biohimiyа
.pdf3.Механизм действия гидрофильных гормонов.
4.Гормоны поджелудочной железы и их биологическая роль.
5.Гормоны щитовидной железы и их биологическая роль.
6.Гормоны надпочечников и их биологическая роль.
7.Половые гормоны и их биологическая роль.
Дата выполнения ________ Балл ____ Подпись преподавателя ____________
Экспериментальная работа.
Опыт 1. Влияние физической нагрузки на содержание глюкозы в крови.
Концентрация глюкозы в крови контролируется центральной нервной системой и железами внутренней секреции. Поэтому в здоровом организме возможны лишь кратковременные колебания уровня глюкозы в крови.
Приборы. 1. Штатив с пробирками.
2.Набор пипеток.
3.Скарификатор стерильный.
Реактивы. 1. Тест-набор для определения глюкозы.
1.У испытуемого (добровольца) возьмите из пальца 0,1 мл крови.
2.Определите количество глюкозы в крови при помощи тест-полосок.
3.Затем он выполняет физические упражнения (например, 50-60 приседаний), и через 15-20 минут у него снова возьмите 0,1 мл крови из пальца для анализа.
Сравните полученные результаты и объясните их.
Опыт 2. Качественная реакция на адреналин.
Метод основан на способности пирокатехиновой группировки адреналина образовывать с FeCl3 комплексное соединение изумрудно-зеленого цвета.
Приборы. 1. Штатив с пробирками.
2.Набор пипеток.
3.Стеклянная воронка.
4.Фильтр.
5.Ступка с пестиком.
6.Водяная баня.
Реактивы. 1. Поджелудочная железа, или 0,1%-ный раствор адреналина.
2.Хлорид железа (III), 1%-ный раствор.
3.Аммиак, концентрированный раствор.
Подготовка проб.
Надпочечники КРС или свиней измельчают и экстрагируют адреналин дистиллированной водой, подкисленной лимонной или щавелевой кислотой из расчета на 1 кг надпочечников
41
1,5 литра дистиллированной воды и 9-10 г кислоты. После двух часов экстракции массу подогревают до 90-95оС для коагуляции белков, которые отделяют фильтрованием или центрифугированием. Фильтрат или надосадочную жидкость используют для качественного определения адреналина.
1.В пробирку налейте 10 капель 0,1%-ного раствора адреналина и до-
бавьте 1 каплю 1%-ного раствора FeCl3. Наблюдайте за появлением характерного окрашивания.
2.Добавьте 1 каплю концентрированного раствора аммиака. Наблюдайте за изменением окрашивания.
Объясните полученные результаты. Какие биохимические процессы в организме запускает адреналин?
Опыт 3. Качественные реакции инсулина поджелудочной железы.
Приборы. 1. Штатив с пробирками.
2.Набор пипеток.
3.Стеклянная воронка.
4.Фильтр.
5.Ступка с пестиком.
6.Водяная баня.
Реактивы. 1. Поджелудочная железа.
2.Ацетон подкисленный.
3.Сульфат меди, 2%-ный раствор.
4.Гидроксид натрия, 10%-ный раствор.
5.Азотная кислота, концентрированная.
6.Ацетат свинца, 0,5%-ный раствор.
1.Свежую или замороженную поджелудочную железу КРС или свиней тщательно измельчите, и экстрагируйте подкисленным этанолом (ацетоном) (в соотношении 1:10) на холоде 10 минут.
2.Полученный экстракт профильтруйте.
3.С фильтратом проведите биуретовую реакцию, ксантопротеиновую реакцию, реакцию Фоля.
Биуретовая реакция.
В пробирку поместите 0,5 мл фильтрата. Добавьте 0,5 мл 10%-ного раствора гидроксида натрия, а затем 2-3 капли 2%-ного раствора сульфата меди (II). Красно-фиолетовое окрашивание свидетельствует о положительной реакции.
42
Ксантопротеиновая реакция.
В пробирку поместите 0,5 мл фильтрата. Добавьте 3 капли концентрированной азотной кислоты и нагрейте на кипящей водяной бане. Желтое окрашивание свидетельствует о положительной реакции.
Реакция Фоля.
В пробирку налейте 0,5 мл фильтрата. Добавьте равный 0,5 мл гидроксида натрия, нагрейте до кипения и прибавьте 1-2 капли 0,5%-ного раствора ацетата свинца. Потемнение раствора свидетельствует о положительной реакции.
На основании полученных результатов сделайте вывод о строении инсулина. На какие биохимические процессы и как влияет инсулин?
Задание 1. Заполните таблицу, обобщающую сведения о влиянии гормонов на обмен углеводов.
|
Место |
Хими- |
|
|
|
|
|
ческая |
|
|
Влияние на |
||
|
синте- |
|
Влияние на процессы об- |
|||
Название |
приро- |
Ткани- |
концентра- |
|||
за |
мена |
|||||
гормона |
да |
мишени |
цию глюкозы |
|||
гор- |
углеводов |
|||||
|
гормо- |
|
в крови |
|||
|
мона |
|
|
|||
|
на |
|
|
|
||
|
|
|
|
|
||
|
|
|
|
|
|
|
Инсулин |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
Адрена- |
|
|
|
|
|
|
лин |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
Глюкагон |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
Кортизол |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
Дата выполнения ________ Балл ____ Подпись преподавателя ____________
43
Занятие № 10. Коллоквиум I: «Уровни организации биогенных соединений. Ферменты. Витамины. Гормоны»
Цель занятия: осуществить рубежный контроль знаний.
ВОПРОСЫ К КОЛЛОКВИУМУ:
1.Охарактеризуйте наиболее важные биологические функции воды. Как эти функции связаны со строением молекулы воды?
2.Что такое рН растворов? Раскройте значение этого показателя для живых организмов.
3.Механизм действия буферных растворов.
4.Элементы-органогены. Влияние органогенов на свойства биогенных соединений.
5.Основные виды атомных группировок в составе биогенных соединений.
6.Биохимические функции минеральных субстратов. Макро-, и микроэлементы.
7.Биологические функции и классификация аминокислот.
8.Биологические функции и классификация пептидов.
9.Биологические функции и классификация белков.
10.Уровни организации белковых молекул. Механизм денатурации и ренатурации.
11.Изоэлектрическая точка и изоэлектрическое состояние аминокислот и белков. Физико-химические свойства аминокислот и белков.
12.Денатурация и факторы ее вызывающие.
13.Общие и отличительные свойства неорганического катализатора и фермента.
14.Чем обусловлена специфичность ферментов? Виды специфичности.
15.Методы определения и способы выражения активности ферментов.
16.Клиническое значение определения активности ферментов в биологических жидкостях.
17.Строение ферментов. Ферменты простые и сложные. Биологическое значение апофермента и кофермента.
18.Механизм ферментного катализа.
19.Биологические функции активного и аллостерического центров фермента.
20.Активаторы и ингибиторы ферментов, их биологическая роль. 21.Способы регулирования активности ферментов. 22.Мультиферментные комплексы, проферменты, изоферменты и их био-
химическое значение.
23.Классификация и номенклатура ферментов.
24.Витамины – как предшественники коферментов.
25.Витамины группы В и их биохимические функции.
26.Строение и биохимические функции витамина А.
44
27.Строение и биохимические функции витамина Д.
28.Строение и биохимические функции витамина Е.
29.Строение и биохимические функции витамина К.
30.Роль гормонов в регуляции метаболизма. Классификация гормонов по химическому строению и биологическим функциям.
31.Строение, механизм синтеза и биологическая роль эйкозаноидов. 32.Биохимическая роль вторичных мессенджеров при передаче гормо-
нального сигнала.
33.Механизм действия и передачи сигнала гормонов стероидной природы. 34.Механизм действия и передачи сигнала гормонов аминокислотной и
белковой природы.
35.Сравните действие на клетки гормонов липофильных и гидрофильных.
Дата выполнения ________ Балл ____ Подпись преподавателя ____________
Занятие № 11. «Обмен веществ и энергии»
Цель занятия: сформировать знания об основах биоэнергетики клетки, представление о макроэргах тканей (АТФ, креатинфосфат). Систематизировать знания об общих путях катаболизма в организме как основных источниках энергии для синтеза АТФ. Сформировать представление о роли кислорода в окислительных процессах.
ВОПРОСЫ К КОНТРОЛЬНОЙ РАБОТЕ:
1.Общая характеристика обмена веществ и энергии. Катаболизм и анаболизм. Сопряжение экзергонических и эндергонических реакций.
2.Высокоэнергетические биомолекулы и радикалы. Главные структурные особенности высокоэнергетических фосфатов: пирофосфат, ATФ, фосфоэфиры. Почему именно ATФ выбрана природой в качестве формы сохранения химической энергии в клетке?
3.Пути синтеза и расходования АТФ в организме животных.
4.Цепь переноса электронов (ЦПЭ). Строение: местоположение цепи; строение переносчиков электронов; расположение переносчиков электронов в цепи; факторы, влияющие на определенную направленность движения электронов по дыхательной цепи; назовите подвижные звенья дыхательной цепи.
5.Механизм синтеза АТФ АТФ-синтазой. Баланс между синтезом АТФ и транспортом электронов. От чего зависит коэффициент фосфорилирования (Р/О)?
6.Разобщение окислительного фосфорилирования. Факторы, вызывающие разобщение окисления с фосфорилированием. Биологическое значение этого процесса.
Дата выполнения ________ Балл ____ Подпись преподавателя ____________
45
Экспериментальная работа.
Опыт 1. Сопоставление окислительно-восстановительных потенциалов рибофлавина.
Приборы. 1. Штатив с пробирками. 2. Набор пипеток.
Реактивы. 1. Дистиллированная вода.
2.Рибофлавин, 0,025%-ный раствор.
3.Метиленовая синь, 0,01%-ный раствор.
4.Соляная кислота, концентрированная.
Для исследования окислительно-восстановительных потенциалов применяют индикаторы, имеющие свой цвет при определенном значении этого потенциала.
1.В пробирку с 1 мл воды добавьте 3 капли рибофлавина (0,025% раствор) и по каплям 0,01% раствор метиленового синего до появления синего или сине-зеленого окрашивания.
2.Внесите в пробирку кусочек цинка и 2-3 капли концентрированной НСl. Отметьте постепенное изменение окраски.
3.Бледно-желтую жидкость слейте в другую пробирку. Оцените цвет жидкости в пробирке через 10-15 минут.
Объясните наблюдаемые явления.
Опыт 2. Открытие активности альдегиддегидрогеназы в молоке.
Приборы. 1. Штатив с пробирками.
2.Набор пипеток.
3.Водяная баня.
4.Пробки.
Реактивы. 1. Молоко, кипяченое и некипяченое.
2.Формалин, 0,4%-ный раствор.
3.Метиленовая синь, 0,01%-ный раствор.
1.Налейте в пробирки по 3 мл молока из пронумерованных колбочек соответственно (в одной из них молоко кипяченое, в другой нет).
46
2.В обе пробирки внесите 6 капель 0,4%-ного раствора формальдегида и несколько капель 0,01%-ного раствора метиленовой сини (до появления голубого окрашивания).
3.Пробирки встряхните и быстро закройте пробками для того, чтобы создать относительно анаэробные условия.
4.Поместите пробирки в водяную баню (37оС) и отметьте постепенное обесцвечивание метиленовой сини через 5-10 минут (в зависимости от активности фермента) в одной из пробирок.
5.После обесцвечивания содержимое пробирки несколько раз встряхните и наблюдайте за изменением цвета.
Определите, в какой пробирке содержалось некипяченое молоко? Объясните, почему Вы сделали такой вывод? Почему после встряхивания обесцвеченной пробирки произошло изменение цвета?
Опыт 3. Качественное определение креатинина.
Приборы. 1. Штатив с пробирками.
2.Набор пипеток.
3.Газовая горелка.
4.Держатели для пробирок.
Реактивы. 1. Мышечная ткань.
2.Пикриновая кислота, насыщенный раствор.
3.Гидроксид натрия, 10%-ный раствор.
1.К 1-2 мл фильтрата мышечной ткани, свободного от белков1, добавьте
1Приготовление мышечного экстракта.
1.На технических весах взвесьте 10 г мышечной ткани мяса.
2.Отмерьте 50 мл охлажденного 0,04 М раствора никотинамида и залейте им взятую навеску. Затем мышцы из-
мельчите ножницами, добавьте кварцевый песок, разотрите в ступке до получения гомогенной массы и экстрагируйте 30-40 мин.
3.После этого полученный экстракт перенесите в центрифужные пробирки и центрифугируйте при 3000 об/мин в течение 10 мин.
Получение безбелкового фильтрата.
1.3 мл мышечного экстракта (см. выше) внесите в центрифужную пробирку и добавьте осторожно (!) такое же количество 5%-ного раствора трихлоруксусной кислоты (ТХУ). При наличии белка раствор мутнеет.
2.Центрифугируйте при 3000 об/мин в течение 5 мин. Белок при этом осаждается.
3.Надосадочную жидкость (безбелковый фильтрат, он должен быть прозрачным!) используйте в опыте.
47
3 капли насыщенного раствора пикриновой кислоты (ядовита!).
2.Проведите подщелачивание раствора добавлением нескольких капель 10%-ного гидроксида натрия. Через несколько минут появляется оран- жево-красная окраска. Температура ускоряет реакцию.
3.Проделайте опыт с фильтратами красных и белых мышечных волокон.
4.Сделайте вывод о содержании креатинина в разных мышцах и причинах, обуславливающих это различие.
Задание 1. Заполните таблицу:
Ком- |
|
Участвует ли в |
|
|
|
||
плекс |
|
переносе: |
Кофермент |
Акцептор |
Донор |
||
дыха- |
Название комплекса |
элек- |
про- |
||||
(название) |
электронов |
электронов |
|||||
тельной |
|
тронов |
тонов |
||||
|
|
|
|
||||
цепи |
|
|
|
|
|
|
|
I |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
II |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
III |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
IV |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
V |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
Дата выполнения ________ Балл ____ Подпись преподавателя ____________
Занятие № 12. «Цикл трикарбоновых кислот»
Цель занятия: изучить механизм некоторых реакций цикла Кребса. Освоить метод количественного определения пировиноградной кислоты в моче.
ВОПРОСЫ К КОНТРОЛЬНОЙ РАБОТЕ:
48
1.Окислительное декарбоксилирование пирувата как предварительный этап цикла лимонной кислоты. Перечислите витамины и коферменты, задействованные в этом процессе.
2.Реакции цикла лимонной кислоты. Что определяет общее направление реакций в цикле? В какой части клетки протекает этот процесс? Почему?
3.Какие коферменты и витамины участвуют в цикле Кребса? Объясните, как они работают, с указанием конкретных реакций.
4.Расскажите о реакциях цикла Кребса, в результате которых образуются НAДH2 и ФAДН2. Какова дальнейшая судьба этих соединений?
5.Функции цикла трикарбоновых кислот. Объясните, какое значение для цикла лимонной кислоты имеет анаплеротическая реакция?
6.Энергетический выход цикла трикарбоновых кислот. Сколько молекул ATФ образуется в ходе оборота через цикл одной молекулы лимонной кислоты? Все ли молекулы ATФ, образующиеся при полном окислении активного ацетила, синтезируются путем окислительного фосфорилирования. Как регулируется скорость цикла?
Дата выполнения ________ Балл ____ Подпись преподавателя ____________
Экспериментальная работа.
Одним из методов количественного анализа в биохимии является фотокалориметрия. Метод основан на измерении оптической плотности окрашенных растворов, которые получают при взаимодействии субстрата с различными химическими агентами. Концентрация субстрата пропорциональна степени окрашивания раствора.
Перед началом лабораторных опытов ознакомьтесь с устройством КФК и правилами работы на нем.
Опыт 1. Определение концентрации пировиноградной кислоты (ПВК) в моче.
Приборы. 1. Штатив с пробирками.
2.Набор пипеток.
3.Фотоколориметр.
4.Кюветы, 0,5 см.
Реактивы. 1. Дистиллированная вода.
2.Моча.
3.Гидроксид натрия, 10%-ный раствор.
4.2,4-динитрофенилгидразин, раствор.
ПВК крови конденсируется с 2,4-динитрофинилгидразином с образованием гидразона, который в щелочной среде дает коричнево-красный цвет раствора. По интенсивности его окраски судят о содержании ПВК.
1. В три пробирки внесите реактивы согласно следующей таблице:
49
Раствор |
Опытная |
Калибровочная |
Контрольная |
|
проба, мл |
проба, мл |
проба, мл |
||
|
||||
Исследуемый образец |
2 |
- |
- |
|
Калибр. раствор пирувата* |
- |
2 |
- |
|
Дистиллированная вода |
- |
- |
2 |
|
2,4-динитрофенилгидразин |
0,8 |
0,8 |
0,8 |
2.Содержимое пробирок на 15 мин поместите в темное место при комнатной температуре.
3.В каждую пробирку внесите по 1 мл 10%-го раствора NаOH и через пять минут измерьте оптическую плотность при длине волны 620 нм опытной пробы против контрольной (О) и калибровочной пробы против контрольной (К).
4.Расчет проведите по следующей формуле:
Концентрация ПВК = |
О |
2ммоль |
|
|
л |
||
|
К |
||
|
|
5. Расчет проведите и по готовому калибровочному графику.
Калибровочный график зависимости величины оптической плотности раствора (D) от концентрации ПВК в пробе.
Расчет содержания ПВК в суточной моче (на диурез 1500 мл):
мкгПВК 1500
1000 |
= мг/сутки |
Для пересчета содержания ПВК (в мг) в единицы количества вещества (мкмоль) надо умножить соответствующие величины на 11,4 (коэффициент пересчета).
Норма для человека: 10-25 мг/сутки или 114-284 мкмоль/сутки пировиноградной кислоты.
50