Правила работы с паровыми стерилизаторами следующие.

1. Перед началом стерилизации проверить исправность манометров, упругость резиновой прокладки, герметичность крепления крышки стерилизационной камеры.

2. Наполнить котелок водой через воронку до уровня отметки на кожухе водомерной трубки и закрыть верхний кран водоуказательной колонки.

3. Загрузить материалы в стерилизационную камеру и плотно закрыть крышку стерилизатора.

4. Закрыть спускной кран и выключить нагревательную систему.

5. После достижения давления пара в котле 2,0±0,2 кгс/см открыть спускной кран, а затем вентиль патрубка, соединяющего котелок со стерилизационной камерой. Появление из крана непрерывной струи пара считать началом продувки (вытеснение воздуха из стерилизационной камеры), которая должна продолжаться не менее 30 мин.

6. Закрыть спускной кран и довести давление в стерилизационной камере до нужного уровня, учитывая соотношение показания манометра и температуры кипения воды (табл. 1)

7. Окончив стерилизацию, выключить электрический подогрев и закрыть кран на патрубке.

8. Открыть спускной кран и постепенно выпустить пар из стерилизационной камеры в сосуд с водой.

9. После снижения давления в стерилизационной камере до 0 открыть крышку стерилизатора и приступить к ее разгрузке; при открытии крышки ранее указанного срока стерилизуемая жидкость вскипает и может вытолкнуть пробки из сосудов вследствие быстрого падения давления.

Таблица 1 Соотношение показаний манометра и температуры кипения воды
Показания манометра, кгс/см2	Температура кипения воды, °С	Показания манометра, кгс/см2	Температура кипения воды, °С
0	100	0,7	116
0,2	105	0,8	117
0,4	110	1	121
0,5	112	1,5	127
0,6	114	2	134

Питательные среды, перевязочные материалы и белье стерилизуют при 1 кгс/см в течение 15-20 мин, питательные среды с углеводами - при 0,5 кгс/см в течение 15 мин, а патогенный материал обеззараживают при 1,5-2 кгс/см.

Контроль режима стерилизации осуществляется с помощью химических термотестов и искусственных биотестов.

Химические термотесты представляют собой вещества, изменяющие свои цвет или физическое состояние при стерилизации, в частности, имеющие различную температуру плавления (табл. 2).

Запаянные ампулы с порошком, смешанным с краской, помещают в стерилизационную камеру. При достижении в камере определенной температуры порошок плавится, образуя сплав, окрашенный в цвет добавленной краски.

Таблица 2 Показатели температуры плавления порошков-индикаторов *
Название химического вещества-индикатора	Температура плавления °С	Название химического вещества-индикатора	Температура плавления °С
Бензонафтол	110	Резорцин чистый	118
Антипирин	115	Беизойная кислота	121
Серный цвет	115
На 100 г порошка индикатора прибавляют 0,01 сафранина. 0,005 г фуксина или метиленовой сини.

1. Бактериологический контроль работы стерилизаторов проводят после монтажа и ремонта аппаратуры, а также в процессе его эксплуатации (плановый - 1 раз в месяц и при получении неудовлетворительных результатов контроля).

Контроль эффективности работы стерилизаторов осуществляется бактериологическим методом, используя биотесты на основании гибели спор тест-культуры.

Биотесты представляют собой флаконы из стеклянной трубки для лекарственных средств ФИ/1-5НС 1 ТУ 64-0709-10-88 (инсулиновые флаконы) или чашечки из алюминиевой фольги (диск размером 14 мм с луночкой -вдавление от неоточенного края карандаша), содержащие высушенные споры тест-культуры Вас. Stearothermophilus BKM В-718, помешенные в пакеты из упаковочной бумаги (ОСТ 42-21- 2-85). Упакованные тесты нумеруют и раз­мещают в контрольные точки паровых стерилизаторов (5-10 тестов). По окончании стерилизации биотесты подвергают бактериологическому исследованию.

2. Штамм Вас. Stearothermophilus BKM B-7I8 - подвижная термофильная палочка, по Граму окрашивается положительно, культивируется при t 55 ± 1°С, исключающей развитие других широко распространенных микроорганизмов.

Споры овальные, расположенные центрально. На мясопептонном бульоне (рН 7,3±0,1) через 24 часа образует помутнение среды, на мясо-пептониом агаре (рН 7,3±0,1) - слабо выпуклые колонии диаметром 2-4 мм с ровным краем. Штамм непатогенен для человека и животных.

3. Приготовление биотеста.

В ампулу с лиофилизированнной культурой вносят 0,2 мл стерильной водопроводной воды и оставляют в течение 30 минут при комнатной температуре. 1-2 капли культуры засевают в 2 пробирки с бульоном (МПБ. Хоттингера, питательный сухой) с 0,5 % глюкозы. Суточную бульонную культуру засевают в пробирки на скошенный агар (Хоттингера, мясопептонный, сухой питательный), Для получения спор культуру, выращенную на твердой питательной среде, смывают 5 мл стерильной водопроводной воды и переносят во флаконы со скошенным картофельно-пептонным агаром. Взвесь покачиванием флакона равномерно распределяют по поверхности среды, инкубируют при 55 С в течение 10-12 суток в наклонном положении агаром вверх. Для создания достаточной влажности в термостат помещают открытые емкости с водой. На 7, 10 и 12 сутки проверяют интенсивность спорообразования. Достаточным количеством считают 80-90 спор в поле зрения. Культуру смывают стерильной дистиллированной водой. С целью освобождения от вегетативных клеток суспензию прогревают в водяной бане при температуре 65-70˚С в течение 30 минут, центрифугируют трехкратно с частотой вращения 2000 об/мин, по 15 минут, промывая осадок стерильной дистиллированной водой после каждого центрифугирования, отмытые споры суспензируют в стерильной дистиллированной воде в соотношении 1:1 по объему. Суспензию спор хранят в холодильнике при температуре 4°С в стерильных пробирках, закрытых ватно-марлевыми пробками с резиновыми колпачками (срок хранения 2года). Чистоту культуры на всех этапах культивирования контролируют высевом на агаровые пластинки. Для определения титра жизнеспособных спор 0,1 мл исходной суспензии десятикратно разводят до 10⁷ стерильной дистиллированной водой, высевая на три агаровые пластинки по 0,1 мл ориентировочно из 10⁵-10⁷ (предел разведения зависит от титра полученных спор). Посевы инкубируют в течение 48 часов, проводят подсчет выросших колоний. Титр жизнеспособных спор в исходной суспензии определяют как среднее арифметическое число колоний с учетом разведения исходной суспензии и объема пробы для посева.

Пример расчетов. Предположим, что при посеве на 3 чашки Петри с агаром суспензии в разведении 1: 100000 (10⁵), подсчитано 140, 110 и 134 колонии. Аналогичные высевы из разведений 10⁶ привели к образованию 12, 14 и 16 колоний; из 10⁷ - 5, 3 и 7 колоний. Вычисляем общее число колоний, а затем среднее количество колоний для каждого разведения 128, 14 и 5.

Из расчета посевной дозы (0,1 мл на каждую чашку) вычисляем титры жизнеспособных спор в 1 мл исходной суспензии с учетом разведения, далее находим среднее арифметическое число колоний:

128х10х10⁵ = 12,8х10⁷;

14х10х10⁶ = 14.0х10⁷;

5х10х 10⁷ = 50,0х10 ⁷.

Таким образом, титр исходной суспензии составит (12,8+14,0 +50,0)х10⁷: 3 = 2,5х10⁸спор в 1 мл. Исходная суспензия должна содержать не менее 2,5х10⁷-2,5х10⁸ спор в 1 мл.

Споры в количестве 5х10⁵-5х10⁶ вносят из исходной суспензии с помощью дозатора пипеточного (ТУ 64-1-3329 - 81) по 0,02 мл в носители (стерильные инсулиновые флакончики с ватно-марлевой пробкой или чашечки из алюминиевой фольги, разложенные в чашки Петри), подсушивают в термостате при температуре 37°С или в эксикаторе над осушителем (силикогель, хлористый кальций) при комнатной температуре в течение 24 часов.

Для определения фактической обсемененности исследуют не менее 3 биотестов от каждой группы. Во флаконы (чашечки) вносят по 1,0 мл стерильной дистиллированной воды (чашечки из алюминиевой фольги отмывают в широкогорлых пробирках с бусами в 10,0 мл) и встряхивают в течение 10 минут на аппарате для встряхивания жидкостей с последующим высевом на 3 агаровые пластинки по 0,1мл суспензии из 3 последовательных 10-кратных разведений.