- •Глава 1. Обзор литературы (клеточно-молекулярные основы обонятельной трансдукции)
- •Строение органа обоняния
- •1.2. Строение обонятельных клеток
- •Механизмы обонятельной трансдукции
- •Участие обонятельных рецепторных комплексов в рецепции одорантов
- •1.3.2. Роль внутриклеточной сигнальной системы цАмф в рецепции одорантов
- •1.3.2.1. Роль аденилатциклазы в обонятельной рецепции
- •1.3.3. Участие Golf-белка в рецепции одорантов
- •1.3.5. Участие фосфоинозитидного пути передачи сигнала в обонятельных клетках
- •1.3.5.1. Роль фосфолипазы с в обонятельной трансдукции
- •1.3.5.2. Участие протеинкиназы с в обонятельной трансдукции
- •Роль тирозинкиназной сигнальной системы в обонятельной рецепции
- •1.4. Двигательная активность обонятельных жгутиков
- •1.5. Влияние одорантов на митохондриальное дыхание обонятельных клеток
- •Глава 2. Материалы и методы исследования
- •2.1. Объект исследования
- •2.2. Методы люминесцентной микроскопии
- •2.2.1.Флуоресцентный анализ мембраносвязанного кальция в обонятельных клетках
- •2.2.2. Флуоресцентный анализ клеточного дыхания обонятельных клеток
- •2.2.3. Конфокальная сканирующая иммунофлуоресцентная микроскопия
- •2.3. Метод прижизненной телевизионной микроскопии
- •2.4. Электроольфактография
- •2.5. Методика стимуляции обонятельной выстилки
- •2.6. Фармакологический анализ
- •Глава 3. Результаты исследований
- •3.1. Исследование компонентов внутриклеточных сигнальных систем обонятельных клеток, участвующих в рецепции различных одорантов
- •3.1.1. Исследование компонентов сигнальных систем, участвующих в рецепции амилового спирта
- •3.1.2. Исследование компонентов сигнальных систем, участвующих в рецепции камфоры
- •3.1.3. Исследование компонентов сигнальных систем, участвующих в рецепции цинеола
- •3.1.4. Исследование компонентов сигнальных систем обонятельных клеток, участвующих в рецепции амилацетата
- •3.1.5. Исследование компонентов сигнальных систем обонятельных клеток, участвующих в рецепции ванилина
- •3.1.6. Исследование компонентов сигнальных систем обонятельных клеток, участвующих в рецепции аммиака
- •3.1.7. Исследование участия внутриклеточных сигнальных систем обонятельных клеток в рецепции сероводорода
- •3.2. Исследование влияния одорантов на митохондриальное дыханине обонятельных клеток
- •3.2.1. Исследование влияния амилового спирта на активность дыхательной цепи митохондрий обонятельных клеток
- •3.2.2. Исследование влияния камфоры на активность дыхательной цепи митохондрий обонятельных клеток
- •3.2.3. Исследование влияния цинеола на активность дыхательной цепи митохондрий обонятельных клеток
- •3.2.4. Исследование влияния амилацетата на активность дыхательной цепи митохондрий обонятельных клеток
- •3.2.5. Исследование влияния ванилина на активность дыхательной цепи митохондрий обонятельных клеток
- •3.2.6. Исследование влияния аммиака на активность дыхательной цепи митохондрий обонятельных клеток
- •3.2.7. Исследование влияния сероводорода на активность дыхательной цепи митохондрий обонятельных клеток
- •3.3. Исследование влияния одорантов на двигательную активность обонятельных жгутиков
- •3.3.1. Энергетическое обеспечение двигательной активности обонятельных жгутиков
- •3.3.2. Роль цитоскелета в движениях обонятельных жгутиков
- •Глава 4. Обсуждение результатов
- •4.1. Исследование внутриклеточных сигнальнх систем обонятельных клеток, участвующих в рецепции амилового спирта, камфоры, цинеола, амилацетата и ванилина
- •4.2. Исследование механизмов обонятельной трансдукции аммиака и сероводорода
- •4.3. Исследование влияния аммиака и сероводорода на активность дыхательной цепи митохондрий
- •4.4. Исследование влияния амилового спирта, камфоры, цинеола, амилацетата и ванилина на активность дыхательной цепи митохондрий обонятельных клеток
- •4.5. Исследование влияния одорантов на двигательную активность обонятельных жгутиков
- •Заключение
- •Список литературы
4.4. Исследование влияния амилового спирта, камфоры, цинеола, амилацетата и ванилина на активность дыхательной цепи митохондрий обонятельных клеток
Одоранты первой группы (амиловый спирт, камфора, цинеол. амилацетат, ванилин) также изменяли в наших опытах собственную флуоресценцию НАДН и ФП. Под действием этих одорантов она усиливалась. Такую реакцию дыхательной цепи можно, вероятно, связать с образованием избытка НАД-зависимых субстратов, обусловленным активацией пахучими веществами синтеза внутриклеточных вторичных посредников, обеспечивающих повышение степени восстановленности пула пиридиннуклеотидов в обонятельной клетке.
Однако возможен и другой механизм, связанный с увеличением содержания кальция в цитозоле, о чем косвенно свидетельствовали результаты исследования флуоресценции комплекса: Са2+-ХТЦ-КМ. Одной из причин роста интенсивности флуоресценции НАДН и ФП при увеличении содержания ионов кальция в цитозоле может быть активация малат-аспартатной челночной системы в митохондриях. Существует прямая корреляция между захватом Са2+ митохондриями и интенсивностью собственной флуоресценции НАДН (Лейкин, Виноградов, 1974; Duchen, 2000; Mederos, Jennigs, 2002).
Считают, что индуцируемая кальцием проницаемость митохондриальной мембраны для пиридиннуклеотидов может быть дополнительным путем обмена восстановленных эквивалентов между матриксом митохондрий и цитозолем (Лейкин, 1977). Вероятно, с переносом НАДН в митохондрии можно связать рост интесивности его флуоресценции при увеличении концентрации внутриклеточного Са2+, поскольку при этом образуется комплекс Са2+-НАДН, имеющий высокий квантовый выход люминесценции (Лейкин, 1977; Преображенский, Денисов, 1977).
Можно предположить проникновение восстановительных компонентов в матрикс митохондрий через РТР- или МРТ-пору (mitochondrial permeability transition). Она образуется в результате деформации комплекса молекул, который собирается в областях контакта наружной и внутренней митохондриальной мембраны. В его состав входит потенциал-зависимый анионный канал (VDAC), располагающийся в наружной мембране митохондрий., где он образует пору диаметром 2,5 – 3,0 нм. Вторым компонентом этого комплекса является транслоказа адениновых нуклеотидов (ANT), локализованная во внутренней митохондриальной мембране. VDAC и ANT могут тесно взаимодействовать друг с другом с образованием комплекса, который способен рекрутировать дополнительные протеины, одним из которых является циклофилин D (СyPD). Он локализуется в матриксе митохондрий (Crompton, 2000).
Эта пора представляет собой высокопроводимый неселективный канал (Rizutto et al., 2000). Через него к транспортной системе митохондрий могу проникать вещества с молекулярной массой до 1500. Активация проницаемости этой поры вызывается ионами кальция, захваченными митохондриями (Hajnoczky et al., 2000; Azarashvili et al., 2002). В результате этого каналы обеспечивают генерализованную проницаемость внутренней мембраны митохондрий, индуцируемую ионами кальция. Открывание РТР характеризуется большим числом субпроводимости (O`Rouke, 2000).
Показано, что при повышении пула восстановленных пиридиннуклеотидов в матриксе митохондрий резко увеличивается потребление кислорода, то есть активируется клеточное дыхание (Mederos, Jennigs, 2002).
Как выявили результаты наших исследований, стимуляция обонятельной выстилки амилацетатом, амиловым спиртом, камфорой, цинеолом и ванилином инициирует вход кальция в цитозоль, а при повышении его внутриклеточного содержания он быстро аккумулируется митохондриями (Гайнутдинов, 1972: Rassmussen, Barret, 1988; Rizzuto et al., 1993; White, Reinolds, 1997; Pozzan, Rizzuto, 2000). Для этого необходима близость или даже контакт между митохондриями и источником локального повышения кальция (Rizzuto, 1993; Pozzan, Rizzuto, 2000).
Однако из данных ультраструктурных исследований обонятельных клеток видно, что эти органоиды не содержатся в обонятельных жгутиках, а сосредоточены в области булавы и проксимальных отделов периферического отростка (Бранштейн, 1966). Вероятно, ионы кальция, вошедшие в обонятельный жгутик под действием одоранта, могут распространяться к месту скопления митохондрий, образуя здесь локальные зоны концентрированного содержания Са2+. Скорость распространения кальция в кортикальных астроцитах крысы около 25 мкм в с (Duchen, 2000). Такие сложные пространственно-временные паттерны изменений концентрации внутриклеточного кальция, вызванные стимуляцией рецептора, обнаружены во многих типах клеток (Rassmussen, Gustin, 1978; Alkon, Rassmussen, 1988; Berridge et al., 1988; Rizzuto et al., 1993; Berridge, 1997; Sham, 1997).
Захват Са2+ митохондриями управляется митохондриальным мембранным потенциалом и зависит от наличия Са2+-унипортера, активность которого увеличивается в кубической зависимости при увеличении содержания свободного цитозольного кальция (Chen, 1988; Khana et al., 1988; Hajnoczky et al., 2000; Pozzan, Rizzuto, 2000). Функция унипорта заключается в том, чтобы транспортировать Са2+ по его электрохимическому градиенту в матрикс митохондрий во время повышения его содержания в цитоплазме. Полагают, что он представляет собой канал, регулируемый двухвалентными катионами и нуклеотидами и блокируется рутениевым красным (O’Rouke, 2000).
Можно предположить, что взаимодействие пахучих веществ с мембранными рецепторами обонятельных жгутиков, активируя систему вторичных посредников, изменяет проницаемость плазмолеммы для кальция, который, в свою очередь, инициирует малат-аспартатную систему, что приводит к повышению митохондриального пула НАДН и усилению клеточного дыхания. Следовательно, увеличение флуоресценции НАДН под влиянием амилового спирта, камфоры, цинеола, амилацетата и ванилина свидетельствует об активации митохондриального дыхания обонятельных клеток.
Одной из причин усиления флуоресценции НАДН и ФП при увеличении содержания ионов кальция в цитозоле может быть активация кальцием митохондриальных ферментов. Показана прямая корреляция между концентрацией митохондриального кальция и увеличением уровней НАДН, продукцией митохондриального АТФ и активацией энзимов в этих органеллах (Duchen, 2000; Rizzuto et al., 2000; Pozzan, Rizzuto, 2003;). Основными мишенями пути импорта кальция в митохондрии являются дегидрогеназы цикла трикарбоновых кислот, которые им активируются, и, в частности, сукцинатдегидрогеназа (Duchen, 2000).
Войдя в цитозоль из интерстиция, Са2+ усиливает окисление сукцината и повышает интенсивность митохондриального дыхания, что сопровождается возрастанием уровня НАДН (Лейкин, Виноградов, 1974; Akerman, 1981). Считают, что в живой клетке, где агонист-зависимое повышение цитозольного Са2+ происходит параллельно повышению уровней восстановленных НАДН, нарастание содержания этого иона в митохондриях может увеличить доступ восстанавливающих эквивалентов к дыхательной цепи (Pralong et al., 1994; Rizzuto et al., 1994; 2000). При этом увеличение НАДН, сопряженное с повышением внутриклеточного Са2+, в стимулируемых клетках, в свою очередь активировало синтез АТФ в митохондриях и, следовательно, увеличение его содержания в цитозоле. Это обусловливалось увеличением активности митохондриальной АТФ-синтазы, зависимой от концентрации матричного кальция (Jouaville et al., 1999).
Показано, что модуляция продукции АТФ в клетках появляется с определенной функционально значимой микрогетерогенностью. Так, микродомены АТФ могут существовать вблизи Са2+-насосов эндоплазматического ретикулума или концентрироваться в субплазматическом пространстве и в митохондриях, а не во всей цитоплазме (Landolfi et al., 1998; Kennedy et al., 1999). Этот путь стимуляции окислительного метаболизма в обонятельных клетках кажется более вероятным. Причина усиления интенсивности флуоресценции НАДН и ФП при увеличении содержания кальция внутри клетки, которые мы регистрировали в ответ на стимуляцию одорантами первой гуппы, может заключаться в активации кальцием сукцинатдегидрогеназы и переходе на окисление сукцината.
Вероятно, активирующее действие пахучих веществ можно объяснить наличием ротенонрезистентного пути восстановления НАД в обонятельных клетках. Показано, что на фоне ротенона может происходить увеличение дыхательного контроля сукцината за счет того, что в присутствии последнего происходит практически полное восстановление дыхания, подавленного ингибитором, до тех значений, до которых он его стимулировал без ротенона или даже выше (Лукьянова и др., 1982). С этим, по-видимому, связано учащение двигательной активности жгутиков при стимуляции амилацетатом (Бронштейн, 1977).
В пользу данного предположения свидетельствует и то, что в области булавы периферического отростка обонятельных клеток земноводных отмечается высокая активность сукцинатдегидрогеназы, малатдегидрогеназы и лактатдегидрогеназы, а также значительное содержание белков, богатых карбоксильными и сульфгидрильными группами (Бронштейн, 1977).
Эти энзимы остаются активированными даже при снижении уровня цитозольного кальция (Rassmussen, Barret, 1988), что связано, очевидно, с темпами обмена кальция между цитозолем и митохондриями. Концентрация этого иона в митохондриальном матриксе остается повышенной в течение десятков секунд после того, как его уровень в цитоплазме вернется в исходное состояние (Hajnoczky et al., 1995; White, Reinolds, 1997; Drummond et al., 2000; Duchen, 2000; Hainoczky et al., 2000; Rizzuto ey al., 2000;). Видимо, поэтому при стимуляции обонятельных клеток амиловым спиртом, амилацетатом, камфорой, ванилином и цинеолом продолжительность реакции усиления собственной флуоресценции НАДН и ФП была гораздо дольше времени усиления флуоресценции комплекса: Са2+-ХТЦ-КМ, то есть процесс активации митохондриального дыхания длился дольше, чем динамика мембраносвязанного кальция.
Повышение активности сукцинатдегидрогеназной системы митохондрий является весьма чувствительной характеристикой состояния клеточного дыхания при изменении физиологического сосотояния организма в условиях воздействия факторов среды (Васин, Королева, 2001). Усиление окисления сукцината является основой компенсаторных восстановительных процессов при нормальных физиологических условиях. При переходе ткани в активное состояние, когда необходимо усиление продукции энергии, в системе окисления происходит перестройка на преимущественное образование и использование сукцината. Переход на сукцинат позволяет повысить мощность системы окислительного фосфорилирования, то есть скорость выработки АТФ (Кондрашова, 1970; 1971; 1972). Это связано со стимуляцией митохондриального дыхания активированными дегидрогеназами, увеличивающей мебранный потенциал митохондрий и управляющей увеличением продукции АТФ (Duchen, 2000).
Таким образом, одоранты с камфорным, эвкалиптовым, прогорклым, цветочным и фруктовым запахами активируют клеточное дыхание, причем его стимуляция сопряжена с повышением содержания ионов кальция в цитозоле (Drummond et al., 2000). В обонятельных клетках увеличение содержания Са2+обусловлено его входом из внеклеточной среды, инициируемым одорантами. По-видимому, с транспортом этого иона связаны как генерация рецепторного потенциала на мембране жгутиков, так и стимуляция дыхательной цепи митохондрий рецепторных клеток.
Чтобы ответить на вопрос, оказывают ли эти одоранты свое влияние на митохондриальное дыхание непосредственно или через систему вторичных посредников, мы проводили эксперименты с использованием ингибиторов аденилатциклазы – 2,5-дидеоксиаденозина и фосфолипазы С – неомицина. При ингибировании основных ферментов сигнальных путей стимуляция амиловым спиртом, камфорой, цинеолом, амилацетатом и ванилином в одной части опытов вызывала резкое ослабление динамики окислительно-восстановительных процессов в митохондриях, а в другой части опытов изменений окислительного метаболизма не наблюдалось.
Сохранение реакции митохондрий на одоранты, когда ферменты, синтезирующие вторичные посредники, не функционируют, можно, вероятно, связать с активностью G-белка, поскольку ингибировались эффекторные молекулы, которые в цепи передачи сигнала локализуются после него. Предположение основано на том, что обдувание обонятельной выстилки камфорой и цинеолом не инициировало изменений окислительного метаболизма на фоне ингибиторов соответственно фосфолипазы С и аденилатциклазы. Но, как следует из наших данных, механизм трансдукции именно этих одорантов не вовлекает в обонятельную рецепцию G-белок.
Основную роль во взаимодействии ГТФ-связывающих белков с белками-мишенями приписывали альфа-субъединице G-протеинов. Однако в последнее время обнаруживаются новые функциональные свойства у бета-гамма-димера G-протеина. Он активирует К+-селективный ионный канал в клетках предсердий, взаимодействует и активирует некоторые эффекторы, включая ФЛС-бета2 и бета3, аденилатциклазу, Са2+-каналы. Таким образом, G-бета-гамма димер обладает своей специфической сигнализацией, причем он способен обеспечить большое разнообразие физико-химических процессов в клетке, так как обнаружено 5 различных бета- и 12 гамма-субъединиц G-белка. И если бета-гамма-димер образуется случайным образом, то возможно 60 комбинаций, причем каждое сочетание этих субъединиц будет проявлять клеточную или тканевую специфичность.
Гетерогенность, которая проявляется в свойствах этих субъединиц, обусловливается тем, что каждый эффектор контактирует с уникальной последовательностью аминокислотных остатков в активном центре молекул субъединиц G-белка. Сигнальная специфичность бета-гамма-димера G-протеина объясняется такими факторами, как дискретная субклеточная локализация эффекторов, компартментализация компонентов сигнальной трансдукции, а также экспресси сигнальных молекул, специфических для данного типа клеток (Cabrera-Vera et al., 2003). Вероятно, сохранение изменения окислительного метаболизма в обонятельных клетках в ответ на стимуляцию амиловым спиртом, амилацетатом и ванилином обусловливается способностью G-бета-гамма димера независимо взаимодействовать с эффекторными молекулами.
Возможен и другой путь. Так, например, в клетках обнаружены LIM-киназы. Их каталитическая активность направлена на Ser/Tre-остатки. Доказано, что эти киназы опосредуют внутри- и межмолекулярные протеин-протеиновые взаимодействия. Считают, что они играют специфическую роль в неизвестных сигнальных путях. У человека LIM-киназа 1 взаимодействует с ПКС-гамма и ПКС-кси, а домен LIM2 связывает LIM-киназу 1 с ПКС-гамма. ПКС-кси и ПКС-дельта являются атипичными протеинкиназами, не зависящими от кальция и диацилглицерола (Schenk, Snaar-Jagalska, 1999). Поскольку локализация компонентов сигнальных путей строго компартментализована, и они выполняют свои специфические функции в определенных участках клеток, то можно предположить, что какие-то новые пути включаются в реакцию, когда основные ферменты механизма трансдукции выключены.
Все эти косвенные факты подкрепляют предположение о том, что свое активирующее влияние на митохондрии амиловый спирт, амилацетат, камфора, ванилин и цинеол осуществляют опосредованно – через соотвествующие сигнальные системы и кальций. Причем вход кальция в клетку под действием амилового спирта, амилацетата и цинеола обеспечивается активностью аденилатциклазы, а при обонянии камфоры и ванилина – фофсфолипазы С (рис. 73).
Таким образом, рецепция одорантов, обладающих камфорным, фруктовым, цветочным, прогорклым и эвкалиптовым запахами, обеспечивается внутриклеточными сигнальными системами, что связано с изменением клеточного метаболизма, и активацией клеточного дыхания. В обоняние острых и гнилостных запахов не вовлекаются внутриклеточные сигнальные системы. Вероятно, сигнальным признаком для них является прямое ингибирование клеточного дыхания, но механизм ингибирования у острых и гнилостных запахов различен.
В принципиальных различиях действия на окислительно-восстановительное состояние дыхательной цепи митохондрий качественно разных одорантов, принадлежащих как одной группе (представлены на рис. 73) так и, в еще большей степени, двум группам, подтверждается гипотеза гетерогенности обонятельной рецепции.
Неоднородность механизмов хемотрансдукции была обнаружена во вкусовых, каротидных и медуллярных рецепторах. Так, сопоставление реакций метаболических систем клеток вкусовой луковицы на химические вещества с разным вкусом показало различие в окислительно-метаболических процессах, происходящих при восприятии горечей и кислот, с одной стороы, и сладких и соленых агентов, с другой. Метаболические системы вкусовых клеток непосредственно участвуют в кодировании информации только о горечах и кислотах. В рецепции веществ со сладким и соленым вкусами они осуществляют, вероятно, только энергетическое обеспечение кодирования, причем энерготраты вкусовых рецепторов в этих процессах невелики (Соловьев, Самойлов, 1977; 1978; Самойлов, 1983).
Подытоживая результаты исследования флуоресценции обонятельных клеток, можно заключить, что восприятие запахов разного качества обеспечивают неоднородные физико-химические процессы. Следовательно, не только вкусовой, каротидной, медуллярной, но и обонятельной рецепции присуща гетерогенность биофизических механизмов трансдукции.