- •Студентів спеціальностей
- •7.091704 - Технологія бродильних виробництв та виноробства,
- •Лабораторна робота № 1 Техніка безпеки в лабораторії технічної мікробіології. Будова мікробіологічного мікроскопу. Правила роботи з імерсійним мікроскопом
- •Техніка безпеки в лабораторії технічної мікробіології.
- •2. Будова мікроскопа і техніка мікроскопування
- •3. Основні правила користування світловим мікроскопом
- •4.Спеціальні методи мікроскопії
- •Лабораторна робота № 2 Класифікація мікроорганізмів. Приготування твердих та рідких живлячих середовищ. Методи стерилізації
- •1. Класифікація мікроорганізмів.
- •2. Поживні середовища
- •2.1. Рецепти приготування поживних середовищ
- •2.3. Методи стерилізації поживних середовищ, посуду та інструментів
- •Лабораторна робота № 3 Методи приготування і забарвлення біологічних препаратів. Приготування (посів) біологічних об'єктів для вивчення морфології міцеліальних грибів і дріжджів
- •1. Прижиттєві препарати
- •2. Фіксовані забарвлені препарати
- •Лабораторна робота № 4 Морфологія міцеліальних грибів і дріжджів. Приготування біологічних об'єктів для вивчення мікрофлори повітря, води та грунту
- •1. Дослідження міцеліальних грибів
- •1.2. Вивчення морфологічних властивостей грибів.
- •2. Дослідження дріжджеподібних грибів
- •Визначення розмірів мікробної клітини
- •Проведення роботи
- •2.2. Визначення включень глікогену в клітинах дріжджів.
- •Лабораторна робота № 5 Вивчення мікрофлори повітря, води та грунту. Приготування об'єктів для вивчення спиртового і маслянокислого бродіння
- •1. Дослідження мікрофлори повітря
- •2. Дослідження мікрофлори води
- •3. Дослідження мікрофлори грунту
- •Оцінка санітарно-мікробіологічного стану грунту.
- •Лабораторна робота № 6 Спиртове і маслянокисле бродіння. Приготування об'єктів для вивчення молочнокислого бродіння
- •1. Спиртове бродіння
- •2. Маслянокисле бродіння
- •Лабораторна робота № 7 Молочнокисле бродіння. Окислення мікроорганізмами органічних сполук
- •Лабораторна робота № 8 Аналіз антимікробної дії факторів зовнішнього середовища
- •1. Температура середовища
- •1.2.. Міцеліальні гриби.
- •2. Кислотність середовища
- •2.2. Посів бактерій.
- •2.3. Вивчення результату впливу кислотності середовища на культуру дріжджів і гнильних бактерій.
- •3.ОсмотиЧний тиск
- •3.2. Вплив концентрації повареної солі на бактерії.
- •3.3. Вплив концентрації глюкози на міцеліальні гриби.
- •4.Антисептики
- •4.1. Вплив сорбінової кислоти на міцеліальні гриби (чи дріжджі).
- •4.2. Вплив фенолу на безспорові бактерії.
- •4.3. Вплив фенолу на спорові бактерії.
- •5.Антибіотики і фітонциди
- •5.1 . Бактеріальна дія антибіотиків.
- •5.2. Антимікробна дія фітонцидів.
- •Лабораторна робота № 9 Розпізнавання мікроорганізмів
- •Визначення мікроорганізмів за культуральними і морфологічними ознаками.
Оцінка санітарно-мікробіологічного стану грунту.
Досі немає загальноприйнятих затверджених нормативів, які б слугували за критерій оцінки санітарно-мікробіологічного стану грунту. Донедавна з цією метою використовували, а подекуди використовують і нині, приблизну санітарну оцінку грунту (табл. 5.3).
Таблиця 5.3
Забрудненість грунту за колі-титром і титром клостридіум перфрінгенс
(за Є. М. Мішустіним і М. І. Перцовського)
Грунт |
Титр кишкової палички |
Титр клостридіум перфрінгенс |
Чистий (відносно) Помірно забруднений Дуже забруднений |
1,0 і вище 0,01 - 0,001 0,001 і нижче |
0,1 і вище 0,001 - 0,0001 0,0001 і нижче |
Запитання до лабораторної роботи 5
Як розподіляються методи (кількісні та якісні) дослідження мікрофлори в повітрі та інших природних середовищах ?
Які ви знаєте методи дослідження мікрофлори в повітрі?
В чому суть дослідження мікрофлори повітря методом Ю. А. Кротова?
Як дослідити мікрофлору повітря седиментаційним методом (за Р. Кохом)?
Які види бактерій і грибів існують в повітрі?
Як обчислити кількість мікроорганізмів у повітрі?
Які визначення проводять при санітарно-бактеріологічному аналізі води?
Яку кількість мікробів (не більше) повинна містити чиста водопровідна вода?
Як визначити загальну кількість бактерій у воді?
Як визначити загальну кількість бактерій групи кишкової палички?
Методи лослідження мікрофлори грунту.
Перерахувати основні види бактерій, які містяться в грунті.
Суть бактеріоскопічного методу С. М. Виноградського.
Метод підрахунку на агарових пластинках.
Чим відрізняється метод пластинок обростання (за М. Г. Холодним) від інших методів визначення бактерій в грунті? Як проводять вимірювання за цим методом?
Груповий аналіз мікрофлори грунту.
Як проводять кількісний і якісний аналіз груп мікроорганізмів?
Облік бактерій у ризосфері за методом М. О. Красильникова.
Лабораторна робота № 6 Спиртове і маслянокисле бродіння. Приготування об'єктів для вивчення молочнокислого бродіння
1. Спиртове бродіння
Спиртове бродіння спричинюється дріжджами, а також деякими видами бактерій Sarcina ventriculi і мукорових грибів. Найбільш поширеними збудниками цього процесу є дріжджові гриби — сахароміцети (Saccharomyces). Це одноклітинні організми округлої або овальної форми, факультативні анаероби, розмножуються нестатевим і статевим шляхом.
Дріжджі поширені у природі: вони трапляються на листках, квітках, плодах, на харчових продуктах, у повітрі, грунті тощо. Описано понад 200 видів сахароміцетів. Найважливіше значення для людини має Saccharomyces cerevisiae. Найхарактернішою ознакою всіх видів дріжджів цього роду є їхня здатність до активного зброджування моно- і дисахаридів з утворенням етилового спирту і СО2 за такою схемою:
С6Н12О6 ->2СН3СН2ОН+2СО2 +130 кДж.
Оптимальна температура для спиртового бродіння дорівнює 28-35 °С. Серед дріжджів, які застосовуються у виробництві, розрізняють — верхові (хлібопекарські, спиртові, винні) та низові (пивні). На діяльності дріжджів основані такі виробництва: винокуріння, виноробство, пивоваріння, випікання хліба тощо.
Матеріали та обладнання: 1) мікроскопи; 2) предметні та накривні скельця; 3) електроплитка; 4) прилад для спиртового бродіння; 5) колби (250 мл); 6) терези з важками; 7) спиртівки; 8) пробірки; 9) 10 %-й розчин цукру; 10) 0,1 %-й розчин КОН; 11) баритова вода; 12) кристалічний йод; 13) H2SO4; 14) дріжджі.
Проведення роботи. Для вивчення спиртового бродіння часто використовують штучне синтетичне середовище такого складу (в об'ємних процентах):
Сахароза 15,0
Пептон 0,5
КН2РО4 0,3
MgSO4 0,1
У конічну колбу об'ємом 250 мл наливають 100 мл цього середовища, вносять туди 0,5 г пресованих дріжджів і закривають колбу гумовою пробкою, в яку вставлено затвор Мейселя з гумовим клапаном Бунзена. Змонтований прилад зважують і розміщують у термостаті при температурі 25 °С.
За 20—25 хв до початку занять розводять пресовані дріжджі в 10 %-му розчині сахарози, підігрітому до температури 29 °С. У колбу об'ємом 250 мл наливають 50—100 мл 15 %-го розчину сахарози і додають 10 мл розведених або 3—5 г свіжих пресованих дріжджів. Колбу закривають гумовою пробкою з газовідвідною трубкою. Нижній кінець цієї трубки занурюють у посудину з водою. Для збирання СО2 нижній кінець трубки з'єднують з пробіркою (рис. 43). Для прискорення бродіння колбу ставлять на водяну баню з температурою 30—35 °С. В результаті життєдіяльності дріжджів через 10-20 хв з колби починає виділятися СО2. Його збирають у пробірку і визначають за допомогою баритової або вапняної води.
Для цього у пробірку з газом додають 5-10 мл баритової води і збовтують. Відбувається реакція СО2 + Ва(ОН)2 -» ВаСО3 + Н2О, в результаті якої утворюється білий осад карбонату барію. Визначення кількості СО2, що утворюється під час бродіння, найчастіше проводять за допомогою зважування. Для цього треба зважити колбу перед початком і після закінчення бродіння, виявлена при цьому різниця вказує на кількість СО2, що утворився під час бродіння.
Після цього неважко визначити кількість збродженого цукру і кількість спирту, що утворилися в результаті бродіння.
Рис. 6.1. Прилад для вивчення спиртового бродіння
1.1. Кількісне і якісне визначення наявності етилового спирту в бродильному субстраті. Після зважування бродильних колб і визначення СО2 культуральну рідину переносять у колбу об'ємом 700— 800 мл для перегонки етилового спирту, яку з'єднують зі зворотним холодильником, встановлюють на азбестовій сітці над газовою горілкою і нагрівають. Рідина починає кипіти, при цьому спирт, що випаровується, охолоджується в холодильнику і краплями стікає в приймальну колбу.
Для якісного визначення спирту в бродильному субстраті по закінченні бродіння в пробірку з 5—10 мл бродильної рідини додають таку саму кількість 20 %-го розчину Na2CO3 і 0,1 г порошку кристалічного йоду. Суміш збовтують і нагрівають до повного розчинення йоду. Після цього пробірку охолоджують. За наявності спирту в ній утворюється осад з дрібненьких світло-жовтих кристаликів з характерним різким запахом йодоформу. Процес утворення йодоформу відбувається за такою схемою:
С2Н5ОН + І2 = СН3СНО + 2НІ, СН3СНО + ЗІ2 = СІ3СНО + ЗНІ,
СІ3СНО + NaOH = CHI3 + HCOONa.
У бродильному субстраті можна визначити також наявність оцтового альдегіду. Для цього у пробірку з 5 мл бродильної рідини додають кілька крапель H2SO4 і кристалик К2Сг2О7. Суміш нагрівають. При цьому виділяється СН3СНО, який легко можна визначити за запахом або реакцією на нітрат срібла ( клаптик фільтрувального паперу, змочений в аміачному розчині AgNO3, за наявності оцтового альдегіду швидко чорніє).
1.2. Мікроскопічне вивчення дріжджів. Водночас з виявленням продуктів спиртового бродіння доцільно вивчати морфологію збудників цього процесу. З цією метою з бродильної рідини виготовляють мікропрепарати «роздавлена крапля» і вивчають під мікроскопом з імерсійною системою. В полі зору добре видно дріжджові клітини в стадії брунькування (нестатевого розмноження). Препарати зарисовують у протоколах проведення робіт.