Добавил:
Upload Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:

3._Metod._razrab._dlja_stud._2009-UMK

.pdf
Скачиваний:
161
Добавлен:
25.03.2015
Размер:
425.1 Кб
Скачать

5.Сбор мочи начните через 30 минут после водной нагрузки. Отметьте количество мочи в пробирке через 1,5 и 3 часа после начала ее сбора.

6.Результаты, полученные в эксперименте, занесите в таб. 6.

 

 

 

 

 

 

 

Таблица 6

№№

Водная

Питуитрин

Величина диуреза во время опыта через (мин)

подопытной

нагрузка

 

 

 

 

 

 

 

 

30

60

90

120

150

180

мыши

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

1

 

 

 

 

 

 

 

 

2

Примечание: Кончик инъекционной иглы во время введения должен находиться под брюшной стенкой (во избежание повреждения внутренних органов). Величину диуреза (в мл) отмечайте каждые 30 минут.

В течение суток перед опытом мышам не дают пищу, богатую водой

Работа 2

ВЛИЯНИЕ ФИЗИЧЕСКОЙ НАГРУЗКИ И ТЕМПЕРАТУРЫ НА ПОТООТДЕЛЕНИЕ

Рекомендации к выполнению практической работы

1.Одному испытуемому смажьте обе ладони раствором Минора. Когда кожа ладоней подсохнет, припудрите ее крахмалом. Через некоторое время в устьях протоков потовых желез появятся синие точки (результат взаимодействия крахмала с йодом в присутствии воды). Отметьте цвет ладоней, подсчитайте количество синих точек.

2.Испытуемый с открытой ладонью должен выполнить физическую нагрузку (15-20 приседаний). Отметьте изменение окраски кожи ладоней и увеличение количества синих точек.

3.Второму испытуемому также смажьте ладони раствором Минора. При подсыхании кожи припудрите ее крахмалом.

4.Приложите одну ладонь к теплому предмету (колба с водой 60-65 0С), а другую - к холодному (колба с водой 15-200). Отметьте результат влияния температурного фактора на окраску ладоней и количество функционирующих потовых желез.

Примечание: Зарисуйте схему окрашивания кожи ладони до и после воздействия физической нагрузки, тепла, холода.

Рекомендуемые вопросы для самостоятельной подготовки к занятию

71

1.Какие органы выполняют выделительную функцию и каково их значение?

2.Какие невыделительные функции почек Вам известны?

3.Что является структурно – функциональной единицей почек?

4.Назовите современную теорию мочеобразования.

5.Где в нефроне происходит фильтрация плазмы и какие факторы ее обусловливают?

6.Назовите количество и состав первичной мочи.

7.Что такое реабсорбция? Где она осуществляется и какие механизмы процесса реабсорбции Вам известны?

8.Каковы количество и состав конечной мочи?

9.За счет каких механизмов осуществляется регуляция мочеобразования?

10.В чем заключается выделительная функция кожи и от чего зависит потоотделение?

СИТУАЦИОННЫЕ ЗАДАЧИ

1.Почему в Средней Азии и в других жарких местностях предпочитают утолять жажду чаем?

2.В момент эмоционального возбуждения повысилось артериальное давление в мальпигиевых клубочках с 55 до 65 мм рт. ст. Однако ожидаемого значительного возрастания диуреза не произошло. Объясните, с чем это связано.

3.Организм взрослого человека содержит 17,5 л внеклеточной жидкости. В течение суток она 10 раз обменивается с жидкостью циркулирующей крови и подвергается клубочковой фильтрации с последующей 99%-ной канальцевой реабсорбцией. Сколько в среднем требуется времени для разового «очищения» всей массы внеклеточной жидкости? Сколько первичной мочи образуется у человека за одни сутки?

4.Известно, что ночной диурез меньше дневного. С чем это связано?

5.При переливании несовместимой крови реципиенту происходят внутрисосудистый гемолиз и агглютинация эритроцитов. Почему в конечной моче в этом случае отсутствует гемоглобин?

6.У человека прекратилось выделение вазопрессина из-за повреждения супраоптических ядер гипоталамуса. Отразится ли это на выделении мочи?

7.Будет ли денервированная почка, пересаженная в другое место тела, реагировать на антидиуретический гормон?

72

XI. ОБМЕН ВЕЩЕСТВ И ЭНЕРГИИ Тема 1

РАСЧЕТ РАСХОДА ЭНЕРГИИ В СОСТОЯНИИ ОТНОСИТЕЛЬНОГО ПОКОЯ

Цель работы: научиться производить расчет расхода энергии в состоянии покоя.

Работа 1 РАСЧЕТ НЕКОТОРЫХ ПОКАЗАТЕЛЕЙ

ЭНЕРГЕТИЧЕСКОГО ОБМЕНА

Рекомендации к выполнению практической работы

1.Рассчитайте объем кислорода, поглощенного в 1 минуту, если минутный объем дыхания равен 6 л, во вдыхаемом воздухе О2 содержится 21%, в выдыхаемом – 17%.

2.Рассчитайте расход энергии за 1 час, если испытуемый поглощает за 1 минуту 0,3 л О2 и ДК=1.

3.Рассчитайте ДК, если испытуемый поглощает 0,4 л О2 и выделяет 0,36 л СО2. 4.Рассчитайте энергетические затраты у испытуемого, если, по данным непрямой

калориметрии по способу Дугласа-Холдена, установлено, что минутный объем дыхания равен 10 л. Состав вдыхаемого воздуха: О2 – 21%, СО2 – 0%. Состав выдыхаемого воздуха: О2

– 16%, СО2 –4 %.

Рекомендуемые вопросы для самостоятельной подготовки к занятию

1.Как осуществляется обмен веществ и энергии между организмом и окружающей средой?

2.Из каких звеньев складывается обмен веществ? В чем их сущность?

3.Что является показателем интенсивности обмена веществ и энергетических затрат организма?

4.Как определяется расход энергии? Укажите принцип непрямой калориметрии. 5.Что такое дыхательный коэффициент (ДК)?

6.Как изменяется величина ДК в зависимости от рода окисляющихся в организме веществ?

7.Что такое калорический эквивалент (коэффициент) кислорода?

Тема 2

РАСЧЕТ «ДОЛЖНОГО» ОСНОВНОГО ОБМЕНА ПО ТАБЛИЦАМ И ФОРМУЛАМ

73

Цель работы: определить величину должного основного обмена по таблицам Гарриса-Бенедикта и по данным поверхности тела человека.

Для работы необходимы: таблицы Гарриса-Бенедикта, номограмма для определения поверхности тела по массе тела и росту человека.

Объект наблюдения: человек

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Таблица 7

 

«Должный» основной обмен у мужчин и юношей (по Гаррису-Бенедикту)

А) число калорий соответственно массе тела (число А).

 

Число

Масса

 

 

Масса

Число

Масса

Число

Масса

Число

Масса

 

Число

(кг)

ккал

(кг)

ккал

(кг)

ккал

(кг)

ккал

(кг)

 

ккал

50

754

60

892

70

1029

80

1167

90

1304

51

768

61

905

71

1043

81

1180

91

1318

52

782

62

918

72

1057

82

1194

92

1332

53

795

63

933

73

1070

83

1208

93

1345

54

809

64

947

74

1084

84

1222

94

1359

55

823

65

960

75

1098

85

1235

95

1373

56

837

66

975

76

1112

86

1249

96

1387

57

850

67

988

77

1125

87

1263

97

1400

57

864

68

1002

78

1139

88

1277

98

1414

59

878

69

1015

79

1153

89

1290

99

1428

Б) число калорий соответственно росту и возрасту (число Б)

Рост

 

 

 

 

 

 

Возраст (годы)

 

 

 

 

 

(см)

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

16

17

18

19

20

21

22

23

24

25

26

27

28

156

725

713

698

678

661

639

632

625

618

612

605

598

591

160

761

743

726

708

690

659

652

645

638

632

625

618

611

164

794

773

755

738

721

679

672

665

658

652

645

638

631

168

820

803

785

768

745

699

692

685

678

672

665

658

651

172

840

828

806

788

760

719

712

705

698

692

684

678

671

176

860

843

825

808

788

739

732

725

718

712

705

698

691

180

880

863

845

828

809

759

752

745

738

732

725

718

711

184

903

883

865

848

830

779

772

765

758

752

745

738

731

188

920

903

888

868

850

799

792

785

779

772

765

758

751

192

940

923

906

888

871

819

812

805

779

792

785

778

771

Таблица 8

«Должный» основной обмен у женщин и девушек (по Гаррису-Бенедикту)

А) число калорий соответственно массе тела (число А).

 

 

 

Масса

Число

Масса

Число

Масса

Число

Масса

Число

(кг)

ккал

(кг)

ккал

(кг)

ккал

(кг)

ккал

50

1133

60

1229

70

1325

80

1420

74

51

1143

61

1238

71

1334

81

1430

52

1152

62

1248

72

1344

82

1439

53

1162

63

1258

73

1353

83

1449

54

1172

64

1267

74

1363

84

1458

55

1181

65

1277

75

1372

85

1468

56

1191

66

1286

76

1382

86

1478

57

1200

67

1296

77

1391

87

1487

57

1210

68

1305

78

1401

88

1497

59

1219

69

1313

79

1411

89

1506

Б) число калорий соответственно росту и возрасту (число Б)

Рост

 

 

 

 

 

 

Возраст (годы)

 

 

 

 

 

(см)

16

17

18

19

20

21

22

23

24

25

26

27

28

148

206

201

197

192

188

178

170

167

161

156

152

147

142

152

221

215

210

206

198

183

178

174

169

164

160

155

150

156

235

229

224

220

209

190

186

181

176

172

167

162

158

160

250

243

239

234

219

198

193

188

184

179

174

170

165

164

263

255

250

246

229

205

200

196

191

186

182

177

172

168

276

267

263

258

239

213

208

203

199

194

189

184

180

172

289

279

274

270

249

220

215

211

206

201

197

192

187

176

302

291

287

282

256

227

223

218

213

209

204

199

195

180

315

303

298

294

268

235

230

225

221

216

211

207

202

184

318

313

309

304

277

242

237

233

228

223

219

214

209

Таблица 9

Возраст

Стандарты основного обмена, ккал на 1 кв.м/ ч

(годы)

У мужчин

У женщин

16-18

43,0

40,0

18-20

41,0

38,0

20-30

39,5

37,0

30-40

39,5

36,5

Работа 1 ОПРЕДЕЛЕНИЕ ОСНОВНОГО ОБМЕНА ПО ТАБЛИЦАМ

ГАРРИСА - БЕНЕДИКТА

Рекомендации к выполнению практической работы

1.Определите свой «должный» основной обмен по таблице Гарриса-Бенедикта.

2.Расчетные таблицы для мужчин и женщин различны. Каждая расчетная таблица состоит из таблиц А и Б.

Предположим, что испытуемый – женщина 21 года, рост 160 см, масса тела 60 кг. В таблице А находим массу тела испытуемой – 60 кг и напротив нее число 1229 (число

75

ккал по массе). В таблице Б находим по горизонтали возраст – 21 год, по вертикали – 160 см, на их пересечении находим число 198 (число ккал по росту и возрасту).

1. Для определения основного обмена оба числа (А и Б) складываются: 1229 + 198 = 1427 ккал.

Рекомендуемые вопросы для самостоятельной подготовки к занятию

1.Что называется основным обменом? Условия, которые необходимо соблюдать при его определении? На что тратится энергия основного обмена?

2.Какова величина расхода энергии основного обмена у человека на 1 кг в 1 час? 3.Какова суточная величина основного обмена у мужчин и женщин?

4.Каково значение определения основного обмена в клинике и при организации питания? 5.На основании каких показателей можно определить величину «должного» основного

обмена у конкретного человека при помощи таблиц Гарриса-Бенедикта?

СИТУАЦИОННЫЕ ЗАДАЧИ

1.Во время работы ручной пилой взрослый человек выдохнул за 5 минут 95,5 л воздуха (объем воздуха дан приведенным к нормальным условиям, сухим). Выдыхаемый воздух содержал азота – 79,25 %, кислорода – 16,9 %, углекислого газа – 3,85 %; вдыхаемый воздух соответственно: азота – 79,04 %, кислорода – 20,93 %, углекислого газа – 0,03 %. Сколько литров кислорода было поглощено и выделено углекислого газа? Сколько энергии – кДж (ккал) – израсходовано организмом при этой работе?

2.Человек находится в камере (30 кв. м), герметически закрытой и снабженной автоматической установкой для сохранения постоянной температуры и влажности. В его организме в этот момент преимущественно сгорают жиры. Изменится ли давление в камере? Если да, то в какую сторону?

3.На сколько градусов нагревается тело человека (70 кг) за 1 час, если лишить его теплоотдачи?

4.В каком случае будет более высокий КПД – когда человек поднимает одно или два ведра с водой?

Приложение 1 ОБЩИЕ ПРАВИЛА ПО ОХРАНЕ БЕЗОПАСНОСТИ ТРУДА

ПРИ ВЫПОЛНЕНИИ ЛАБОРАТОРНЫХ РАБОТ

1.Все студенты должны приходить на занятия в халатах.

2.До начала лабораторных работ каждый студент должен ознакомиться с правилами техники безопасности.

76

3.Учебная группа распределяется на бригады в составе двух-трех студентов за каждым рабочим столом, назначается дежурный на каждое занятие по графику.

4.В практических комнатах и прилежащих к ним помещениях запрещается курить и зажигать спички.

5.При работе с источником постоянного тока (аккумулятором, индукционной катушкой Дюбуа-Реймона. потенциометром, электроимпульсатором) нужно быть осторожным, не допускать короткого замыкания, не оставлять включенными электроприборы на длительное время.

6.Необходимо соблюдать осторожность при работе с растворами кислот и щелочей, не допускать их разбрызгивания и попадания на кожные покровы и слизистые оболочки, а также пипетирование указанных растворов ртом.

7.При использовании спирта, эфира, курареподобных препаратов и других жидкостей противопоказано пробовать их на язык.

8.При работе с острыми и режущими инструментами не следует размахивать ножницами, пинцетом, скальпелем.

9.При обнаружении какой-либо неисправности оборудования следует немедленно доложить об этом дежурному по группе и преподавателю.

10. После окончания занятия студентам следует привести свое рабочее место в порядок, а после работы с животными (лягушкой, собакой, кроликом, крысой, мышами) тщательно вымыть руки с мылом.

11.В случаях, не предусмотренных настоящими правилами, студент обязан обеспечить безопасность работы как для себя, так и для окружающих.

12.Студентам запрещается выполнять работы, не предусмотренные целью занятия и методическими указаниями, или изменять установленный порядок выполнения лабораторных работ.

Приложение 2

ИНСТРУКТИВНО-МЕТОДИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ ПО МЕРАМ ПРОФИЛАКТИКИ РАСПРОСТРАНЕНИЯ ИНФЕКЦИОННЫХ ЗАБОЛЕВАНИЙ ПРИ РАБОТЕ С ЖИДКИМИ

БИОСРЕДАМИ (КРОВЬЮ )

Все биологические среды организма человека (кровь, моча, слюна, мокрота, сперма, спинномозговая жидкость, каловые и рвотные массы, околоплодные воды, плевральная и абдоминальная жидкость) являются потенциально инфицирующими материалами. В связи с

77

этим для предотвращения риска заражения студентов и сотрудников кафедры нормальной физиологии инфекциями с парентеральным путем передачи (сывороточным гепатитом, СПИДом, сифилисом и другими инфекциями) при контакте с донорской кровью человека и животных необходимо соблюдать следующие меры профилактики.

ОСНОВНЫЕ ТРЕБОВАНИЯ К РАБОТЕ

1.Практические работы по темам: “Групповая принадлежность крови человека“, “Определение скорости оседания эритроцитов методом Панченкова” проводится в виде демонстрации лаборантом кафедры под контролем преподавателя, ведущего занятие, с использованием донорской крови человека, доставляемой со станции переливания крови. На занятиях по темам : “Определение количества лейкоцитов, подсчет лейкоцитарной формулы, вычисление индекса регенерации,” “Определение количества эритроцитов, гемоглобина методом Сали,” “Физиология системы гемостаза² практические работы проводятся самостоятельно студентами под контролем преподавателя, ведущего занятие и лаборанта кафедры с использованием крови лабораторных животных (кроликов, белые крыс и мышей).

2.Преподаватели, лаборанты и студенты работают только в резиновых перчатках, надетых на обе руки, не допустимо использование перчатки только на одной руке или использование напальчников вместо перчаток.

3.Загрязненные перчатки с повреждением их целостности при отсутствии травмы кожи рук снимают и немедленно помещают в дезинфицирующие растворы; руки обрабатывают 70

°-ным этиловым спиртом.

4.Пипетирование донорской крови человека и животных необходимо проводить автоматическими пипетками или лабораторными “грушами”. Категорически запрещается проводить пипетирование биосред ртом.

5.В случае попадания крови на слизистые оболочки необходимо провести следующие мероприятия :

а) слизистые глаз обильно промыть проточной водой и закапать раствор альбуцида; а) в нос закапать 1%-ным раствором протаргола;

в) рот и горло прополоскать 0,05%-ным КМnО 4 или 70°-ным этиловым спиртом.

6.В случае порезов, проколов кожи пальцев и кистей рук необходимо немедленно выдавить каплю крови, рану обработать 70°-ным этиловым спиртом.

ДЕЗИНФЕКЦИЯ БИОМАТЕРИАЛОВ, ЛАБОРАТОРНОЙ ПОСУДЫ, МЯГКОГО ИНВЕНТАРЯ И ОБОРУДОВАНИЯ

78

1.Кровь из капилляров Панченкова, Сали, пробирок, часовых стекол сливают в стеклянную банку, засыпают сухими хлорсодержащими препаратами в отношении 1: 5, перемешивают и выдерживают 60 мин.

2.Капилляры Панченкова, Сали, камеры Бюркера, часовые и предметные стекла, пробирки, резиновые груши, штативы Панченкова, стаканы из-под лимоннокислого натрия, отработанные ватные шарики (перед утилизацией) дезинфицируются в любом из

дезинфицирующих растворов :

 

3% хлорамина

- 60 мин,

6% Н2О2

- 60 мин,

3% хлорной извести

– 60 мин.

3.Все дезинфицирующие растворы используются однократно. Емкости для дезинфекции должны быть четко промаркированы с указанием : что дезинфицируют (например, пробирки, капилляры), чем (название дезинфектанта), режим дезинфекции (длительность обработки); маркируются крышки емкостей и, в первую очередь, сами емкости. При проведении дезинфекции необходимо соблюдать следующие требования :

а) погружение должно быть полным; б) перед погружением инструменты или лабораторные принадлежности (груши, аппарат

Панченкова и тд) разбираются; в) внутренние каналы заполняются дезинфицирующим раствором.

4.Предметные стекла с фиксированными и окрашенными мазками загружают в 2%-ный мыльно-содовый раствор и кипятят 30 мин (одновременно с дезинфекцией проводится обезжиривание от иммерсионного масла).

5.Лабораторную посуду после дезобработки ополаскивают под проточной водой 10-15 мин.

6.Резиновые перчатки после окончания работы дезинфицируются в одном из перечисленных растворов. Затем перчатки прополаскивают под проточной водой. Руки обрабатывают 1%-ным раствором хлорамина, 2 раза моют проточной водой с мылом и вытирают индивидуальным тампоном.

7.Рабочие столы по окончании практической работы и в конце рабочего дня обрабатывают ветошью, смоченной дезраствором. При загрязнении биосредами в процессе выполнения практической работы стол обрабатывают немедленно. Ветошь должна храниться в емкости большого диаметра (кастрюле, тазике).

ПРЕДСТЕРИЛИЗАЦИОННАЯ ОЧИСТКА

79

После дезинфекции лабораторная посуда подвергается дополнительной механической очистке от остатков обеззараженной крови и некоторых форм реактивов в следующем порядке :

1.Полное погружение лабораторной посуды с заполнением всех каналов в 0,5%-ном моющем растворе на 15 мин при температуре 50° С.

Состав моющего раствора :

20 мл 33 %-ного раствора пергидроля,

5 г стирального порошка (“Лотос”, “Астра”, “Новость” ),

975 мл воды.

Моющий раствор разрешается использовать только в течение одних суток с момента приготовления, подогревая не более 6 раз или до полного окрашивания.

2.Мытье каждого изделия в моющем растворе при помощи ерша, щетки. 3.Ополаскивание под проточной водой 5 мин.

4.Ополаскивание дистиллированной водой 0,5 мин.

5.Сушка горячим воздухом в сухожаровом шкафу при температуре 85° С до исчезновения влаги при визуальном контроле.

6.Проведение качественных проб на остаточную кровь (бензидиновой, ортотолуидиновой, амидопириновой, азопирамовой). Контролю подвергаются 1% лабораторной посуды или медицинского инструмента от обработанной партии, но не менее 3-5 единиц. Условия проведения контроля качества подготовки для исключения получения фальсифицированных результатов :

а) качественный контроль проводится только после проведения полного объема предстерилизационной очистки;

б) температура контролируемых изделий должна быть комнатной; в) учет результатов следует проводить в течение одной минуты после нанесения на

поверхность изделия, по истечении одной минуты результат не учитывается.

При наличии положительных находок вся обработанная партия подвергается повторной предстерилизационной чистке.

СТЕРИЛИЗАЦИЯ Стерилизация стеклянной лабораторной посуды (капилляров, пипеток, предметных

стекол) проводится сухим горячим воздухом (в сухожаровом шкафу) при температуре 180° С

– 60 мин.

80