- •Лабораторная работа № 1 цветные реакциии на белки и аминокислоты.
- •1. Биуретовая реакция
- •2. Нингидриновая реакция.
- •3. Ксантопротеиновая реакция (Мульдера).
- •4. Реакция Фоля.
- •5. Реакция на тирозин (Миллона).
- •Вопросы для самоконтроля.
- •Лабораторная работа № 2. Хроматографический метод определения аминокислот
- •Радиальная (распределительная) жидкостная хроматография
- •Вопросы для самоконтроля:
- •Лабораторная работа № 3 кислотный гидролиз и формоловое титрование по серенсену.
- •1. Кислотный гидролиз.
- •2. Формоловое титрование.
- •Вопросы для самоконтроля:
- •Лабораторная работа № 4 физико-химические свойства белков.
- •1. Осаждение белков при кипячении.
- •2. Реакции осаждения белков при комнатной температуре нейтральными солями — высаливание.
- •3. Диализ белка.
- •4. Осаждение белков солями тяжелых металлов.
- •5. Осаждение белков концентрированными минеральными кислотами
- •6. Осаждение белков органическими кислотами.
- •7. Осаждение белков органическими растворителями.
- •8. Осаждение белков алкалоидными реактивами.
- •Вопросы для самоконтроля:
- •Лабораторная работа № 5. Строение сложных белков.
- •Н уклеопротеиды
- •1. Гидролиз нуклеопротеидов.
- •2. Качественные реакции на открытие составных частей нуклеопротеидов.
- •Вопросы для самоконтроля:
- •Лабораторная работа № 6 ферменты.
- •1. Влияние реакции среды на активность амилазы.
- •2. Специфичность действия ферментов.
- •3. Влияние ингибиторов и активаторов на активность амилазы.
- •4. Активность α-амилазы слюны (количественное определение).
- •Вопросы для самоконтроля:
- •Лабораторная работа № 7 витамины.
- •1. Качественная реакция на витамин в2.
- •2. Качественная реакция на витамин рр.
- •3. Качественная реакция на витамин в6.
- •4. Качественная реакция на витамин с.
- •5. Качественная реакция на викасол (жирорастворимые витамины).
- •Вопросы для самоконтроля:
- •Лабораторная работа № 8 липиды.
- •1. Растворимость и эмульгирование жиров.
- •2. Гидролиз (омыление) жира.
- •3. Открытие в гидролизате составных частей жира.
- •4. Открытие ненасыщенности жирных кислот в жире.
- •5. Получение нерастворимых солей высших жирных кислот.
- •6. Гидролиз лецитина (фосфатидилхолина).
- •7. Качественная реакция на холестерин (реакция Шиффа).
- •Вопросы для самоконтроля:
- •Лабораторная работа № 9 углеводы.
- •1. Доказательство наличия гидроксильных групп
- •2. Доказательство наличия карбонильных групп (альдегидная проба Мура).
- •3. Реакции восстановления металлов и окисления моносахаридов.
- •3А. Проба Троммера.
- •3Б. Проба Фелинга.
- •3В. Получение серебряного зеркала.
- •3Г. Проба Подобедова — Молиша с α- нафтолом.
- •3Д. Проба Барфеда.
- •4. Качественные реакции на дисахариды
- •4А. Реакции на сахарозу.
- •4Б. Реакция на мальтозу и лактозу
- •5. Цветные реакции на крахмал и гликоген.
- •6. Гидролиз крахмала.
- •7. Гидролиз клетчатки.
Вопросы для самоконтроля:
Что такое гидролиз белка, какие виды гидролиза вы знаете?
Каково практическое значение гидролиза белков?
Чем отличаются полный и неполный гидролиз?
Для чего служит метод формолового титрования? На чем он основан?
О чем говорит розовое окрашивание гидролизата белка?
Лабораторная работа № 4 физико-химические свойства белков.
Теоретическая часть.
Физико-химические свойства белков в значительной степени определяются их высоким молекулярным весом, амфотерностью аминокислот и лабильностью вторичной и третичной структур белка. Водородные связи, поддерживающие вторичную структуру белка, очень не прочны и легко разрушаются уже при нагревании раствора белка до 60-70°С или при действии 8М раствором мочевины. В результате наблюдается, так называемое, плавление вторичной структуры белка, ведущее к изменению таких физико-химических свойств раствора белка, как светорассеяние, вязкость и оптическое вращение. Белок с разрушенной вторичной структурой становится гидрофобным и имеет тенденцию выпадать в осадок.
Существует большое количество разнообразных реакций осаждения белков. Они делятся на обратимые и необратимые.
Значение реакций осаждения белков в том, что они дают возможность:1) научить свойства белков, 2) освободить жидкость от присутствия белка, что бывает необходимо при некоторых исследованиях, 3) установить наличие белка, например в моче при различных патологических состояниях. Реакции осаждения белков с помощью концентраций сернокислого аммония или других нейтральных солей позволяют разделить отдельные белковые фракции: альбумины и глобулины.
Практическая часть.
1. Осаждение белков при кипячении.
Принцип метода: Присутствие белков открывается кипячением, поскольку почти все белки свертываются при нагревании в нейтральной или слабокислой среде. В сильнокислых и щелочных средах раствор белка при кипячении не коагулирует и может дать осадок лишь при добавлении достаточного количества какой-нибудь нейтральной соли (NаС1). Устойчивость белка в растворе зависит от приобретения положительного заряда в случае сильно кислой среды и усиления отрицательного — в щелочной среде.
Полное и быстрое осаждение белков происходит при достижении изоэлектрической точки. Изоэлектрической точкой называется такое значение рН, при котором частицы белка не передвигаются в электрическом поле ни к аноду, ни к катоду, и, следовательно, суммарный электрический заряд их равен нулю. Для большинства белков изоэлектрическая точка соответствует слабокислой среде (рН около 5), за исключением протаминов и гистонов, имеющих изоэлектрическую точку в щелочной среде (рН около 8). Это объясняется тем, что протамины и гистоны в отличие от других белков содержат избыток диаминомонокарбоновых кислот — аргинина, лизина, гистидина, обуславливающих щелочной характер белка.
Итак, важную роль в свертывании белков при нагревании играет концентрация водородных ионов, т.е. реакция среды, и присутствие солей.
Реактивы: раствор яичного белка; уксусная кислота, 1% раствор; едкий натр, 10% раствор; хлористый натрий, насыщенный раствор.
Ход работы: Эта работа проводиться с целью выяснения значения рН для растворимости белков при нагревании. Сравнивают отношение к нагреванию нейтральных, слабокислых и сильнокислых, а также щелочных растворов белка.
В 5 пробирок наливают по 5 капель раствора яичного белка (без NаС1). В первой пробирке нейтральный раствор белка нагревают до кипения. Жидкость мутнеет, т.е. наблюдается опалесценция, поскольку разрушаются водные оболочки вокруг белка, и происходит укрупнение взвешенных его частиц. Мицеллы белка несут заряд и удерживаются во взвешенном состоянии.
Во второй пробирке раствор белка нагревают до кипения и прибавляют 1каплю 1% раствора уксусной кислоты для слабого подкисления. При стоянии выпадает хлопьевидный осадок белка. Частицы белка теряют заряд, так как приближаются к изоэлектрическому состоянию.
В третью пробирку добавляют 5 капель 1% раствора уксусной кислоты для получения сильнокислой реакции среды. При кипячении жидкости осадка не образуется, поскольку белковые частицы перезаряжаются и несут положительный заряд, что повышает их устойчивость.
В четвёртую пробирку приливают 5 капель 1% раствора уксусной кислоты и 2 капли насыщенного раствора хлористого натрия и нагревают. Выпадает белый хлопьевидный осадок белка, так как частицы белка теряют заряд вследствие взаимодействия белка с разноименно заряженными ионами NaС1.
В пятую пробирку добавляют 2 капли 10% раствора едкого натра, создавая щелочную среду. При кипячении жидкости осадка не образуется, поскольку в щелочной среде отрицательный заряд на частицах белка увеличивается.
Указания к составлению отчета. Отметить положительный результат осаждения плюсом, а отрицательный — минусом. Записать в таблицу результаты осаждения белков при кипячении в различных средах и указать в каждом случае причины появления или отсутствия осадка белка.
Осаждение белка при кипячении при различных реакциях среды.
Нейтральная среда |
Слабокислая среда
|
Сильнокислая среда |
Сильнокислая + электролит
|
Щелочная среда |