Добавил:
Upload Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:
Metody_obschey_bakteriologii.doc
Скачиваний:
1057
Добавлен:
14.02.2015
Размер:
1.5 Mб
Скачать

Способы заражения

В зависимости от цели исследования пользуются различ­ными способами заражения: внутрикожным, подкожным, внутримышечным, внутрибрюшинным, внутривенным, пероральным или интраназальным и др. При перечисленных способах, за исключением перорального и интраназального, заражение осуществляется с помощью шприца.

Взвесь микробной культуры, эмульсию из зараженных ор­ганов или кровь больного осторожно набирают в шприц, по­сле чего конец иглы закрывают кусочком ваты, смоченным 5% раствором хлорамина, 5% раствором карболовой кисло­ты или спиртом. Повернув шприц иглой кверху, осторожно выпускают из него пузырьки воздуха. Загрязненную вату бросают в банку с дезинфицирующим раствором.

Наркоз лабораторных животных

Для наркоза чаще всего применяют эфир или хлороформ. Мышей усыпляют в банке с притертой пробкой, куда опу­скают кусочек ваты, смоченной эфиром или хлороформом.

Эфиром чаще всего пользуются для наркоза мышей, крыс, морских сви­нок, кроликов и собак. Кошек обычно наркотизируют хлорофор­мом, но можно пользоваться для этой цели смесью спирта с хлороформом и эфиром (в равных объемах).

Применяют также 10% раствор уретана под кожу в дозах: для мышей—0,15 мл, для крыс—2-3 мл, для морских свинок—1,5-3 мл и для кроликов—8-12 мл. Наркоз наступает обычно через 45—60 минут. Несомненно, существуют и более современные схемы и препараты для обезболивания и наркоза лабораторных животных.

Внутрикожный метод

При этом способе при­меняют тонкие (No18-20) острые иглы с небольшим скосом.

После тщательного выстригания или бритья место инъекции протирают спиртом, захватывают пальцами левой руки кож­ную складку, в которую и вводят, почти параллельно складке, очень тонкую иглу. При попадании в кожу материал поступает только при довольно силь­ном надавливании на поршень шприца и образует на месте инъекции возвы­шение эпидермиса в виде пузырька (горошины). Если такого пузырька не об­разовалось, значит введенный материал попал не в толщу ко­жи, а в подкожную клетчатку. Материал внутрикожно вводят в небольших количествах (0,1— 0,2 мл).

Иногда исследуемый мате­риал втирают в неповрежден­ную или скарифицированную кожу, соответствующий участок которой предварительно осво­бождают от шерсти, обрабаты­вают спиртом и хорошо высу­шивают. Скарификацию кожи производят скальпелем, оспен­ным пером или хирургической иглой путем нанесения насечек, царапин. Материал (1—2 капли) втирают стеклянной палочкой или шпателем в недоступных слизыванию местах.

Подкожный способ заражения

Кожу в месте введения материала берут у ее основания, приподнимают I и II паль­цами левой руки. Иглу шприца вкалывают снизу образовав­шейся складки. Проколов кожу и пройдя вглубь на несколь­ко миллиметров, иглу отклоняют вправо или влево и затем медленно вводят материал, содержащийся в шприце. Изме­нять направление иглы под кожей рекомендуется для того, чтобы введенное вещество не выступало через прокол кожи наружу. Затем складку кожи опускают, на место укола на­кладывают ватный тампон, смоченный спиртом или спирто­вым раствором, а иглу быстро вынимают. Наиболее удобны­ми местами для подкожного введения материала у кроликов и морских свинок являются область спины и боковые поверх­ности несколько ниже подмышечных впадин, у крыс и мы­шей—область спины, крестца и затылка. Количество жид­кости, вводимой подкожно, не должно превышать 30 мл для кроликов, 15 мл — для морских свинок, 10 мл—для крыс и 1 мл — для мышей.

Соседние файлы в предмете Микробиология