- •Занятие № 1 приготовление питательных сред и методы их стерилизации особенности культивирования микроорганизмов
- •Ход работы
- •Занятие № 2 приготовление живых и фиксированных препаратов микроорганизмов и знакомство с их морфологией
- •Ход работы Задание № 1. Провести прижизненное изучение бактериальных клеток следующими методами, сделать рисунки:
- •Задание № 2. Приготовить фиксированный препарат Вас. Subtilis, Вас. Subtilis var mesentericus, St. Lactis, s. Cerevisiae, e.Coli (рис. № 1, 2, 3, 4 приложения), сделать рисунки.
- •Занятие № 3
- •Ход работы
- •Занятие № 4 количественный учет микрофлоры воздуха и воды определение микробного числа
- •Ход работы
- •Занятие № 5 получение чистой культуры микроорганизмов нефелометрический метод количественного учета микроорганизмов
- •Ход работы
- •Занятие № 6 санитарно-бактериологическое исследование пищевых продуктов
- •Ход работы
- •Занятие № 7 почвенные микробоценозы
- •Ход работы
- •Занятие № 8 превращение микроорганизмами соединений азота
- •Ход работы
- •Занятие № 9 превращение микрорганизмами соединений азота
- •Ход работы
- •Занятие № 10 превращение микроорганизмами соединений углерода
- •Ход работы
- •Занятие № 11 превращение микроорганизмами соединений углерода
- •Ход работы
- •Занятие № 12 экология микроорганизмов
- •Занятие № 13 определение чувствительности бактерий к антибиотикам
- •Ход работы
- •Занятие № 14 основы медицинской микробиологии
Занятие № 11 превращение микроорганизмами соединений углерода
Цель: Изучить особенности различных видов брожения и морфологию их возбудителей.
Задачи:
Изучить механизм брожения пектиновых веществ и морфологию его возбудителей.
Изучить особенности превращения целлюлозы в аэробных условиях и морфологию его возбудителей.
Изучить особенности брожения целлюлозы в анаэробных условиях и морфологию его возбудителей.
Материалы и оборудование. Накопительные культуры микроорганизмов, осуществляющих брожение пектиновых веществ, разложение клетчатки, микроскопы, оборудование для окрашивания препаратов.
Основные понятия. Маслянокислое брожение, пектин, пектиназа, целлюлоза, целлюлаза.
Ход работы
Задание № 1. Изучить микроорганизмы, участвующие в брожении пектиновых веществ, сделать рисунок. Для выделения пектиноразрушающих бактерий используют льняную или крапивную питательную среду. Из стеблей готовят снопики длиной 5-7 см, помещают в пробирки, заливают водопроводной водой и кипятят 10-15 мин. Кипячением удаляют экстрактивные вещества, которые могут служить источником углерода для сопутствующих маслянокислых бактерий. Воду сливают, снопики заливают новой порцией воды, пробирки плотно закрывают ватными пробками и стерилизуют в автоклаве при 1 атм 20 мин. Когда пробирки остынут, среду заражают кусочком свежей соломы льна. Зараженные пробирки помещают в термостат при температуре 35°С. Через 3-5 суток начинается процесс пектинового брожения, жидкость мутнеет и пенится.
Микроскопирование. Для изучения морфологии бактерий пектинового брожения готовят прижизненные препараты. Снопик вынимают из пробирки, отжимают каплю жидкости на предметное стекло, готовят фиксированные и прижизненные препараты (в растворе Люголя). На препарате видны клетки Clostridium pectinovorum и Clostridium felsineum, вегетативные и спорулирующие, окрашенные иодом на гранулезу в темно-синий цвет (рис. № 9 приложения).
Задание № 2. Изучить микроорганизмы, участвующие в разложении клетчатки (анаэробные условия), сделать рисунок. Для получения накопительной культуры анаэробных форм целлюлозоразрушающих бактерий используют среду Имшенецкого. В круглую плоскодонную колбу вносят около 1-2 г фильтровальной бумаги или вату, и заливают доверху средой следующего состава (в г/л): KNH4HPO4 – 1,0; КН2РО4 – 0,5; К2НРО4 – 0,5; СаС12 – 0,03; пептон – 5; MgSO4 – 0,4; СаСО3 – 2,0; NaCl – 0,5; MnSО4 и FeSO4 следы; рН среды 7,0-7,4. Среду заражают небольшим количеством почвы, закрывают колбу корковой пробкой с отверстием для выхода газов и ставят в термостат при 30-35°С. Элективные условия в данном случае определяются присутствием целлюлозы – источника углерода, который может потребляться только специфичными целлюлозоразлагающими бактериями, имеющими фермент целлюлазу, а также анаэробными условиями. Пептон, введенный в среду в небольшом количестве, сильно стимулирует процесс брожения. Через 7-10 сут начинается брожение целлюлозы, которое длится 2-3 недели. Фильтровальная бумага по мере сбраживания слегка ослизняется, желтеет и постепенно разрушается.
Микроскопирование. Микроскопируют кусочек бумаги. В анаэробных условиях процесс разложения клетчатки осуществляется бактериями рода Clostridium. Cl. omelianskii (рис. № 9 приложения) имеет вид длинных палочковидных клеток до 8 мкм, в старых культурах длина около 10-15 мкм, расположены одиночно или соединены в нити. Споры шаровидные, формируются на конце клетки, клетка принимает форму барабанной палочки. Выделяется из почвы и воды. Оптимальная температура роста 30-35°С.
Задание № 3. Изучить микроорганизмы, участвующие в разложении клетчатки (аэробные условия), сделать рисунок. Для выделения аэробных клетчаткоразрушающих бактерий используют питательную среду Гетчинсона. Состав среды (г/л): К2НРО4 – 1,0; NaCl – 0,1; СаСl2 – 0,1; FeCl3 – 0,01; MgSO4 – 0,3; NaNO3 – 2,5; рН среды 7,2-7,3. Стерильную питательную среду разливают в конические колбы слоем 1,5-2,0 см, среду заражают комочком почвы и на поверхность среды опускают складчатый фильтр конусом вверх. Колбы закрывают ватными пробками и помещают в термостат при температуре 25-30°С на 10-14 суток. На границе питательной среды и воздуха создаются оптимальные условия питания и аэробного дыхания клетчаткоразрушающих бактерий. В этой зоне наиболее интенсивно идет процесс разрушения фильтровальной бумаги. Через 8-10 суток на фильтре появляются желто-оранжевые пятна колоний клетчаткоразрушающих бактерий. Бумага разлагается, и фильтр постепенно оседает на дно.
Микроскопирование. Из разрушенных масс клетчатки в колбе микробиологической петлей готовят мазок в капле жидкости. Чаще всего на препарате обнаруживаются представители порядков Мухоbacteriales и Cytophagales группы скользящих бактерий (рис. № 10 приложения). Род Cytophaga представлен длинными палочковидными клетками с заостренными концами, несколько изогнутыми (2-10 мкм). Колонии желтого, оранжевого, коричнево-бурого цвета, гладкие, слизистые.
Род Сellvibrlo представлен мелкими, слегка изогнутыми подвижными палочками (2-4 мкм). Колонии охряножелтые слизистые. Рол Cellfalcicula имеет вид коротких толстых изогнутых палочек с заостренными концами (2,0*0,7 мкм).
Род Sorangium в молодой культуре имеет вид толстых слегка изогнутых палочковидных клеток с закругленными концами (2-5 мкм). При старении культуры образуются плодовые тела, состоящие из микроцист. Палочковидные клетки укорачиваются, покрываются толстой оболочкой, приобретая неправильные очертания. Колонии ярко-оранжевого, фиолетового цвета.
Род Polyangium представлен почти прямыми палочковидными клетками с закругленными концами (3,5-8 мкм). При старении формируются овальные микроцисты, которые соединяются и плодовые тела грушевидной формы. Плодовые тела желтого, оранжевого цвета, сидят непосредственно на субстрате.
Помимо бактерий, в аэробном разрушении клетчатки участвуют плесневые грибы Aspergillus, Penicillium, Fusarium, Cladosporium, Trichoderma и некоторые актиномицеты.
Контрольные вопросы см. занятие № 10.