероховатой эндоплазматической сети и диссоциация полисом в моносомы. В дальнейшем на поверхности клеток образуются выпячивания, содержащие только цитозоль, происходит потеря микроворсинок.

В цитоплазме клеток и вне их появляются миелиновые фигуры, формирующиеся из вещества цитоплазмы клеток и мембран органелл, наблюдается набухание митохондрий. Все эти описанные изменения обратимы. Необратимые изменения морфологически ассоциируются с выраженной вакуолизацией митохондрий и их крист, повреждением плазматических мембран и набуханием лизосом. Эти картины, наблюдающиеся преимущественно в крупных лютсино-вых клетках, описаны нами выше.

Наряду с этими изменениями, связанными с нарушениями микроцирку-ляторного русла, вызванного гормональными изменениями (простагландины и т.п.), мы наблюдали гибель клеток путем апоптоза.

При этом наиболее характерными признаками являются конденсация и фрагментация ядерного хроматина, а также сморщивание клетки с сохранением целостности органелл. В дальнейшем клетка распадается на апоптозные тельца, представляющие собой мембранные структуры с заключенными внутри органеллами и частицами ядра. Затем апоптозные тельца фагоцитируются и разрушаются при помощи лизосом окружающими клетками-макрофагами.

2.2.3.3 Ультраструктурная характеристика персистентных желтых тел

Крупные лютеиновые клетки персистентных желтых тел характеризуются небольшим ядром с глубокими и широкими инвагинациями, что придает ему своеобразное крупнолопастное строение. Хроматин расположен по периферии в виде крупных глыбок или заполняет почти всю кариоплазму. Ядрышки обнаруживаются редко и представлены преимущественно гранулярным компонентом. Поры в оболочке ядра обнаруживаются с трудом.

Цитоплазма содержит много жировых капель, представляющих собой нейтральные жиры. Митохондрии гиперплазированные, содержат вакуолизиро-ванные или разрушенные кристы, темные включения, иногда занимающие почти всю органеллу. Гладкий эндоплазматический ретикулум представлен расширенными профилями. Шероховатый эндоплазматический ретикулум не обнаруживается, а рибосомы в небольшом количестве располагаются в цитоплазме в виде небольших скоплений полисом.

Тека-лютеиновые клетки характеризуются вытянутой формой и эксцентрично расположенным ядром. Ядро неправильной формы, с небольшими инвагинациями, глыбками хроматина, расположенного по периферии, и мелкозернистой структурой в центральных зонах кариоплазмы. Ядрышко темное, представлено фибриллярным компонентом.

Цитоплазма содержит капли липидов темного цвета и более светлые лю-теосомы. Митохондрий немного, они располагаются по одной - две в участках цитоплазмы, не содержащей липиды. Митохондрии небольшого размера с трубчатыми или разрушенными кристами. Рядом с митохондриями располагаются единичные, короткие профили шероховатого эндоплазматического рети-кулума. В других участках цитоплазмы встречаются небольшие скопления полисом. Гладкий эндоплазматический ретикулум встречается в виде единичных округлых структур. Клеточная мембрана неровная, клетки располагаются на значительном расстоянии друг от друга.

Тека-лютеиновые клетки почти сплющенной формы, содержат вытянутое ядро с глубокими инвагинациями, узким ободком цитоплазмы бедной органел-лами и содержащей капли липидов.

Для персистентных желтых тел характерно обилие клеток соединительной ткани: фибробластов, фиброцитов, макрофагов различной степени диффе-

ренцировки. Между клетками формируются своеобразные взаимоотношения. С одной стороны, характерны широкие межклеточные пространства между крупными лютеоцитами. Тека-лютеиновые клетки имеют тенденцию близко располагаться к крупным лютеоцитам и образовывать с ними или другими текалю-теиновыми клетками в небольших участках цитоплазмы простые межклеточные контакты.

В персистентных желтых телах мы обнаружили ярко выраженную активность макрофагов. Макрофаги внедряются в разрушающуюся по типу липофа-нероза крупную лютеиновую клетку. У макрофага клеточная мембрана сохраняется, то у лютеиновой клетки она видна только в отдельных участках межклеточного взаимодействия.

Необходимо подчеркнуть, что гибель клеток в персистентных желтых телах развивается по типу дистрофии, а затем некроза. В начале отмечаются обратимые изменения органелл, в дальнейшем разрушение клеточных мембран, прежде всего у митохондрий, появление крупных капель нейтральных жиров. В дальнейшем развивается фокальный некроз цитоплазмы лютеоцитов, который заканчивается гибелью клетки с последующим фагоцитозом ее остатков макрофагами.

Строма персистентного желтого тела хорошо развита, рост соединительной ткани прогрессирует, в связи с чем ею заполняются пространства атрофирующих и гибнущих клеток. Она представлена активно синтезирующими фиброцитами и фибробластами, грубыми коллагеновыми волокнами и межклеточным веществом.

Ультраструктура микроциркуляторного русла свидетельствует о том, что кровоснабжение железы недостаточное. Капилляры спавшиеся, пустые или содержат единичные клетки крови. Ядра эндотелиоцитов темные, цитоплазма бедна органеллами и почти не содержит пиноцитозных пузырьков. Внутренняя поверхность сосуда без выраженных микроворсинок. Базальная мембрана в отдельных участках разрушена, вокруг капилляра отсутствуют клеточные элементы и развивается отек.

2.2.4 Экспериментальное изучение лютеолитических процессов

Ко вторым суткам после введения препарата в дозе 250 мкг в яичниках отмечаются процессы инволюции желтого тела, проявляющиеся появлением уплотненных пикнозных ядер лютеоцитов, в их цитоплазме образуется большое количество разнообразных по форме и объему вакуолей, которые при окраске суданами содержат фосфолипиды и нейтральные жиры. К четвертым суткам после введения препарата лизис лютеиновых клеток усиливается и у одного животного наступила инволюция функционирующих желтых тел, лютеини-зация и облитерационная атрезия крупных и средних фолликулов. В это же время активируется рост и созревание других фолликулов, в результате чего проявляется половая охота.

Препарат в дозе 500 мкг у коров вызывают более интенсивные процессы инволюции желтого тела, пикноз и лизис ядер, вакуолизацию цитоплазмы лю-

теиновых клгток. У всех животных желтые тела к четырех дневному сроку после введения препарата подвергаются лизису.

У коров указанный препарат в дозе 1000 мкг уже через двое суток после введения препарата вызывают глубокие литические процессы. В лютеиновых клетках, в теке и гранулезе третичных фолликулов, яйцеклетках и в интерсти-циальной ткани яичника наблюдается распад ядер и цитоплазмы. Это явление сопровождается выраженной сосудистой реакцией, гемостазом, инфильтрацией форменных элементов крови в окружающую ткань яичника, фолликулы. Вследствие этого лизис клеток желтых тел к этому времени завершается, стадия возбуждения полового цикла, сопровождающаяся лютеинизацией, геморрагической и кистозной атрезией крупных фолликулов.

Таким образом, большие дозы препарата (1000 мкг) наряду с чрезмерной активацией литических процессов в желтом теле вызывают и лизис текалютеи-новых клеток в сформированных фолликулах, что приводит к образованию кист, в связи с чем препарат в этих дозах не может быть рекомендован для вызывания инволюции желтых тел полового цикла.

Полученные данные указывают на то, что отечественный препарат эсту-фалан обладает лютеолитическим воздействием на лютеиновые структуры и ткани яичника у животных. Исходя из полученных данных, наиболее оптимальными дозами эстуфалана для коров являются 500 мкг.

Электронномикроскопически установили, что при использовании оптимальной дозы препарата (500 мкг) лютеолитические процессы в тканях желтого тела напоминают таковые желтых телах полового цикла, но с более выраженными дистрофическими процессами в лютеиновых клетках, активацией макрофагов, уничтожающих погибающие клетки. Это происходит вследствие развития анемии и ишемии сосудов железы. В тоже время фиброзные процессы в желтом теле выражены слабо, что приводит к быстрому рассасыванию желтого тела без его персистенции и образования лютеиновых рубцов.

1. Масса яичника, содержащего желтое тело беременности, увеличивается к двухмесячному сроку стельности, достигая в среднем 14,6±0,8 гр., снижается к трем месяцам стельности до 10,6±0,7 гр. и в дальнейшем этот показатель остается относительно стабильным. К двухмесячному сроку стельности диаметр желтого тела беременности увеличивается и достигает в среднем 28,4±3,1 мм (стадия расцвета), а к трем месяцам стельности этот показатель снижается до 23,1 ±1,2 мм (стадия уменьшения) и в дальнейшем, несколько уменьшаясь, остается относительно одинаковым (стадия стабилизации). В яичниках стельных коров на протяжении первых шести месяцев беременности обнаруживаются единичные полостные фолликулы диаметром более 1 см. Число полостных фолликулов диаметром до 1 см снижается к двухмесячному сроку беременности, в дальнейшем повышается, достигая своего максимума к четырем месяцам стельности, после чего снижается, достигая двухмесячного уровня. Число красных лютеиновых телец в обоих яичниках достоверно не изменяется на протя-

жении беременности. Число белых атретических телец увеличивается к двум месяцам стельности, когда количество полостных фолликулов снижается. К трем месяцам беременности этот показатель повышается, а к четырем месяцам достоверно увеличивается и, снизившись к пяти месяцам, остается стабильным.

2. На протяжении полового цикла происходят закономерные изменения макроскопических характеристик желтого тела. В первые десять суток полового цикла желтое тело увеличивается в размерах, формируются его строма и паренхима, васкуляризация (стадия формирования). На десятые-двенадцатые сутки полового цикла желтое тело достигает наибольшего развития (стадия максимально

Введение

. Обзор литературы

.1 Нейрогуморальная регуляция воспроизводительной функции у коров

.2 Классификация патологии яичников у коров

.3 Распространение гипофункции яичников у коров

.4 Этиология возникновения гипофункции яичников у коров

.5 Клинические признаки гипофункции яичников у коров

.6 Лечение при гипофункции яичников у коров

.7 Профилактика при гипофункции яичников у коров

. Состояние животноводства и анализ ветеринарного обслуживания хозяйства

. Безопасность жизнедеятельности в хозяйстве

. Экологическое обоснование работы

. Специальные исследования

.1 Материал и методы исследований

.2 Результаты исследования

.3 Экономическая эффективность результатов собственных исследований

.4 Анализ полученных данных

Выводы и предложения

Список использованных источников

Приложение

Введение

Одним из основных условий увеличения производства продукции молочного скотоводства является максимальное использование репродуктивного потенциала маточного поголовья крупного рогатого скота.

Ведущим фактором, сдерживающим интенсификацию воспроизводства стада, остается широкое распространение среди маточного поголовья гинекологической патологии, к которой относится и гипофункция яичников у коров.

По анатомической структуре весь организм самки, вся деятельность органов и тканей находятся в тесной функциональной связи с яичниками. Работа органов, нервной и эндокринной систем отражаются на морфологии и функции яичников. При расстройстве организма часто нарушается гормональная функция яичников и процесс формирования и созревания яйцеклеток. Это затрудняет установление конкретной причины бесплодия, а её надо искать иногда не в самом организме, не в самом аппарате, а в не организма, во внешней среде, которая сильно отражается на состоянии и функции яичников.

Данные многочисленных исследований свидетельствуют о том, что нарушение воспроизводительной способности у коров чаще всего наступает в результате погрешностей в кормлении, отсутствии или недостаточности моциона и неправильном лечении некоторых акушерских и гинекологических болезней. Все вышеперечисленные причины приводят к патологическим изменениям в яичниках и других отделах половой сферы.

Чаще всего эта патология проявляется в виде образования персистентных желтых тел (18,5 - 21,1%), кистозных поражений (3,9 - 4,7%), склероза яичников (3,8 - 6,5%), незначительную часть составляют воспаления и новообразования в них, большой процент приходится на гипофункцию яичников (31,7 - 40,8%).

Из вышеперечисленных заболеваний можно сделать вывод, что гипофункция яичников занимает значительное место среди всех болезней яичников. Она наносит огромный экономический ущерб. Из-за этого заболевания хозяйства недополучают большое количество продукции животноводства, приходится преждевременно выбраковывать животных, отправлять их на вынужденный убой как малопродуктивных, низким остается уровень выхода телят на 100 коров.

Поэтому ликвидация гинекологических заболеваний на комплексах и фермах, в том числе и гипофункции яичников у коров, является большим резервом увеличения производства мяса, молока, выхода полноценного приплода и других продуктов животноводства, повышения их качества.

Целью настоящей работы было испытание терапевтической эффективности препарата эстрофантина при гипофункции яичников у коров в сравнительном аспекте с массажем матки и яичников.