- •Реферат
- •Введение
- •Обзор и анализ научно технической и патентной информации.
- •Нейтрофины.
- •Общая характеристика.
- •1.2 Нейротрофины в цнс
- •2. Рецепторы нейтрофинов.
- •2.1Высокоаффинный рецептор к нейротрофинам pl40 prototrk
- •2.2 Низкоаффинный рецептор к нейротрофинам p75lntr.
- •Фактор роста нервов.
- •История открытия
- •3.2 Молекулярная характеристика.
- •Третичная структура.
- •3.4 Механизм взаимодействия ngf с рецепторами.
- •3.5 Захват и ретроградный транспорт ngf.
- •3.6 Функции ngf в организме.
- •3.6.1 Действие ngf на нервные клетки.
- •3.6.2 Значение ngf в метаболизме.
- •3.6.3 Участие ngf в патологических состояниях.
- •4. Современные достижения в получении рекомбинантного ngf для фармацевтической индустрии.
- •5 Экспрессия рекомбинантных генов.
- •5.1 Вводная часть.
- •5.2 Конструирование экспрессионных векторов и их функционирование.
- •5.3 Факторы, оказывающие влияние на эффективность экспрессии рекомбинантных генов.
- •6 Выводы по разделу
- •Основная часть
- •1. Материалы, методы и оборудование
- •1.1 Оборудование
- •1.2 Программное обеспечение
- •1.3 Лабораторные посуда и расходные материалы.
- •1.4 Штаммы e.Coli
- •1.5 Среды для выращивания бактерий
- •1.6 Препараты днк
- •1.7 Ферменты
- •1.7 Реактивы и наборы реактивов
- •Приготовление рвs буфера (х10):
- •10% Уксусная кислота
- •1.9.1 Рестрикция
- •1.9.2 Электрофоретичское разделение днк в агарозном геле.
- •1.9.3 Выделение днк из агарозного геля.
- •1.9.4. Полимеразная цепная реакция (пцр).
- •1.9.5 Лигирование.
- •1.9.6 Pipes трансформация клеток e. Coli плазмидной днк
- •1.9.7 Культивирование, выделение и очистка плазмидной днк из клеток e. Coli
- •1.9.8 Проведение пцр-скрининга.
- •1.9.9 Секвенированиеплазмидной днк.
- •1.9.10 Быстрая трансформация.
- •1.9.11 Анализ экспрессии целевого гена.
- •1.9.12 Выделение суммарного (общего) белка из клеток e. Сoli.
- •1.9.14 Фракционирование белков из клеток e. Сoli.
- •1.9.15 Денатурирующий белковый электрофорез в sds-пааг.
- •1.9.16 Отмывка телец включения
- •1.9.17 Растворение телец включения
- •1.9.18 Выделение SumoNgf при помощи металло-хелат-аффинной хроматографии
- •1.9.19 Рефолдинг белка
- •1.9.20 Расщепление гибридного белка SumoNgf
- •2. Экспериментальные исследования
- •2.1 Получение векторных конструкций.
- •2.1.1 Сборка гена ngf методом пцр.
- •2.1.2 Получение векторной конструкции pTngf
- •2.1.3 Получение гибридной последовательности SumoNgf.
- •2.1.4 Получение векторной конструкции pTSumoNgf.
- •2.2 Биосинтез целевого и гибридного белка. Подбор условий культивирования.
- •2.2.1 Биосинтез белка ngf.
- •2.2.1 Биосинтез гибридного белка SumoNgf.
- •2.3 Выделение и очистка рекомбинантного фактора роста нервов человека.
- •2.3.1 Отмывка и растворение телец включения
- •2.3.2 Металло-хелатная аффинная хроматография
- •2.3.3 Масс-спектрометрия гибридного белка ngf
- •2.3.4 Рефолдинг гибридного белка SumoNgf
- •2.3.5 Ферментативное расщепление гибридного белка SumoNgf
- •2.3.5 Очистка ngf на катионобменной хроматографии.
- •2.3.5 Разработка обобщённой схемы производства рекомбинантного ngf
- •Организационно – экономический раздел
- •Технико-экономическое обоснование нир
- •2. Расчёт затрат на научно-исследовательскую работу
- •2.1. Расчет материальных затрат (Cм)
- •2.2. Энергетические затраты.
- •4.2.3. Расчет затрат на заработную плату.
- •2.4. Расчет затрат на стеклянную посуду, стеклянные приборы и пластик.
- •4.2.5. Амортизационные отчисления (Сам.).
- •2.6. Накладные расходы.
- •3 Выводы по разделу
- •Безопасность жизнедеятельности
- •1 Краткая характеристика выполняемой работы.
- •2 Опасные и вредные производственные факторы на основных стадиях выполнения дипломной работы.
- •3 Перечень наиболее опасных мест на стадиях выполнения дипломной работы.
- •Основные физико-химические, токсические и пожаровзрывоопасные свойства используемых в работе веществ.
- •5 Обеспечение безопасности труда в лаборатории.
- •6 Производственная санитария.
- •6.1 Установление категории лабораторного помещения.
- •6.2 Разработка мероприятий по работе с вредными веществами.
- •6.3 Метеорологические условия.
- •6.4 Вентиляция.
- •6.5 Освещение.
- •6.7 Отопление.
- •7 Техника безопасности.
- •7.1 Электробезопасность.
- •7.2 Пожарная профилактика.
- •8. Выводы по разделу.
2.1 Получение векторных конструкций.
Клонирование рекомбинантных генов и их экспрессия с образованием белковых продуктов клетками E. сoli позволяет осуществить производство многих полезных эукариотических белков, которые другим способом получить очень трудно.
В ходе экспериментальной работы были собраны две векторные конструкции для прямой и гибридной экспрессии. В качестве основы была взята коммерческая плазмида pGEMEX1 (Novagen, США).
Рисунок _. – Плазмиды pTNGF и pTSumoNGF. На рисунке обозначены: NGF – ген, отвечающий за синтез фактора роста нервов, SumoNGF - ген, отвечающий за синтез гибридного белка, Ori (Origin) - регион автономной репликации и регион, f1 Ori,??? , bla (AmpR) - ген придающий устойчивость к ампицилину, Т7pr – промотор, обеспечивающий инициацию трансткипции, Т7ter – терминатор - последовательность нуклеотидов, узнаваемая РНК-полимеразой, как сигнал к прекращению синтеза РНК.
2.1.1 Сборка гена ngf методом пцр.
На первом этапе с помощью научной литературы была изучена последовательность олигонуклеотидов гена фактора роста нервов, который расположен на коротком плече, первой хромосомы человека []. Далее была произведена модификация данной последовательности путем добавления на 5/ конец сайта рестрикции NdeI а на 3/ конец XhoI (Приложение _ ).
Н а основе данной последовательности были подобраны 12 праймеров для последовательной сборки гена (Приложение _ ). Сборку гена NGF осуществляли в несколько этапов c помощью метода ПЦР-амплификации (Рисунок _ ).
Рисунок _. – Сборка гена NGF методом ПЦР.
В результате был собран ген человеческого фактора роста нервов, который в дальнейшем был использован для создания экспрессионных конструкций (Рисунок _ ).
Рисунок _ . – Ген NGF c модифицированными концами.
2.1.2 Получение векторной конструкции pTngf
Для прямой экспрессии в используемую плазмиду по сайтам NdeI и XhoI был проклонирован ранее полученный ген, кодирующий человеческий фактор роста нервов (NGF), под транскрипционный контроль Т7 промотора. Основные этапы работы по получению pTNGF изображенны на рисунке _.
Полученную с помощью ПЦР- амплификации последовательность гена фактора роста нервов расщепляли эндонуклеазами рестрикции NdeI и XhoI. Расщепление плазмиды pGEMEX1 проходило в два этапа. Сначала рестрикции проводили по сайтам NdeI и AatII, а затем XhoI и AatII. В результате получили два вектора длиной 2092 п.о (Вектор 1) и 1049 п.о (Вектор 2) соответственно. Контроль расщепления ДНК рестриктазами осуществлялся с помощью электрофоретического разделения ДНК в агарозном геле.
Рисунок _. - Основные этапы сборки векторной конструкции pTNGF.
После выделения из геля фрагмента, проводили трехкомпонентное лигирование (фрагмент NGF, вектор 1 и вектор 2). В результате получили лигазную смесь, которой трансформировали компетентные клетки штамма XL1-Blue. Затем трансформированные клетки высевали на агаризованную питательную среду YT с ампициллином, в качестве селективного агента.
Бактериальные клоны анализировали на содержание нужного фрагмента быстрым ПЦР-скринингом, используя праймеры T7 и Sp6 на начало промотора и конец терминатора. (Рисунок _ ).
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11
400 п.н
Рисунок _ - ПЦР – скрининг бактериальных клонов.
1-10 – плазмидная ДНК бактериальных клонов № 1 – 10, 11 – положительный контроль, фрагмент NGF.
Из результатов скрининга видно, что у всех отобранных клонов наработался фрагмент соответствующий положительному контролю. В качестве положительного контроля был взят ген NGF. Полученные результаты свидетельствуют о наличии целевой вставки в составе вектора. Но данного исследования недостаточно, чтобы дать окончательный ответ о правильности сборки конструкции.
Отобранные для дальнейшего исследования колонии № 5 – 10 инокулировали в 3 мл YT среды и выращивали в течении ночи при 37оС в стерильных пробирках на 15 мл. С 3 мл. ночной культуры была собрана биомасса и выделена плазмидная ДНК при помощи набора QIAprep Spin Miniprep Kit (QIAGEN). Полученные векторные конструкции секвенировали в Межинститутском Центре коллективного пользования “ГЕНОМ” Центр “Биоинженерия” РАН. Правильность последовательности ДНК гена SumoNGF и сопутствующих областей в плазмиде была подтверждена секвенированием (Приложение _ )
Правильность последовательности ДНК гена NGF и сопутствующих областей в плазмиде была подтверждена секвенированием (Приложение _ )