- •1.Обзор литературы
- •2.Методы исследований
- •2.1.Методики химического анализа
- •2.2.Методики токсикологического анализа
- •2.3 Методики фитотоксичности анализа
- •2.4 Методики микробиологического анализа
- •2.5.Методики аллергических реакций
- •2.6 Методика визуального анализа
- •2.7 Методика клинически лабораторного анализа
- •3. Экологическая оценка освежителей воздуха
- •3.1 Анкетирование
- •3.2 Поступление в торговую сеть освежителей воздуха
- •3.3 Характеристика используемых освежителей воздуха
- •3.4.Результаты исследования химического состава растворов с освежителями воздуха
- •3.5.Результаты токсикологического исследования освежителей воздуха
- •3.6. Результаты исследования фитотоксичности освежителей воздуха
- •3.7.Исследование бактериологических свойств освежителей воздуха
- •3.8 Определение аллергической реакции организма на освежители воздуха
- •3.9 Результаты визуального анализа на мышах
- •3.10 Результаты клинически лабораторного анализа
- •4. Рекомендации
2.Методы исследований
2.1.Методики химического анализа
Методики химического анализа, используемые при исследовании, приведены в табл. 1. Методики количественного анализа приведены в табл.2.
2.2.Методики токсикологического анализа
Токсичность исследуемых проб определяют при помощи рачков семейства ветвистоусых – дафний. Для этого в соответствии с методикой в 50 мл исследуемой пробы помещают по 10 дафний. Основной показатель токсичности – выживаемость рачков. Через каждые 24 часа в течение 72 часов производятся подсчёт живых дафний. Время гибели отмечают по иммобилизации. Во время опыта рачков не кормят.
2.3 Методики фитотоксичности анализа
Фитотоксичность воды - свойство подавлять рост и развитие высших растений при загрязнении токсинами, фитопатогенными микроорганизмами.
Каждая из проб воды с освежителями воздуха помещается в чашки Петри, накрывается фильтровальной бумагой. На внешнюю поверхность фильтровальной бумаги помещаются по 10 штук семян кресс-салата. Затем чашки Петри покрываются крышками и оставляются на 3-4 дня в помещении с постоянной температурой (плюс 200С – плюс 250С).
Через 3 - 4 дня подсчитывается число ростков в опытных и контрольном образцах, определяется процент всхожести семян. Сведения заносятся в таблицу. Кроме того, замеряются длины ростков и корней в исследуемых и контрольном образцах. Далее рассчитывается среднее значение длины ростков, результаты также заносятся в таблицу. Затем определяли во сколько раз процент всхожести семян в контроле больше, чем в пробе К1 , а также во сколько раз средняя длина ростков на образцах исследуемых проб воды отличается от длины ростков в контрольной пробе(К2). Степень фитотоксичности проб воды устанавливается, исходя из следующих условий:
при К1 и К2 < 1,1 – проба не фитотоксична (удовлетворительная экологическая ситуация);
при К1 и К2 от 1,4 до 2 - проба фитотоксична (чрезвычайная экологическая ситуация);
при К1 и К2 > 2 – проба с высокой фитотоксичностью (экологическое бедствие).
2.4 Методики микробиологического анализа
Для микробиологического анализа требуются следующие материалы и оборудование:
1. Стеклянные чашки Петри. ГОСТ-10973-75
2. Пипетки вместимостью 10 мл с ценой деления 0,1 мл ,ГОСТ-2092-74
4. Среды казеиновый агар, среда Эндо.
В основе микробиологического анализа лежит метод посева исследуемого материала на плотные питательные среды:
• казеиновый агар (эта питательная основная среда общего микробного числа исследуемого раствора использовалась для определения.);
• среда Эндо (Она предназначена для выделения энтеробактерий; селективность определяется наличием сульфида натрия и фуксина основного, которые подавляют рост грамположительных бактерий).
Посев материала для исследований энтеробактерий производят следующим образом. Предварительно в двойную питательную среду (казеиновый агар + рыбий жир) садят кишечную палочку и оставляют на одни сутки. На следующий день этот материал набирают в пипетку, приоткрывают чашку Петри, наносят 0,1 мл на среду и равномерно распределяют шпателем по поверхности среды. При посевах соблюдают стерильность, чтобы с одной стороны не загрязнить свои посевы посторонней микрофлорой, а с другой - не явиться источником инфекции для окружающих. Те же самые операции проделываем с молочно кислой бактерией.