Т а б л и ц а 7. Среды рекомендуемые для первичного выделения анаэробных микроорганизмов

Среда	Назначение
Кровяной агар для бруцелл (CDC анаэробный кровяной агар, кровяной агар Шэдлера) (BRU agar)	Неселективная, для выделения анаэробов, присутствующих в материале
Желчно-эскулиновый агар для бактероидов (ВВЕ agar)	Селективная и дифференциаль­ная; для выделения бактерий группы Bacteroides fragilis
Канамицин-ванкомицин кровяной агар (KVLB)	Селективная для большинства неспорообразующих грамотрицательных бактерий
Фенил-этиловый агар (PEA)	Ингибирует рост протея и дру­гих энтеробактерий; стимули­рует рост грамположительных и грамотрицательных анаэробов
Тиогликолевый бульон (THIO)	Для специальных ситуаций
Желточный агар (EYA)	Для выделения клостридий
Циклосерин-цефокситин-фруктозный агар (CCFA) или циклосеринманнитовый агар (СМА) или циклосеринманнитовый кровяной агар (СМВА)	Селективная для С. difficile
Кристалл-виолет-эритромици-новый агар (СVЕВ)	Для выделения Fusobacterium nucleatum и Leptotrichia buccalis
Бактероид гингивалис агар (BGA)	Для выделения Porphyromonas gingivalis

Т а б л и ц а 8. Селективные агенты для облигатных анаэробов

Организмы	Селективные агенты
Облигатные анаэробы из клинического материала	неомицин (70мг/л) налидиксовая кислота (10 мг/л)
Actinomyces spp.	метронидазол (5 мг/л)
Bacteroides spp. Fusobacterium spp.	налидиксовая кислота ( 10 мг/ л) + ванкомицин (2.5 мг/л)
Bacteroides urealytica	налидиксовая кислота (10 мг/ л) тейкопланин (20 мг/ л)
Clostridium difficile	циклосерин (250 мг/ л) цефокситин (8 мг/ л)
Fusobacterium	рифампицин (50 мг/л) неомицин (100 мг/ л) ванкомицин (5мг/ л)

Учет результатов осуществляют путем описания культуральных свойств выросших микроорганизмов, пигментации колоний, флуоресценции, гемолиза. Затем из колоний готовят мазок, окрашивают по Граму и таким образом выявляют грамотрицательные и грамположительные бактерии, микроскопируют и описывают морфологические свойства. В дальнейшем микроорганизмы каждого типа колоний пересевают и культивируют в тиогликолсевом бульоне с добавлением гемина и витамина К. Морфология колоний, присутствие пигмента, гемолитические свойства и характеристика бактерий при окраске по Граму позволяют предварительно определить и дифферен­цировать анаэробы. В результате чего все анаэробные микроорганизмы можно разделить на 4 группы: 1) Гр+ кокки; 2) Гр+ бациллы или коккобациллы: 3) Гр- кокки; 4) Гр- бациллы или коккобациллы (20, 22, 32).

Таблица 9. Длительность инкубации и частота исследования

посевов анаэробных бактерий

Тип культур	Время инкубации*	Частота исследования
Кровь	4	Ежедневно до 7-го и после 14-го
Жидкости	7	Ежедневно
Абсцессы, раны	7	Ежедневно
Дыхательные пути Горло Мокрота Транстрахеальный аспират Отделяемое бронхов	2 1 7 7	Ежедневно Однократно Ежедневно Ежедневно
Урогенитальный тракт Влагалище, матка Простата Уретра Моча	2 2 2 1	Ежедневно Ежедневно Ежедневно Однократно
Фекалии	1	Ежедневно
Анаэробы Бруцеллы Актиномицеты	7 30 21	Ежедневно 3 раза в неделю 1 раз в неделю

*до получения отрицательного результата

На третьем этапе исследований проводят более длительную идентифика­цию. Конечная идентификация основывается на определении биохимиче­ских свойств, физиологических и генетических характеристик, факторов патогенности в тесте нейтрализации токсинов. Хотя полнота идентификации анаэробов может существенно варьировать, некоторые простые тесты с вы­сокой вероятностью позволяют идентифицировать чистые культуры ана­эробных бактерий - окраска по Граму, подвижность, определение чувстви­тельности к некоторым антибиотикам методом бумажных дисков и биохи­мические свойства.