Температура плавления и цвет химических веществ-индикаторов

Наименование веществ-индикаторов	Температура плавления, С	Цвет расплавленного индикаторного вещества
Резорцин, и фуксин кислый	110	Фиолетовый или темно-красный
Бензонафтал и фуксин кислый	110	Темно-красный
Антипирин и фуксин кислый	115	Темно-красный
Мочевина и фуксин кислый	132	Фиолетовый или темно-вишневый
Левомицетин и фуксин кислый	160	Темно-красный или фиолетовый
Тиомочевина	180	Желтый или желто-зеленый

Примечание. Температура плавления может отличаться от указанной в пределах 2 С.

Стерилизация текучим паром применяется для стерилизации сред, содержащих вещества, разлагающиеся при температуре выше 100 С (молоко, аммиачные соли, некоторые углеводы). Стерилизацию проводят в автоклаве при открытом спускном кране и незавинченной крышке. Началом стерилизации считается время с момента закипания воды и поступления пара в стерилизационную камеру. Обработку питательных сред текучим паром проводят по 15–30 мин ежедневно в течение 3 дней подряд. При первой стерилизации погибают вегетативные формы микроорганизмов. После второй погибает основное количество спор, и лишь некоторые споры при этом сохраняются и прорастают в вегетативные особи в процессе хранения питательных сред при комнатной температуре. Последующая стерилизация достаточно надежно обеспечивает стерильность среды.

Тиндализация – дробная стерилизация с применением температуры ниже 100 С, предложенная Тиндалем. Тиндализация применяется для стерилизации питательных сред, имеющих в своем составе вещества, легко разрушающиеся при высокой температуре, например витамины.

Прогревание стерилизуемой питательной среды проводят в водяной бане, снабженной терморегулятором, ежедневно выдерживая по часу при температуре 60–65 С в течение 5 дней или при 70–80 С в течение 3 дней.

В промежутках между прогревами среды выдерживают при температуре 25 – 37 С для прорастания спор в вегетативные формы, которые погибают при последующих прогревах. Холодная стерилизация – это стерилизация фильтрованием или облучением. Такой стерилизации подвергают растворы веществ, которые при нагревании разрушаются или изменяют свои свойства. К ним относятся многие витамины, антибиотики, ферменты и др. Так, например, в случае инфицирования антибиотика нистатина, который используют при микробиологических анализах дрожжей, его следует стерилизовать с помощью мембранной фильтрации.

8.5. Правила работы в микробиологической лаборатории

При работе в микробиологической лаборатории необходимо соблюдение ряда правил.

Необходимо следить за тем, чтобы бактериальная или дрожжевая масса не загрязняла руки, стол и окружающие предметы.

Бактериальная петля после пересева микроорганизмов должна быть прокалена в пламени горелки и поставлена в специальный штатив.

Ватные пробки, закрывающие сосуды с микроорганизмами, не должны своей внутренней частью соприкасаться со столом или руками.

Если пролилась микробная взвесь, необходимо обезвредить ее, используя дезинфицирующие средства (например, карболовую кис-лоту).

Всю рабочую лабораторную посуду, содержащую живые микроорганизмы, после работы необходимо подвергнуть термической обработке в автоклаве.

При работе со спиртовками, особенно в условиях бокса, следует остерегаться воспламенения паров спирта, следить за своевременным заполнением спиртовки, не зажигать ее от другой спиртовки, гасить пламя только специальным колпачком.

В случае воспламенения ватных пробок в пробирках или колбах необходимо немедленно накрыть их полотенцем, перекрыв к ним доступ воздуха.

При работе с сушильными шкафами необходимо помнить, что при обугливании бумаги в шкафу и образовании дыма ни в коем случае не следует открывать дверцу шкафа, нужно только выключить прибор.

Необходимо соблюдать все меры предосторожности при работе с приборами и аппаратами, работающими под давлением. Нельзя, например, открывать крышку автоклава и его краны до полного снижения давления в нем.