- •Вопрос №1 «история вирусологии. Роль вирусов в инфекционной патологии животных человека».
- •Вопрос №2 «предмет и задачи общей и частной ветеринарной вирусологии. История открытия вирусов. Достижения отечественной вирусологии».
- •Вопрос №3 «принципы современной классификации вирусов, основные группы вирусов».
- •Вопрос №4 «химически состав и физическая структура вирусов. Понятие о вирионе, капсиде, капсомере. Тип симметрии.
- •Химический состав вирусов.
- •Особенности вирусных белков:
- •Вопрос №5 «устойчивость вирусов к физико-химическим факторам. Практическое испольование этих свойств».
- •Вопрос №6 «вирусные нуклеиновые кислоты. Их разновидности, структуры, основные свойства.
- •1.Линейная односпиральная.2.Линейная фрагментированная.3.Кольцевая односпиральная.5.Линейная двуспиральная фрагментированная.
- •Вопрос №7 «белки вирусов, их особенности (характеристика свойств нейраминидаз и антигенов миксовирусов)».
- •Вопрос №8 «периоды и этапы репродукции вирусов. Типы взаимодействия».
- •Вопрос №9 «особенности биосинтеза днк-содержащих вирусов. Понятие транскрипции и трансляции».
- •Вопрос №10 «типы взаимодействия, основные исходы взаимодействия вируса с клеткой».
- •Вопрос №13 «правила взятия патматериала от больных и павших животных при подозрении на вирусные болезни. Транспортировка и подготовка его для вирусологических исследований.
- •Вопрос №14 «методы консервирования вирусов и их практическое значение».
- •Вопрос №15 «правила работы в вирусологической лаборатории. Техника безопастности при работе с вирусосодержащим материалом».
- •Вопрос №16 «схема лабораторной диагностики вирусных инфекций».
- •Вопрос №17 «клинико-эпизоотологическая диагностика вирусных болезней животных, сущность, значение».
- •Вопрос №18 «методы обнаружения вируса в патматериале».
- •Вопрос №23, 25 «ртга и ее использование в вирусологии. Достоинства и недостатки».
- •Вопрос №26 «рдп. Иммунологическая основа меода, постановка и учет результатов. Достоинства и недостатки».
- •Вопрос №27 «рск. Иммунологическая основа и характеристика компонентов реакции».
- •Вопрос №28 «титр вирусов и принципы его определения в единицах 50%-ого инфекционного действия».
- •Вопрос №29 «биологическая характеристика вируса ящура. Принцип диагностики»
- •Вопрос №32 «современная классификация иммунитета. Структура ат характеристика различных классов иммуноглобулинов и их строение».
- •Вопрос №33 «особенности противовирусного иммунитета».
- •Вопрос №34 «роль лимфоидных клеток в противовирусном иммунитете (характеристика т и в лимфоцитов)».
- •Вопрос №35 «роль клеточных факторов в противовирусном иммунтитете».
- •Вопрос №36 «роль гуморальных факторов в противовирусном иммунитете»
- •Вопрос №37 «противовирусные ат, их свойства, биологическая роль, методы обнаружения и титрования».
- •Вопрос №38 «интерферон и его роль в противовирусном иммунитете».
- •Вопрос №39 «принцип получения бактериофагов. Определение активности и практическое использование фагов».
- •Вопрос №40 «пассивная специфическая профилактика вирусных болезенй. Принцип получения».
- •Вопрос №41 «специфическая профилактика вирусных болезней. Виды вакцин и методы их введения».
- •Вопрос №42 «инактивированные противовирусные вакцины, их получение, свойства, применение, отличие от живых вакцин».
- •Вопрос №43 «факторы противовирусного иммунитета, их характеристика».
- •Вопрос №44 «живые противовирусные вакцины, их свойства, применение и отличия от инактивированных вакцин».
- •Вопрос №45 «бактериофаги, их значение и основные свойства».
- •Вопрос №46 «лабораторыне животные, цели и методы их использования в вирусологии».
- •Вопрос №47 «строение развивающегося куриного эмбриона. Основные задачи, решаемые методом заражения кэ и его преимущества перед культивированием вирусов на лабораторных животных.
- •Вопрос №48 «виды культур клеток и их использование в вирусологии. Краткая характеристика каждого вида».
- •Вопрос №49 « первично-трипсинизированные культуры клеток. Их достоинсва и недостатки. Применение в вирусологических исследованиях».
- •Вопрос №50 «питательные среды и растворы, используемые в вирусовлогии. Требования к посуде для культивирования кк, ее обработка».
- •Вопрос №51 «принцип заражения культур клеток вируссодержащим материалом. Индикация вирусов в культуре клеток».
- •Вопрос №52 «методы обнаружения вирионов вирусов и вирусных телец-включений, их практическе значение».
Вопрос №23, 25 «ртга и ее использование в вирусологии. Достоинства и недостатки».
Одной из простейших серологических реакции является реакция торможения гемаглютинации. Она основана на том, что АТ при встрече с гомологичным АГ нейтрализуют не только его инфекционную, но и гемагглютинирующую активность, т.к. блокируют рецепторы вирионов, ответственные за гемагглютинацию, образуя с ними комплекс «АГ+АТ». Принцип РТГА состоит в том, что в пробирке смешивают равные объемы сыворотки крови и суспензии вируса и после экспозиции определяют, сохранился ли в смеси вирус, путем добавления суспензии эритроцитов. Агглютинация эритроцитов указывает на наличие, а отсутствие гемагглютинации – на отсутствие вируса в смеси. Исчезновение вируса из смеси вирус + сыворотка расценивается как признак взаимодействия АТ сыворотки и вируса. РТГА позволяет решать следующие задачи: определять титр АТ к гемагглютинирующему вирусу в сыворотке; идентифицировать неизвестный гемагглютинирующий вирус по известным сывороткам; установить степень АГ родства двух вирусов. Достоинства РТГА: простота техники, быстрота, не требуется стерильной работы, специфичность, дешевизна. Недостаток РТГА: возможна только с гемагглютинирующими вирусами.
Принцип титрования АТ в РТГА состоит в следующем: готовят ряд последовательных (обычно 2-х кратных) разведений исследуемой сыворотки в одинаковых объемах (чаще по 0,25 или 0,2 мл); к каждому разведению добавляют такие же объемы гомологичного вируса в титре 4 ГАЕ; смеси выдерживают определенное время при определенной температуре, ко всем смесям добавляют равные объемы 1-% суспензии отмытых эритроцитов; после экспозиции оценивают гемагглютинацию в каждой смеси в крестах.
Вопрос №26 «рдп. Иммунологическая основа меода, постановка и учет результатов. Достоинства и недостатки».
РДП в геле основана на способности к диффузии в гелях АТ и растворимых АГ и отсутствие такой способности у комплекса «АГ+АТ». Этот комплекс образуется при контакте диффундирующих навстречу друг другу гомологичных АГ и АТ. Он осаждается на месте образования в толще геля в виде полосы преципитации. В качестве геля используют крахмал, желатин, агар-агар и другое. В лабораторной практике очень часто используют агаровый гель. АТ сыворотки представляют собой молекулы Ig, которые, несмотря на довольно крупные размеры. Способны диффундировать в агаровом геле. АГ вирусов – это вирусные белки. Они могут находится в составе вирионов, представляя так называемые корпускулярные АГ. Крупные размеры которые не позволяют им диффундировать в агаровом геле. Но белки вирусов могут быть и в виде свободных молекул, образующихся в результате деструкции вирионов и (или) разрушения клеток, в которых они образовались. Это растворимые АГ. Они способны к диффузии в агаровом геле. Методика постановки РДП в геле состоит в том, что в слое агарового геля делают несколько углублении и в них наливают АГ и сыворотки так. Чтобы АГ и сыворотка были в соседних лунках. Из лунок АГ и сыворотки начинают диффундировать в слой геля. Диффузия направлена во все стороны от каждой лунки. В пространстве между лунками, содержащими АГ и сыворотку, последние диффундируют навстречу друг другу. Если они окажутся гомологичными, то образуется комплекс «АГ+АТ», который к диффузии не способен вследствие более крупных размеров. Он оседает на месте образования в виде беловатой полосы преципитации. РДП решает задачи: 1) обнаружение в сыворотке крови АТ, гомологичных АГ; 2) обнаружение в материале АГ, гомологичного известным АТ сыворотки;3) идентификация неизвестного вируса; 4) титрование АТ сыворотки. Здесь высшее разведение сыворотки, еще дающее преципитацию с гомологичным АГ, служит показателем титра АТ в сыворотке. РДП часто используют для диагностики лейкоза КРС и инфекционной анемии лошадей. Реакция м\б поставлена в чашках Петри, на предметных стеклах, капиллярах (редко). Для осуществления РДП на предметных стеклах нужны: обезжиренные предметные стекла, градуированные пипетки (2-5 мл), пастеровские пипетки; трубка диаметром 5мм или штамп, влажная камера, инструмент для извлечения из лунок геля, агар, АГ, сыворотки. Постановка РДП: Предметные стекла кладут на холодную поверхность. Из пипетки наливают агар (слой 1,5-2 мм), дают остыть 5-10 минут. Вырезают лунки, запаивают их. В лунки заливают компоненты РДП, помещают во влажную камеру (где оставляют при комнатной температуре или ставят в термостат). Препарат РДП на предметных стеклах можно через 48-72 часа высушить и окрасить раствором амидного черного. Это позволяет сохранить препарат неопределенно долго и улучшает возможность фотографировать полосы преципитации. Плюсы РДП: простота техники постановки, быстрота получения ответа, нетребовательность к чистоте компонентов, не требуется стерильной работы, минимальная потребность в компонентах, пригодность для работы с любыми растворимыми АГ, возможность документирования результата путем фотографирования. Минусы РДП: низкая чувствительность. Реакцию ставят для обнаружения в патматериале вирусов бешенства, инфекционного ринотрахеита КРС, африканской чумы свиней, чумы собак, других; А также для идентификации вирусов инфекционной анемии лошадей, аденовирусов, респираторно-синцитиального вируса, вируса диареи КРС, для обнаружения в сыворотках крови АТ к вирусам инфекционной анемии лошадей, респираторно-синцитиального вируса КРС и во многих других случаях.