- •Г. Мозырь, 2007 – 2008 уч. Г. Составляющие учебно-методического комплекса практического занятия по теме: «Ферменты. Выявление влияния рН среды на активность ферментов».
- •Выписка из учебной программы.
- •Раздел 2: обмен веществ.
- •Тема 2.1. Ферменты.
- •Практическое занятие № 25 – 4 часа.
- •Карта внутри- и межпредметных связей.
- •Учебно-методическое обеспечение занятия. Оборудование и реактивы. Биологическая жидкость.
- •Учебно-методическое обоснование темы.
- •Цели и результаты обучения по уровням усвоения учебного материала (выписка из рабочей учебной программы)
- •Приложение № 2. Формирование новых понятий, умений, навыков.
- •2.1. Вводное слово преподавателя.
- •Изучение инструкции.
- •Закрепить теоретические знания по теме «Ферменты».
- •Структура занятия.
- •Теоретическая часть:
- •Вводное слово преподавателя.
- •2. Указания к занятию:
- •3. Практическая часть.
- •Ход определения.
- •4.1.Самостоятельная работа – проведение опыта.
- •4.2. Учет результатов. Вывод.
- •5.1. Фронтальный опрос.
- •Приложение № 6. Домашнее задание.
- •Приложение № 7. Список литературы для преподавателя и для учащихся. Для учащихся:
- •Для преподавателя:
- •Приложение № 8.
- •8.1. Методические указания. Рекомендации.
- •Приложение № 9. Основные знания и умения учащихся.
- •9.1. Изучив тему, учащиеся должны знать:
- •Закрепить теоретические знания по теме «Ферменты».
- •Структура занятия.
- •1. Теоретическая часть:
- •Вводное слово преподавателя.
- •2. Указания к занятию:
- •3. Практическая часть.
- •Ход определения.
- •4. Закрепление знаний, умений учащихся.
- •5. Контроль знаний, умений.
- •5.1. Фронтальный опрос.
- •По теме «ферменты. Выявление влияния рН среды на активность ферментов».
-
Закрепить теоретические знания по теме «Ферменты».
-
Провести опыты, доказывающие влияние рН среды на скорость ферментативной реакции.
Исходный уровень знаний и умений.
Учащийся должен знать:
-
Химическую природу ферментов, их биологическую роль.
-
Специфичность действия ферментов.
-
Активность ферментов, способы её выражения, клиническое значение её определения.
-
Влияние рН среды, температуры, концентрации субстрата и количества фермента на активность ферментов.
Учащийся должен уметь:
-
Приготовить реактивы для проведения опытов.
-
проводить ферментативные исследования согласно предложенной методике.
-
Производить интерпретацию результатов.
Структура занятия.
1. Теоретическая часть:
-
Повторение теоретического материала по теме «Ферменты».
-
Вводное слово преподавателя.
Каждый фермент проявляет свою максимальную активность только при определенном значении рН среды: пепсин – 1,0-1,5; трипсин – 7,0-8,0; амилаза слюны – 6,8-7,4. Отклонение рН от оптимальной величины вызывает понижение активности фермента и снижение скорости реакции, а при значительном изменении реакции среды фермент инактивируется.
Целью предлагаемой работы является проведение реакций, доказывающих влияние рН среды на активность ферментов. Это связано с тем, что в образовании фермент-субстратного комплекса участвуют электростатические связи, которые образуются между противоположно заряженными функциональными группами субстрата и активного центра фермента. Такие заряды возникают только при определенном значении рН, которое называется оптимальным. При изменении рН меняются и заряды этих групп и не происходит взаимодействия субстрата с ферментом.
2. Указания к занятию:
-
Подготовить рабочее место.
-
Соблюдать технику безопасности в работе.
-
Приготовить необходимые реактивы, раствор слюны согласно предложенной методике.
-
Использовать в работе резиновые груши с переходником.
-
Использовать моющие средства для мытья использованной посуды.
3. Практическая часть.
-
Лабораторная работа № 1. Выявление влияния рН среды на активность ферментов.
ОПЫТ 1: Влияние рН среды на активность ферментов.
ПРИНЦИП: Для амилазы слюны оптимальное значение рН среды – 6,8. В кислой и щелочной среде активность её снижается и расщепление крахмала происходит не полностью, до стадии декстринов, которые с раствором йода дают красно-фиолетовую или красно-бурую окраску.
Реактивы: 1% раствор крахмала; дистиллированная вода; 0,2% раствор НС1; слюна – раствор, разведенный в 10 раз; 1% раствор йода.
Ход определения.
В 8 пронумерованных пробирок наливают по 1 мл дистиллированной воды.
В 1-ю пробирку вносят 1 мл раствора соляной кислоты, перемешивают (рН 5,8).
Во 2-ю пробирку вносят 1 мл смеси из 1-ой пробирки, перемешивают (рН 6,2).
Во 3-ю пробирку вносят 1 мл смеси из 2-ой пробирки, перемешивают (рН 6,6).
Во 4-ю пробирку вносят 1 мл смеси из 3-ой пробирки, перемешивают (рН 6,8).
Во 5-ю пробирку вносят 1 мл смеси из 4-ой пробирки, перемешивают (рН 7,0).
Во 6-ю пробирку вносят 1 мл смеси из 5-ой пробирки, перемешивают (рН 7,4).
Во 7-ю пробирку вносят 1 мл смеси из 6-ой пробирки, перемешивают (рН 7,8).
Во 8-ю пробирку вносят 1 мл смеси из 7-ой пробирки, перемешивают.
После этого в каждую пробирку добавляют по 2 мл крахмала и по 1 мл раствора слюны. Пробирки встряхивают и помещают в термостат на 15 минут при 37°С. Затем через 5 минут из 4-ой пробирки берут каплю смеси и добавляют в заранее приготовленную пробирку с 2 мл воды и каплей 1% раствора йода. Эту реакцию повторяют до тех пор, пока в капельной пробе не будет получено желтое или красно-желтое окрашивание (т.е. произойдет полное расщепление крахмала). После этого во все опытные пробирки прибавляют по 1 капле 1% раствора йода. Содержимое пробирок перемешивают. Наблюдают различное окрашивание смесей в соответствии с глубиной ферментативного гидролиза крахмала. Устанавливают, при каком значении рН произошло наиболее полное расщепление крахмала (оптимум рН).