Инструментальные методы исследования.

Бактериологическое исследование.

В обязательном порядке проводится посев отделяемого из очага инфекции на микрофлору и определение чувствительности к антибиотикам выявленных штаммов.

Техника забора и транспортировки биологического материала:

1. Мокрота – В стерильную посуду после сильного кашля. Желательно утром до еды, прополоскав перед этим рот кипяченой водой.

2. Бронхиальный секрет – Аспирируют через катетер или эндоскоп в стерильную посуду.

3. Моча – Забирают с помощью стерильного катетера среднюю порцию мочи. При наличии постоянного катетера производят дезинфекцию собирательной трубки и собирают мочу после пункции проксимальной ее части.

4. Плевральная, перитонеальная, абсцесса и др. – С помощью стерильного шприца и иглы получают 5-6 мл. жидкости. При немедленной транспортировке доставляют прямо в шприце, предварительно удалив иглу и надев наконечник из резины или иного мат-ла на шприц. Воздух из шприца следует удалить.

5. Раневое поверхностное отделяемое – Забирают материал из глубоких участков, а также из краев раны с помощью стерильного тампона, который помещают в транспортную среду, а при ее отсутствии – в стерильный контейнер. Гной аспирируют в шприц.

Анализ крови на стерильность.

Метод направлен на выявление бактериемии (присутствие жизнеспособных бактерий в крови). Клинически она проявляется в классическом варианте в виде синдрома системного ответа на воспаление (SIRS – Systemic Inflammatory Response Syndrome) и характеризуются четырьмя признаками:

• температура тела больше 38⁰ или меньше 36⁰.

• ЧСС более 90 уд. в мин.

• ЧДД более 20 в мин.

• лейкоцитоз крови более 12000 или менее 4000, или 10% палочкоядерных нейтрофилов.

Необходимые условия забора крови на стерильность:

• пункция вены без катетера в асептических условиях

• забор крови 5 раз в течение часа до начала антибиотикотерапии вне зависимости от температурной реакции у больного.

• кровь собирается в шприц и вводится затем во флаконы с питательной средой в соотношении кровь/среда не более 1/10

• доставляют немедленно в лабораторию, при невозможности инкубируют при 37^о С

• не менее двух положительных результатов посевов.

При подозрении на катетер-ассоциированную бактериемию (при длительно стоящем катетере в подключичной вене), следует использовать парные посевы из центральной (через катетер) и периферической вен. Если при этом количество колоний микроорганизмов будет в пять раз выше в крови, взятой из катетера, то следует говорить о катетер-ассоциированной бактериемии.

Световая и люминесцентная микроскопия мазков периферической крови и обнаружение в ионизационной камере радиоактивных продуктов метаболизма микроорганизмов после инкубации их в меченой изотопами среде относятся к новым методам экспресс-диагностики бактериемий.

Бактериоскопия мазков.

Быстрый и объективный способ подтверждения диагноза. Мазок для бактериоскопии следует забирать из глубины ткани.

Если на дне раны имеется экссудат, его аспирируют через иглу и помещают в стерильную пробирку или флакон. На основании бактериоскопии ориентировочно судят о характере микрофлоры, дифференцируют стафилококки, стрептококки, а также грамположительные и грамотрицательные палочки.

Исследования на анаэробную флору:

• Экспресс-биопсия мышц раны.

Кусочки для биопсии забирают на некотором расстоянии от очагов некроза. При микроскопии оценивают состояние мышечных волокон (лизис, фрагментация, некроз при анаэробной инфекции и т.д.).

• Газохроматографический парофазный анализ летучих жирных кислот в гнойном отделяемом.

Применяется для и идентификации неклостридиальной анаэробной флоры. Результаты исследования получают уже через 1 час в виде хроматограммы.