Культуральные свойства
Представители рода Azotobacter способны использовать углеводы (например маннит, сахарозу, глюкозу), спирты (в том числе этанол и бутанол) и соли органических кислот, в том числе и бензоаты, в качестве источника углерода и энергии. Представители рода растут на безазотистых средах, предназначенных для выделения свободноживущих азотфиксирующих и олигонитрофильных организмов, например на среде Эшби, содержащей источник углерода (маннит, сахароза или глюкоза) и необходимые микроэлементы (источник фосфора, серы и т. д.), или на среде М. В. Фёдорова, содержащей больше микроэлементов[25], а также на жидкой среде Бейеринка.
На плотных питательных средах представители рода образуют плоские, слизистые колонии пастообразной консистенции диаметром 5—10 мм, в жидких питательных средах образуют плёнки. Характерно также пигментирование, колонии представителей рода могут быть окрашены в тёмно-коричневый, зелёный и других цветов, или же могут быть бесцветными в зависимости от видовой принадлежности. Представители рода Azotobacter являются мезофильными микроорганизмами и растут при температуре 20—30 °C.
Целлюлозоразрушающих
Численность целлюлозоразрушающих бактерий можно определить также на агаризованной среде Гетчинсона с целлюлозой. В качестве источника углерода используют целлюлозный порошок, измельченную на терке фильтровальную бумагу, микрокристаллическую целлюлозу, обойный клей КМЦ. Обойный клей следует размочить в холодной воде, добавить к минеральной основе и стерилизовать среду при 1 атм. Целлюлозный агар можно применять для выделения, количественного учета и очистки целлюлозоразрушающих организмов. На таком агаре растут многие организмы, а наличие целлюлолитической активности удобно определить по прозрачным зонам вокруг колоний. Недостаток метода состоит в том, что культуры быстрорастущих микроорганизмов могут вытеснять виды, развивающиеся медленно.
Посев разведений почвенной суспензии производят в пробирки с жидкой средой Гетчинсона с полосками фильтровальной бумаги. О развитии целлюлозоразлагающих бактерий судят по разрушению полосок фильтровальной бумаги.
Капсулы выявление
для выявления капсулы используют микроскопические и иммунол. методы. В тканях и патологических субстратах (мокрота, слизь, гной) капсула выявляется при любом методе окраски в виде неокрашенной зоны между окрашенными телом бактерий и субстратом. В к-ре для К.в. применяют алциановый голубой и Романовского-Гимзы красители. Для К. в. методом Гинса-Бурри на конец предметного стекла рядом помещают каплю мелкой гомогенно-дисперсной туши и петлю иссл. к-ры, взвешенной в физрастворе. Капли тщательно смешивают краем шлифованного стекла и им же делают тонкий мазок. Мазок высушивают, фиксируют метанолом или смесью Никифорова и окрашивают по Гинсу карболовым фуксином, разведенным 1:3, в течение 3 - 5 мин. Затем промывают водой, высушивают, микроскопируют. При наличии капсул на дымчатом фоне видны неокрашенные овальные участки, внутри к-рых располагаются окрашенные в красный цвет бактерии. Этим способом выявляют капсулу толщиной 0,5 мкм и более. Микрокапсулу и слизистый слой определяют серол. реакциями, в частности РА на стекле с противокапсульными с-ками и реакцией набухания капсулы