- •Лабораторна робота 1 Глибинне культивування Asp. Niger з метою одержання лимонної кислоти
- •Перше заняття
- •1. Готування посівного й ферментаційного середовищ
- •2. Визначення рН посівного й ферментаційного середовищ і доведення до рН 7,0
- •3. Визначення сухих речовин методом рефрактометрії
- •4. Визначення вмісту цукру за методом Бертрана
- •Друге заняття
- •1.Визначення біомаси
- •2. Визначення рН середовища
- •3. Визначення загальної кислотності
- •4. Визначення вмісту цукру в культуральній рідини по Бертрану
- •5. Визначення лимонної, щавлевої й глюконової кислот й їхній розрахунок
- •Лабораторна робота 2 Культивування цвілевого гриба Asp. Niger поверхневим способом з метою одержання лимонної кислоти
- •Перше заняття
- •1. Підготовка посуду для стерилізації
- •2. Готування живильного й з її стерилізація
- •3. Визначення концентрації сухих речовин у вихідному середовищі
- •4. Визначення рН середовища
- •6. Засівання стерильного середовища спорами продуцента, характеристика умов культивування
- •Друге заняття
- •2. Визначення в збродженому розчині загальної титруємої кислотності й знімання кислоти г/м2 за добу
- •3. Визначення лимонної, щавлевої й глюконової кислот й їхній розрахунок
- •3.2. Визначення щавлевої кислоти
- •4. Визначення сухої ваги міцелію й розрахунок його продукуючої здатності по лимонній кислоті
- •5. Визначення в середовищі залишкового цукру
- •6. Розрахунок кількості спожитого цукру
- •7. Розрахунок виходу лимонної кислоти від спожитого цукру
- •Додатки
- •Застосування органічних кислот
Перше заняття
План роботи
1. Готування посівного й ферментаційного середовищ.
2. Визначення рН посівного й ферментаційного середовищ і доведення до рН 7,0.
3. Визначення сухих речовин методом рефрактометрії.
4. Визначення вмісту цукру за методом Бертрана.
Для реєстрації результатів роботи формується нижчеподаний журнал спостереження.
Таблиця 1
№ варіанта |
рН ферментаційної, середовища |
% сухих речовин |
% РВ |
|
|
|
|
1. Готування посівного й ферментаційного середовищ
Одержання спор. Asp. niger вирощують у чашках Петрі на сусло-агаровому середовищі. 7 – 8 добові конідії збирали для наступного культивування в рідкому середовищі. Спори з поверхні чашок збирають рідким способом (5 мл стерильної води).
Посівне сахарозомінеральне середовище: (г/л) сахароза – 12,5; КН2РО4 або К2НРО4 – 10; MgО4•7H2О – 10; (NH4)2SО4 – 10; КС1 – 0,5; FeО4 – 0,01; ZnО4 – 0,05. Культивування посівного сахарозомінерального середовища проводиться не менш 36 годин.
Посівне глюкозомінеральне середовище: (г/л) глюкоза – 24; NH4C1 – 2,0; КН2РО4 – 1,0; MgО4•7H2О – 0,2; ZnО4 – 0,01; MnО4 – 0,005. Культивування посівного глюкозомінерального середовища проводиться не менше 24 годин.
Посівні середовища готуються в кількості 50 мл у колбах на 250 мл. Суспензія спор вноситься в кількості 1 мл.
Культивування проводиться на качалці при 200 об/хв t = 37 – 38°C.
Ферментаційне сахарозомінеральне середовище, (г/л):
Варіант № 1. Сахароза – 30; аспарагін – 1,0; NH4NО3 – 0,6; КН2РО4 – 1,0; MgО4•7H2О – 0,5.
Варіант № 2. Сахароза – 30; аспарагін – 2,0; КН2РО4 – 1,0; MgО4•7H2О – 0,5; СаСО3 – 5,0.
Варіант № 3. Сахароза – 30; КН2РО4 – 10; MgО4•7H2О – 10; (NH4)2SО4 – 10; КС1 – 0,5; FeО4 – 0,01; ZnО4 – 0,05.
Ферментаційне глюкозомінералъне середовище, (г/л):
Варіант № 4. Глюкоза – 30; аспарагін – 1,0; NH4NО3 – 0,6; КН2РО4 – 1,0; MgО4•7H2О – 0,5.
Варіант № 5 Глюкоза – 30; аспарагін – 2,0; КН2РО4 – 1,0; MgО4•7H2О – 0,5; СаСО3 – 5,0.
Варіант № 6. Глюкоза – 95,0; NH4C1 – 2,0; КН2РО4 – 1,0; MgО4•7H2О – 0,2; ZnО4 – 0,01; MnО4 – 0,005.
Ферментаційне середовище готується в кількості 100 мл у колбах на 500 мл. Посівне середовище додається з розрахунку 10% до ферментаційного середовища. Культивування проводиться на качалці 200 об/хв t = 28 – 29°С у протягом 7 - 8 діб.
Стерилізують середовища в автоклаві при 0,5 аті протягом 30 хв.
2. Визначення рН посівного й ферментаційного середовищ і доведення до рН 7,0
рН середовища визначається потенціометрично. У якості розчинів для титрування використовують 10%-ні розчини КОН і Н2SO4.
3. Визначення сухих речовин методом рефрактометрії
У вихідному середовищу, яке лишилося після розливу в колби визначається вміст сухих речовин методом рефрактометрії. Для цього 10 – 12 мл середовища, при необхідності, профільтровують через складчастий фільтр у пробірку, доводять температуру фільтрату до 20°С и роблять вимірювання показань на рефрактометрі.
4. Визначення вмісту цукру за методом Бертрана
4.1. Інверсія цукру. Інверсія цукру середовища здійснюється за допомогою кислотного гідролізу.
Устаткування й посуд: водяна баня, мірна колба на 50 мл, індикаторний універсальний папір, паперовий фільтр, лійка.
Реактиви: 5%-ний розчин НС1, насичений розчин Na2СО3, розчин J2.
Хід роботи:
У мірну колбу на 50 мл переносять 12,5 мл середовища.
Таблиця 2.
Реактиви, обробка |
Кількість, час |
Примітка |
5%-ний розчин НС1 |
12,5 мл |
|
Витримка на киплячій водяній бані |
20 – 30 хв |
Охолодження під струменем холодної води |
Na2СО3 насичений розчин |
До слабокислої реакції |
За індикаторним папером |
Н2О |
До мітки |
|
Розчин J2 |
1 – 2 краплі |
Перевірка на повноту інверсії |
|
Фільтрування |
Через паперовий фільтр. |
Фільтрат використовують для визначення редукуючих цукрів.
4.2. Визначення редукуючих цукрів у середовищі.
Метод заснований на здатності редукуючих цукрів відновлювати лужний розчин оксиду міді (ІІ) в оксид міді (І) й визначення концентрації останньої шляхом впливу на неї розчином сульфату заліза (ІІІ) заліза, підкисленого сульфатною кислотою. Кількість відновленого при цьому заліза визначається титруванням перманганатом калію. Процес зводиться до наступних реакцій:
2СuО + редукуючий цукор → Сu2O;
Сu2O + Fе2(SO4)3 + Н2SO4 → СuSO4 + 2FeSO4 + Н2O;
10FeSO4 + 2KMnO4 + 8H2SO4 → 5Fe2(SO4)3 + K2SO4 + +2MnO4+ 8H2O.
Із цих рівнянь видно, що 1 мл 0,1 н розчину перманганату калію відповідає 6,35 мг міді. Знаючи кількість мілілітрів розчину КМnO4, які витратили на титрування сульфату заліза, знаходять, кількість міліграмів Cu2O. По таблиці 1, представленій в додатку 3 визначають кількість глюкози, що відповідає міліграмам міді.
Устаткування й посуд: Конічна колба на 250 мл, електроплитка, паперовий фільтр, лійка, бюретка, універсальний індикаторний папір.
Реактиви: реактив Фелінга А, реактив Фелінга Б, дистильована вода, сульфат заліза залізо в сірчаній кислоті, 0,1 н перманганат калію.
Хід роботи.
Фільтрат, отриманий по пропису підпункту 4.1., у кількості 10 мл поміщають у термостійку конічну колбу на 250 мл.
Таблиця 3.
Реактиви, обробка |
Кількість, час |
Примітка |
Реактив А Реактив Б Кип'ятіння |
10 мл 10 мл 3 хв |
Перемішування Перемішування Сu2O↓ осад червоного кольору. Рідина над осадом повинна бути синього кольору |
Гаряче фільтрування | ||
Н2О, t = 90 – 100°С |
Промивання осаду на фільтрі |
До повного знебарвлення промивних вод |
Розчин FеSO4 у Н2SO4 |
Розчинення осаду на фільтрі |
|
Н2О, t = 20-30оC |
Промивання фільтра й конічної колби |
До відсутності кислої реакції в промивних водах |
Фіксація обсягу промивної води | ||
0,1 нКМnO4 |
титрування |
До слаборозового забарвлення |
Для обчислення процентного вмісту цукру, обсяг 0,1н розчину перманганату калію, який витратився на титрування множать на титр по міді (6,35 мг) і по довідковій таблиці 1 (додаток 3) знаходять якій кількості глюкози він відповідає. Вміст цукрів (%) обчислюють за формулою:
де Свих – вихідний вміст цукру в середовищі; а – кількість мг глюкози; b – кількість мл промивної води; 1000 – переведення мг у г; 12,5 – обсяг узятої проби для інверсії; 50 – обсяг доведення до мітки; 10 – обсяг узятий для аналізу.