Добавил:
ilirea@mail.ru Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:

Кишкун А.А

.pdf
Скачиваний:
280
Добавлен:
22.08.2018
Размер:
13.06 Mб
Скачать

652 Глава 10

Метафазные пластинки отдельных клеток фотографируют. Из фотографий вырезают индивидуальные хромосомы и наклеивают их по порядку на лист бумаги; такая картина хромосом называется кариотипом.

Применение дополнительного окрашивания, а также новые методы получения хромосомных препаратов, позволяющих растягивать хромосомы

вдлину, значительно увеличивают точность цитогенетической диагностики. Для описания кариотипа человека разработана специальная номенкла-

тура. Нормальный кариотип мужчины и женщины обозначают как 46, ХY и 46, ХХ соответственно. При синдроме Дауна, характеризующемся наличием дополнительной хромосомы 21 (трисомия 21), кариотип женщины описывают как 47, ХХ 21+, а мужчины — 47, ХY, 21+. При наличии структурной аномалии хромосомы необходимо указать изменённое длинное или короткое плечо: буквой p обозначают короткое плечо, q — длинное плечо, t — транслокацию. Так, при делеции короткого плеча хромосомы 5 (синдром «кошачьего крика») женский кариотип описывают как 46, ХХ, 5p−. Мать ребёнка с транслокационным синдромом Дауна — носительница сбалансированной транслокации 14/21 имеет кариотип 45, ХХ, t(14q; 21q). Транслокационная хромосома образуется при слиянии длинных плеч хромосомы 14 и 21, короткие плечи при этом теряются.

Каждое плечо разделяется на районы, а они в свою очередь — на сегменты, и те и другие обозначают арабскими цифрами. Центромера хромосомы является исходным пунктом для отсчёта районов и сегментов.

Таким образом, для топографии хромосом используют четыре метки: номер хромосомы, символ плеча, номер района и номер сегмента в пределах данного района. Например, запись 6p21.3 означает, что речь идёт о хромосоме 6-й пары, её коротком плече, районе 21, сегменте 3. Существуют ещё дополнительные символы, в частности pter — конец короткого плеча, qter — конец длинного плеча.

Цитогенетический метод исследования позволяет обнаружить делеции и другие изменения в хромосомах только размером приблизительно в 1 млн оснований (нуклеотидов).

Биохимические и гормональные методы

Биохимические и гормональные методы исследования позволяют выявлять основные нарушения обмена веществ и синтеза различных гормонов, ассоциированные с наследственными заболеваниями.

Заболевания, в основе которых лежит нарушение обмена веществ, составляют значительную часть наследственной патологии (фенилкетонурия, галактоземия, алкаптонурия и др.). Все они, вследствие генетического дефекта синтеза определённого фермента, приводят к накоплению в крови больного промежуточных продуктов метаболизма. Биохимические методы исследований легко позволяют определить содержание этих метаболитов

ворганизме и тем самым заподозрить наследственную патологию. Клиническая генетика использует генетический полиморфизм ряда фер-

ментов. Известно, что существуют различные формы одного и того же фермента, катализирующие одну же реакцию, но отличающиеся по своему молекулярному строению. Подобные формы получили название изоферментов. Обнаружение нескольких изоферментов одного и того же фермента свидетельствует о существовании нескольких аллелей данного энзима.

Генетические исследования 653

Иначе говоря, в однозначных локусах гомологичных хромосом представлены альтернативные состояния одного и того же гена, ответственного за синтез данного фермента. Возникают подобные изменения вследствие мутации. Структура изоферментов генетически детерминирована. Обнаружение в крови определённой формы изофермента или его отсутствие указывает на тот генетический дефект, который лежит в основе заболевания.

В составе α2-глобулинов сыворотки крови содержится белок гаптоглобин (Hp). С помощью электрофореза удаётся выделить несколько типов этого белка. Наиболее часто обнаруживают типы Hp 1−1, Hp 2−1, Hp 2−2, различающиеся электрофоретической подвижностью и количеством белковых компонентов. Типы гаптоглобина генетически детерминированы. Они кодируются геном, расположенным в хромосоме 16 (16q22). В настоящее время установлена связь между различными типами гаптоглобина

иопределёнными формами онкологических заболеваний. Электрофоретический анализ ЛП с установлением типа ДЛП позволяет

заподозрить тот или иной генетически обусловленный дефект, лежащий в основе нарушения обмена ЛП и приводящий к развитию раннего атеросклероза.

Исследование гормонов (17-ГПГ, ТТГ, ингибина, свободного эстриола и др.) также играет важную роль в диагностике генетических заболеваний. Наследственные дефекты, лежащие в основе блока синтеза и метаболизма различных гормонов, рассмотрены в главе 9 «Гормональные исследования».

Иммунологические методы

Впоследнее время в качестве важного иммунологического маркёра популяционной генетики стали рассматривать главный комплекс гистосовместимости — HLA (Human Leukocyte Antigens). Аг этой системы определяют иммунологически в лейкоцитах крови. Комплекс генов HLA компактно расположен на коротком плече хромосомы 6 (6р21.3). Локализация этой системы и протяжённость расположения её локусов на хромосоме позволили рассчитать, что комплекс составляет приблизительно 1/1000 генофонда организма. Аг гистосовместимости участвуют в регуляции иммунного ответа организма, в поддержании иммунного гомеостаза. Благодаря своему полиморфизму и компактности локализации Аг HLA приобрели большое значение в качестве генетического маркёра.

Внастоящее время обнаружено более 200 аллелей этой системы, она является наиболее полиморфной и биологически значимой из генетических систем организма человека. Нарушения различных функций главного комплекса гистосовместимости способствуют развитию ряда заболеваний,

впервую очередь аутоиммунных, онкологических, инфекционных.

Всоответствии с расположением комплекса HLA в хромосоме 6 различают следующие локусы: D/DR, B, C, A (рис. 10-2). Сравнительно недавно обнаружены новые локусы G, E, H, F, их биологическую роль активно изучают в настоящее время. В главном комплексе гистосовместимости выделяют три класса Аг. Аг I класса кодируются локусами А, В, С. Новые локусы также относятся к этому классу. Аг II класса кодируются локусами DR, DP, DQ, DN, DO. Гены I и II классов кодируют трансплантационные Аг. Гены III класса кодируют компоненты комплемента (С2, С4а, С4b, Bf),

654 Глава 10

Рис. 10-2. Схема расположения локуса главного комплекса гистосовместимости на коротком плече хромосомы 6 человека

а также синтез изоформ ряда ферментов (фосфоглюкомутазы, гликоксилазы, пепсиногена-5, 21-гидроксилазы).

Наличие у человека ассоциированных с определённым заболеванием Аг позволяет предполагать повышенную предрасположенность к данной патологии, а при некоторых корреляциях, наоборот, устойчивость к ней.

Определение Аг системы HLA проводят на лимфоцитах, выделенных из периферической крови, с помощью гистотипирующих сывороток в микролимфоцитотоксической реакции или молекулярно-генетическими методами.

Генетические исследования 655

Установление ассоциативных связей между болезнями и Аг главного комплекса гистосовместимости позволяет:

выделить группы повышенного риска развития болезни;

определить её полиморфизм, то есть выявить группы больных с особенностями течения или патогенеза болезни; в этом же плане может проводиться анализ синтропии болезней, выяснение генетических предпосылок сочетания различных форм патологии; ассоциация с Аг, определяющими устойчивость к заболеваниям, позволяет выявлять лиц с пониженным риском возникновения данной патологии;

проводить дифференциальную диагностику заболеваний;

определять прогноз;

выработать оптимальную тактику лечения.

Всвязи с тем, что для большинства болезней прямой связи с Аг главного комплекса гистосовместимости не прослеживается, для объяснения ассоциации между заболеваниями и Аг HLA была предложена теория «двух генов», согласно которой предполагается существование гена (генов) иммунного ответа (Ir-гена), тесно связанного с Аг HLA и генами, регулирующими иммунный ответ. Гены-протекторы определяют резистентность

кзаболеваниям, а гены-провокаторы — чувствительность к тем или иным болезням.

Втабл. 10-2 приведены данные о связи между различными заболеваниями и наличием Аг главного комплекса гистосовместимости. Относитель-

ный риск заболевания для лиц с соответствующим генотипом рассчитывают по формуле: x = [hp × (1 − hc)] / [hc × (1 − hp)], где hp — частота признака у больных, а hc — у лиц контрольной группы.

Относительный риск показывает величину ассоциации заболевания с определённым Аг/Аг системы HLA (даёт представление о том, во сколько раз выше риск возникновения заболевания при наличии Аг по сравнению с его отсутствием). Чем больше этот показатель у пациента, тем выше ассоциативная связь с заболеванием.

Таблица 10-2. Ассоциация болезней человека с HLA-Аг (частота гена,%) [Йегер Л., 1990; Фролькис А.В., 1995; Петрова М.А., 1997]

 

 

Контрольная

Боль-

Относи-

Заболевания

HLA

тельный

группа,%

ные,%

 

 

риск

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Ревматология

 

 

 

 

Анкилозирующий

В27

5−7

90−93

90−150

спондилит

 

 

 

 

Синдром Райтера

В27

6−9

69−76

32−49,6

Артриты, обусловленные

 

 

 

 

инфекциями:

 

 

 

 

− Yersinia

В27

 

58−76

17,59

− Salmonella

В27

 

60−69

17,57

Артрит псориатический

В13

 

9−37

4,79

Ревматоидный артрит

Dw4

12−19

48−72

3,9−12,0

 

DR4

20−32

70

4,9−9,33

656 Глава 10

Продолжение табл. 10-2

Синдром Бехчета

В5

13

48−86

7,4−16,4

СКВ

В5

 

11−34

1,83

 

В8

 

19−48

2,11

 

Bw15

6−10

21−40

5,1

 

DR2

26,4

57,1

3,80

 

DR3

22,2

46,4

2,90

Синдром Гужеро−Шёгрена

В8

 

38−58

3,15

 

Dw3

26

69−87

19,0

Кардиология

 

 

 

 

ИБС

В7

27,8

45,8

2,19

 

В14

7,5

14,8

2,14

 

В15

11,1

20,4

2,05

 

Сw4

18,7

32,8

2,12

Гипертоническая болезнь

В18

10,4

22,6

2,52

 

Аw19

12,6

28,3

2,74

Эндокринология

 

 

 

 

Сахарный диабет типа 1

В8

32

52−55

2,1−2,5

 

В18

 

5−59

1,65

 

В15

12

18−36

1,89−3,9

 

Dw3

26

48−50

2,9−3,8

 

Dw4

19

42−49

3,5−3,9

 

DR3

20

60

6,10

 

DR3/DR4

 

 

33

Гипертиреоз

В8

21

35−49

2,34−3,5

 

D3

26

61

4,4

 

DR3

20

51

4,16

Подострый тиреоидит

Bw35

13

63−73

16,81

(де Кервена)

 

 

 

 

 

Dw1

 

33

2,1

Болезнь Аддисона

В8

 

20−80

3,88−6,4

 

Dw3

26

70−76

8,8−10,5

Синдром Иценко−

А1

 

49

2,45

Кушинга

 

 

 

 

Гастроэнтерология

 

 

 

 

Пернициозная анемия

В7

19

26−52

1,7−3,1

 

DR5

6

25

5,20

Атрофический гастрит

В7

 

37

2,55

Язвенная болезнь двенад-

А2

48,1

61,3

1,7

цатиперстной кишки

 

 

 

 

 

А10

20,6

63,3

6,65

 

В14

4,0

10,3

2,76

 

В15

6,6

24,4

4,56

 

В40

9,72

23,3

2,82

Генетические исследования 657

Продолжение табл. 10-2

Аутоиммунный гепатит

В8

16

37−68

2,8−4,1

 

DR4

24

71

7,75

Носители HBsAg

Bw41

 

12

11,16

 

В15

 

10−19

0,29

Дерматология

 

 

 

 

Псориаз

Bw17

6−8

22−36

3,8−6,4

 

В13

3−5

15−27

4,2−5,3

 

Bw16

5

15

2,9

Герпетиформный дерматит

В8

27−29

62−63

4,00−4,6

 

DR3

19

80

16,60

Склеродермия

В7

24

35

1,7

Пузырчатка

А10

 

 

3,1

Атопический дерматит

В13

6,86

21,28

3,67

 

В27

9,94

25,53

3,11

 

А10/В13

0,88

8,51

10,48

Экзема

А10

19,64

36,67

2,37

 

В27

9,94

26,67

3,29

Крапивница и отёк Квинке

В13

6,86

21,21

3,65

 

В5,8

1,42

12,12

9,57

 

В5,35

0,71

6,06

9,02

Неврология

 

 

 

 

Рассеянный склероз

А3

25

36−37

2,7−2,8

 

В7

25−33

36−42

1,4−2,0

 

Dw2

16−26

60−70

4,3−12,2

 

DR2

35

51,2

1,95

 

DR3

20

32,5

1,93

Миастения

В8

21−24

52−57

3,4−5,0

 

А1

20−25

23−56

3,8

 

DR3

26

50

2,5

Пульмонология

 

3,55

12,5

3,88

Бронхиальная астма

В21

4,62

12,5

2,95

(заболевшие в возрасте

В22

9,94

19,64

2,22

19−30 лет)

В27

12,31

37,5

4,27

 

 

В35

0,11

5,36

51,4

 

В27/35

0,47

7,14

16,2

Прочие заболевания

 

 

 

 

Вазомоторный ринит

А3

26,98

52,38

2,98

 

В17

7,57

28,57

4,88

 

А3/10

2,72

23,83

11,18

 

В7/17

0,47

9,52

22,28

658 Глава 10

Окончание табл. 10-2

Поллинозный риносинусит

А1

19,76

35,29

2,21

 

В8

14,91

32,35

2,73

 

В35

12,31

29,41

2,97

 

В8/35

1,53

8,82

6,22

 

А1/В35

2,39

14,71

7,04

Данные, приведённые в таблице 10-2, показывают, что наиболее сильные ассоциативные связи выявляются для болезней с полигенным или мультифакториальным типом наследования.

Таким образом, определение Аг главного комплекса гистосовместимости на клетках крови (лейкоцитах) позволяет выявить степень индивидуальной предрасположенности человека к определённому заболеванию, а в ряде случаев использовать результаты исследований для дифференциальной диагностики, оценки прогноза и выбора тактики лечения. Например, выявление Аг HLA-B27 используют в дифференциальной диагностике аутоиммунных болезней. Его обнаруживают у 90−93% пациентов европеоидной расы с анкилозирующим спондилитом и синдромом Райтера. У здоровых представителей этой расы Аг HLA-B27 выявляют всего в 5−7% случаев. Аг HLA-B27 часто обнаруживают при псориатическом артрите, хронических воспалительных заболеваниях кишечника, протекающих с сакроилеитом и спондилитом, увеите и реактивном артрите.

Молекулярно-генетические методы

Методы ДНК-технологии используют для выяснения локализации в той или иной хромосоме мутантного гена, ответственного за происхождение определённых форм наследственной патологии. Так как ген представляет собой участок ДНК, а мутация генов — повреждение первичной структуры ДНК (под мутацией понимают все изменения в последовательности ДНК, независимо от их локализации и влияния на жизнеспособность индивида), то, зондируя препараты метафазных хромосом больного с наследственным заболеванием, удаётся установить локализацию патологического гена. Методы молекулярной генетики создают возможности для диагностики болезней на уровне изменённой структуры ДНК, они позволяют выяснять локализацию наследственных нарушений. Молекулярно-генетические методы могут выявить мутации, связанные с заменой даже одного-единственного основания.

Важнейший этап идентификации гена — его выделение. ДНК может быть изолирована из любого типа тканей и клеток, содержащих ядра. Этапы выделения ДНК включают: быстрый лизис клеток, удаление с помощью центрифугирования фрагментов клеточных органелл и мембран, ферментативное разрушение белков и их экстрагирование из раствора с помощью фенола и хлороформа, концентрирование молекул ДНК путём преципитации в этаноле.

В генетических лабораториях ДНК чаще всего выделяют из лейкоцитов крови, для чего у пациента забирают 5−20 мл венозной крови в стерильную пробирку с раствором антикоагулянта (гепарин). Затем отделяют лейкоциты и проводят их обработку по изложенным выше этапам.

Генетические исследования 659

Следующий этап подготовки материала к исследованию — «разрезание» ДНК на фрагменты в участках со строго специфической последовательностью оснований, которое осуществляют с помощью бактериальных ферментов — рестрикционных эндонуклеаз (рестриктаз). Рестриктазы узнают специфические последовательности из 4−6, реже 8−12 нуклеотидов в двухцепочечной молекуле ДНК и разделяют её на фрагменты в местах локализации этих последовательностей, называемых сайтами рестрикции. Количество образующихся рестрикционных фрагментов ДНК определяется частотой встречаемости сайтов рестрикции, а размер фрагментов — характером распределения этих сайтов по длине исходной молекулы ДНК. Чем чаще расположены сайты рестрикции, тем короче фрагменты ДНК после рестрикции. В настоящее время известно более 500 различных типов рестриктаз бактериального происхождения, и каждый из этих ферментов узнаёт свою специфическую последовательность нуклеотидов. В дальнейшем сайты рестрикции могут быть использованы в качестве генетических маркёров ДНК. Образовавшиеся в результате рестрикции фрагменты ДНК могут быть упорядочены по длине путём электрофореза в агарозном или полиакриламидном геле, а тем самым может быть определена их молекулярная масса. Обычно для выявления ДНК в геле используется специфическое окрашивание (чаще бромидом этидия) и просмотр геля в проходящем свете ультрафиолетовой области спектра. Места локализации ДНК имеют красную окраску. Однако у человека при обработке ДНК несколькими рестриктазами образуется так много фрагментов различной длины, что их не удаётся разделить с помощью электрофореза, то есть не удаётся визуально идентифицировать отдельные фрагменты ДНК на электрофореграмме (получают равномерное окрашивание по всей длине геля). Поэтому для идентификации нужных фрагментов ДНК в таком геле используют метод гибридизации с мечеными ДНК-зондами.

Любой одноцепочечный сегмент ДНК или РНК способен связываться (гибридизироваться) с комплементарной ему цепью, причём гуанин всегда связывается с цитозином, аденин с тимином. Так происходит образование двухцепочечной молекулы. Если одноцепочечную копию клонированного гена пометить радиоактивной меткой, получится зонд. Зонд способен отыскивать комплементарный сегмент ДНК, который затем легко идентифицировать с помощью радиоавтографии. Радиоактивный зонд, добавленный к препарату растянутых хромосом, позволяет локализовать ген на определённой хромосоме: с помощью ДНК-зонда можно идентифицировать определённые участки при саузерн-блоттинге. Гибридизация происходит, если тестируемый участок ДНК содержит нормальный ген. В случае, когда присутствует ненормальная последовательность нуклеотидов, то есть соответствующие структуры хромосомы содержат мутантный ген, гибридизация не произойдёт, что позволяет определить локализацию патологического гена.

Для получения ДНК-зондов используют метод клонирования генов. Сущность метода состоит в том, что фрагмент ДНК, соответствующий ка- кому-либо гену или участку гена, встраивают в клонирующую частицу, как правило, бактериальную плазмиду (кольцевая внехромосомная ДНК, присутствующая в клетках бактерий и несущая гены устойчивости к антибиотикам), и затем бактерии, имеющие плазмиду со встроенным человеческим

660 Глава 10

геном, размножают. Благодаря процессам синтеза в плазмиде удаётся получить миллиарды копий человеческого гена или его участка.

Вдальнейшем полученные копии ДНК, меченные радиоактивной меткой или флюорохромами, используют в качестве зондов для поиска комплементарных последовательностей среди исследуемого пула молекул ДНК.

Внастоящее время существует множество разновидностей методов с использованием ДНК-зондов для диагностики генных мутаций.

САУЗЕРН-БЛОТТИНГ

Саузерн-блоттинг (разработан Э. Саузерном и Р. Дэйвисом в 1975 г.) — основной метод, с помощью которого в настоящее время выявляют гены определённого заболевания. Для этого ДНК из клеток больного экстрагируют и обрабатывают одной из рестрикционных эндонуклеаз (или несколькими). Полученные фрагменты подвергают электрофорезу, который позволяет разделить их по размеру (фрагменты меньшего размера двигаются через поры геля быстрее). Затем фрагменты переносят (перепечатывают) на нитроцеллюлозный фильтр, на который наслаивают меченный радиоактивной меткой зонд. Зонд связывается только с комплементарной последовательностью. Затем методом авторадиографии определяют положение искомого фрагмента геномной ДНК на электрофореграмме.

Гибридизацию с меченым ДНК-зондом препаратов ДНК или РНК, нанесённых капельно на твёрдый матрикс без предварительной рестрикции и электрофореза, носит название дотили слот-гибридизации в зависимости от конфигурации пятна ДНК на фильтре (округлой или продолговатой соответственно).

ГИБРИДИЗАЦИЯ IN SITU

Процедуру гибридизации можно проводить не только на геле, на фильтрах или в растворе, но и на гистологических или хромосомных препаратах. Этот метод носит название гибридизации in situ. Вариант метода, при котором в качестве зондов используют препараты ДНК или РНК, меченные флюорохромами, называется FISH (fluorescein in situ hybradization). Меченный ДНК-зонд наносят на препараты дифференциально окрашенных и подготовленных для гибридизации (денатурированных) метафазных хромосом. Предварительная обработка хромосом применяется для облегчения доступа зонда к геномной ДНК. После отмывки несвязанных молекул ДНК и нанесения светочувствительной эмульсии (при использовании радиоактивной метки), либо проведения соответствующей обработки (при использовании биотинили флюоресцеин-меченных ДНК-зондов) места локализации последовательностей ДНК, комплементарных используемому ДНК-зонду, можно непосредственно выявлять при микроскопии в виде характерных точек над соответствующими участками определённых хромосом.

Данный метод исследования позволяет определить не только хромосомную принадлежность, но и внутрихромосомную локализацию исследуемого гена.

ПОЛИМЕРАЗНАЯ ЦЕПНАЯ РЕАКЦИЯ

ПЦР — новое достижение молекулярной генетики, используется для амплификации ДНК и позволяет быстро размножить in vitro специфический

Генетические исследования 661

участок ДНК (то есть любой интересующий ген) более чем в 200 000 раз. Чтобы провести реакцию, достаточно иметь ДНК-материал одной клетки; количество амплифицированной с помощью ПЦР ДНК столь велико, что эту ДНК можно просто окрашивать (использование радиоактивных зондов после электрофореза не требуется). Необходимое условие для проведения ПЦР — знание нуклеотидной последовательности амплифицируемой области ДНК для правильного подбора искусственно синтезированных праймеров.

Внастоящее время ПЦР представляет собой процесс, протекающий

водной пробирке и состоящий из повторных циклов амплификации (размножения, копирования) специфической последовательности молекулы ДНК с целью получения достаточно большого количества копий, которые могут быть идентифицированы методом электрофореза. Один из ключевых

компонентов реакции — «праймеры» — синтетические олигонуклеотиды, состоящие из 20−30 оснований, комплементарных «сайтам» (участкам) отжига (присоединения) на идентифицируемом участке матричной ДНК.

ПЦР протекает автоматически в программируемом термостате — термоциклере (амплификаторе). Трёхступенчатый цикл, в результате которого

получаются точные копии идентифицируемого участка матричной ДНК, повторяют 30−50 раз в соответствии с заданной программой термоциклера. В первом цикле олигопраймеры гибридизуются с исходной матричной ДНК, а затем (в последующих циклах) и с вновь синтезированными молекулами ДНК по мере их накопления в реакционной смеси. В последнем случае синтез ДНК заканчивается не вследствие изменения температурного режима, а по достижении ДНК-полимеразной границы амплифицированного участка, что и определяет размер вновь синтезированного участка ДНК с точностью до одного нуклеотида.

Вкачестве метода детекции полученных молекул ДНК используют электрофорез, с помощью которого производится разделение амплифицированного материала по размеру ампликонов (продуктов амплификации).

С помощью ПЦР можно непосредственно исследовать места локализации предполагаемых мутаций или полиморфных сайтов, а также изучать наличие любых других специфических особенностей ДНК.

АНАЛИЗ ПОЛИМОРФИЗМА ДЛИНЫ РЕСТРИКЦИОННЫХ ФРАГМЕНТОВ

Широкое использование различных рестрикционных эндонуклеаз для анализа хромосомной ДНК выявило огромную вариабельность генома человека. Даже небольшие изменения в кодирующих и регуляторных областях структурных генов могут привести к прекращению синтеза определённого белка или к потере его функции в организме человека, что, как правило, сказывается на фенотипе пациента. Однако приблизительно 90% генома человека состоит из некодирующих последовательностей, которые более изменчивы и содержат множество так называемых нейтральных мутаций, или полиморфизмов, и не имеют фенотипического выражения. Такие полиморфные участки (локусы) используются в диагностике наследственных заболеваний в качестве генетических маркёров. Полиморфные локусы присутствуют во всех хромосомах и сцеплены с определённым участком