- •Методические указания
- •Для самоподготовки к сдаче практических навыков
- •По дисциплине «Общая хирургия»
- •Для студентов 3 курса лечебного факультета
- •Содержание
- •Список условных сокращений
- •Предисловие
- •Введение
- •2. Использование индивидуального перевязочного пакета.
- •3. Наложение окклюзионной повязки при открытом пневмотораксе.
- •4. Определение пригодности гипса.
- •5. Приготовление гипсовых бинтов и лонгет.
- •6. Техника наложения и снятия гипсовых повязок.
- •7. Перевязка больному в гнойном отделении.
- •8. Приготовление перевязочного материала.
- •9. Укладывание перевязочного материала, перчаток, белья в биксы.
- •10. Загрузка и разгрузка парового стерилизатора.
- •11. Стерилизация металлических инструментов, изделий из резины, стекла.
- •12. Контроль стерильности.
- •13. Обработка рук хирурга перед операцией.
- •14. Подготовка операционного поля.
- •15. Одевание хирурга в стерильную одежду.
- •16. Ингаляция кислорода.
- •17. Способы обеспечения проходимости верхних дыхательных путей.
- •18. Искусственная вентиляция лёгких.
- •19. Непрямой массаж сердца.
- •20. Техника местной анестезии.
- •21. Спинномозговая анестезия.
- •22. Перидуральная анестезия.
- •23. Анестезия по Лукашевичу-Оберсту.
- •29. Паравертебральная, межрёберная новокаиновые блокады.
- •24. Шейная вагосимпатическая и паранефральная блокады.
- •25. Прижатие артерий в типичных местах с целью остановки кровотечения.
- •26. Наложение и снятие кровоостанавливающего жгута и закрутки.
- •27. Определение групп крови с помощью стандартных изогемагглютинирующих сывороток.
- •28. Проба на индивидуальную совместимость и резус-совместимость.
- •29. Определение резус-фактора.
- •30. Биологическая проба.
- •31. Установка и заполнение системы для внутривенного капельного переливания крови и кровезаменителей.
- •32. Сбор анамнеза и объективное исследование больного.
- •33. Измерение длины верхней и нижней конечности.
- •35. Измерение окружности грудной клетки, живота.
- •36. Определение частоты пульса, дыхания, измерение артериального давления.
- •37. Описание локального статуса по заданию (перелом, рана, ожог, воспаление, опухоль, грыжа).
- •38. Обезболивание при вправлении вывиха.
- •39. Техника вправления вывихов плеча и бедра по Кохеру и Джанелидзе.
- •Вправление вывиха бедра способом Джанелидзе.
- •Вправление вывиха бедра способом Кохера .
- •40. Техника транспортной иммобилизации при переломах плеча, костей предплечья, переломе пястных костей, бедра, голени, стопы.
- •41. Наложение шины Дитерихса при переломе бедренной кости.
- •42. Наложение абдукционной шины цито при переломе плеча.
- •43. Обезболивание области перелома.
- •44. Техника лейкопластырного и клеевого вытяжения.
- •45. Приготовление кровати для больных со скелетным вытяжением, подготовка шины Белера.
- •46. Техника скелетного вытяжения за мыщелки бедра, бугристость большеберцовой кости, надлодыжечную область, пяточную кость, локтевой отросток.
- •47. Диагностика по рентгенограммам вида перелома. Рекомендации по лечению.
- •48. Техника люмбальной пункции.
- •49. Техника плевральной пункции.
- •50. Техника активной аспирации из плевральной полости с использованием трёхбаночной системы.
- •51. Техника промывания желудка.
- •52. Техника очистительной и сифонной клизмы.
- •53. Техника первичной хирургической обработки.
- •54. Техника вторичной хирургической обработки.
- •55. Техника наложения провизорных, первично-отсроченных, вторичных ранних, вторичных поздних швов.
- •56. Снятие швов.
- •57. Определение площади ожоговой поверхности.
- •58. Техника пересадки кожи при ожогах.
- •59. Техника вскрытия поверхностных гнойников (абсцессы, флегмоны, карбункул).
- •60. Техника вскрытия панарициев.
- •61. Техника вскрытия маститов.
- •62. Техника выполнения разрезов при анаэробной инфекции.
- •63. Пункция коленного, тазобедренного, плечевого, локтевого суставов.
- •64. Профилактика и лечение пролежней.
- •65. Введение противостолбнячной сыворотки.
- •Заключение.
- •Библиографический список.
11. Стерилизация металлических инструментов, изделий из резины, стекла.
Техника выполнения. Металлические инструменты стерилизуются в автоклаве, или в сухожаровом шкафу. Для стерилизации режущих инструментов используется химический метод. Приборы, снабженные оптикой (бронхоскопы, фиброгастродуоденоскопы, цистоскопы, колоноскопы и др.) стерилизуются в газовых стерилизаторах или для этой цели используют химические антисептики, такие как хлогексидин биглюконат и др.
Сухие резиновые перчатки стерилизуются в автоклаве. Перед стерилизацией внутри и снаружи они пересыпаются тальком для предохранения от склеивания. Между перчатками прокладывают марлю или бумагу, каждую пару перчаток заворачивают отдельно в марлю или бумагу, внутрь, в ладонную часть перчатки вкладывают лоскуты марли или бумаги и в таком виде помещают в бикс. Режим стерилизации при температуре пара 120оС, давлении 1,1 атм. - 45 минут.
Другие изделия из резины и полимерных материалов подготавливают для стерилизации, подбирая размер упаковочных материалов так, чтобы исключить перегибы изделий, У-образное или петлевое сложение.
Стерилизация изделий из стекла. Стеклянные многоразовые шприцы с пометкой «200», пробирки, чашки Петри, флаконы упаковывают в разобранном состоянии, вынимают поршни из шприцов, пробки из флаконов и пробирок и размещают их в стерилизационных укладках таким образом, чтобы они располагались открытой частью вниз. Стерилизуются изделия в автоклаве или сухожаровом шкафу.
Рис. 39. Автоклав.
12. Контроль стерильности.
Оснащение: биотесты, индикаторы интегрированного действия.
Техника выполнения. Для проверки стерильности материала после автоклавирования и стерилизации изделий в сухожаровом шкафу существуют несколько методов.
Технический – проверка показателей давления и температуры в автоклаве, температуры в сухожаровом шкафу, а также размещение термометров в различных участках стерилизационной камеры и в стерилизационных коробках или пакетах.
Бактериологический метод наиболее надежен. Берётся посев со стерильного материала и стенок бикса. Ответ можно получить только через 2 – 3 суток, в этом неудобство метода.
К этому же методу относится использование неспороносной и непатогенной культуры микроорганизмов, которые погибают при определенной температуре, или биотесты, имеющие дозированное количество спор тест - культуры. Пробирки с этой культурой помещают в бикс, а после стерилизации делают посев. Результат можно получить не ранее 2 – 3 суток.
В повседневной работе возникает необходимость получить результаты контроля в ближайшие часы после проведения стерилизации. С этой точки зрения заслуживают внимания биотесты, позволяющие обнаружить наличие выживших после стерилизации микроорганизмов методом флюоресценции. Отсутствие флюоресценции свидетельствует о стерильности материала. Использование этого метода позволяет получить ответ о качестве проведенной стерилизации через 2 – 3 часа.
В настоящее время для контроля режимов стерилизации используются индикаторы интегрированного действия: ИС-120, ИС-132, ИС-160, ИС-180 фирмы “Винар”, представляющие собой полоски бумаги, на одной стороне которых нанесен индикаторный слой и изменяющие окраску до цвета эталона только при воздействии на них температуры стерилизации в течение всего процесса. Каждый индикатор применяется лишь для определенного режима стерилизации. Индикаторы ИС – 120 и ИС – 132 предназначены для одновременного контроля температуры, времени стерилизации и наличия пара в паровых стерилизаторах, а индикаторы ИС – 160 и ИС – 180 – для контроля режимов в воздушных стерилизаторах. Эталон представляет собой полоску бумаги, окрашенную с одной стороны в цвет, с которым доложен совпадать цвет индикатора при условии соблюдения режима стерилизации. Отработанные индикаторы подклеивают в журнал учета стерилизации. Материал разрешается использовать, если цвет всех индикаторов, заложенных в камеру стерилизатора, соответствует или чуть темнее цвета эталона. Если цвет индикатора в какой либо точке стерилизатора светлее эталона, использование всей партии изделий запрещается.
Рис. 40. Индикаторы интегрированного действия.