- •Галкин м.А., Архипова м.Н.,
- •Тема 1. Основы ботанической микротехники. Работа с микроскопом. Приготовление временных препаратов. Методы окрашивания препаратов. Основные реактивы и их действие.
- •А) микроскоп биолам
- •Правила работы с микроскопом биолам
- •Необходимо запомнить! Микроскоп в течение всего занятия должен оставаться на одном месте б) микроскоп биомед-2
- •Правила работы с микроскопом биомед-2
- •Для изучения строения мелких объектов
- •Для изучения строения эпидермиса
- •Для изучения поперечного среза органа
- •Для изучения продольного среза органа
- •1. Окрашивание временных препаратов
- •Окрашивание препаратов с применением реактивов с концентрированной серной кислотой
- •Тема 2. Строение клетки растений. Типы клеток. Включения.
- •Тема 3. Клеточная стенка. Образовательные ткани: верхушечные меристемы, латеральные меристемы
- •Тема 4. Покровные ткани
- •Тема 5. Механические ткани. Проводящие ткани.
- •Аудиторная самостоятельная работа
- •Тема 6. Типы строения проводящей системы в членах растения
- •В рабочей тетради выполнить задания: 21.
- •Тема 7. Основные ткани. Выделительные ткани.
- •Тема 8. Контрольная работа по темам: «Клетка», «Ткани растений»
- •Тема 9. Анатомическое строение корня травянистых растений
- •Тема 10. Анатомическое строение корней древесных растений и корнеплодов
- •Тема 11. Анатомическое строение стебля древесных растений
- •Тема 12. Анатомическое строение стебля травянистых растений
- •В рабочей тетради выполнить задания: 43-46.
- •Тема 13. Анатомическое строение листа пинофит и листа злаков
- •Тема 14. Анатомическое строение изолатерального
- •Тема 15. Уирс: Клетка. Типы клеток. Ткани растений.
- •Тема 16. Уирс: Анатомическое исследование вегетативных органов избранных растений из магнолиопсид
- •План анатомо-топографического описания членов высших растений
- •Тема 17. Уирс: Анатомическое исследование вегетативных органов избранных растений из лилиопсид
- •План анатомо-топографического описания членов высших растений
- •Тема 18. Зачетное занятие. Анатомическое исследование избранных растений магнолиофит.
- •Тема 19. Предмет и методы морфологии растений. Понятие о жизненной форме у высших растений. Жизненные формы растений. Классификация членов и органов сосудистых растений
- •Аудиторная самостоятельная работа
- •Тема 20. Основные понятия морфологии растений: ветвление, явление симметрии, метаморфоз, гомологии, аналогии, редукции, атавизм
- •Тема 21. Морфология осевых членов высших растений
- •Тема 22. Морфология листа
- •Аудиторная самостоятельная работа
- •I. Простые листья с цельной листовой пластинкой
- •II. Простые листья с расчленённой листовой пластинкой
- •III. Сложные листья
- •Тема 23. Морфология цветка
- •Тема 24. Морфология и классификация соцветий
- •Тема 25. Морфология и классификация плодов
- •I. Плод простой
- •II. Плод сборный
- •Тема 26. Контрольная работа по теме: «Морфология членов и органов растений»
- •План морфологического описания растения
- •Цветок с простым околоцветником
- •Тема 27. Высшие споровые растения
- •Тема 28. Семенные растения. Отдел Pinophyta
- •Тема 29. Magnoliophyta, Magnoliopsida, Ranunculidae: Ranunculaceae, Papaveraceae
- •Тема 30. Magnoliophyta, Magnoliopsida, cARyOphyllidae: Caryophyllaceae, Polygonaceae, Chenopodiaceae;
- •Аудиторная самостоятельная работа
- •Тема 31. Magnoliophyta, Magnoliopsida, dilleniidae: Malvaceae, Brassicaceae (Cruciferae), Euphorbiaceae, Hypericaceae, Urticaceae
- •В рабочей тетради выполнить задания: 121-125.
- •Тема 32. Magnoliophyta, Magnoliopsida, rOsidae:
- •Valerianaceae, Apiaceae, Rhamnaceae, Rosaceae, Fabaceae
- •Тема 33. Magnoliophyta, Magnoliopsida, lamiidae: Solanaceae, Lamiaceae, Scrophulariaceae, Boraginaceae, Plantaginaceae
- •Тема 34. Magnoliophyta, Magnoliopsida, asteridae:
- •Тема 35. Magnoliophyta, lilioPsida, liliidae: Convallariaceae, Liliaceae, Orchidaceae, Poaceae
- •Тема 36. Уирс: Морфологическое исследование избранных растений из магнолиофит и определение видовой принадлежности предложенных образцов растений
- •План морфологического описания растения
- •Цветок с простым околоцветником
- •Ботаника Практический курс
На предметное стекло наносится капля воды.
Пинцетом объект помещается в каплю воды.
С помощью пинцета поверх капли воды помещается покровное стекло. Если из-под стекла выступает вода, то она удаляется фильтровальной бумагой. Если пространство под стеклом частично не заполнено водой, которая добавляется пипеткой.
Для изучения строения эпидермиса
2.1.Промываются и протираются предметное и покровное стекла.
2.2.На предметное стекло наносится капля воды.
2.3.Эпидермис надрывается иглой.
2.4.Часть эпидермиса отделяется пинцетом и помещается в каплю воды.
2.5.С помощью пинцета поверх капли воды помещается покровное стекло. Если из-под стекла выступает вода, то она отсасывается фильтровальной бумагой, если пространство под стеклом частично не заполнено водой, она добавляется пипеткой.
Для изучения поперечного среза органа
Промывают и протирают предметное и покровное стекла.
На предметное стекло наносится капля воды.
Лезвием вырезается неповрежденная часть органа.
Исследуемая поверхность выравнивается перпендикулярно к оси органа.
Лезвие помещается на изучаемую поверхность так, чтобы оно прикрывало 1/3 поверхности. Скользящим движением выполняется срез.
Срез с лезвия иглой снимается в каплю воды.
Для исследования необходимо в каплю воды поместить 2-6 срезов в зависимости от их размеров. В случае необходимости провести обработку реактивами.
С помощью пинцета поверх капли воды помещается покровное стекло. Если из-под стекла выступает вода, то она отсасывается фильтровальной бумагой, если пространство под стеклом частично не заполнено водой, она добавляется пипеткой.
Для изучения продольного среза органа
Промывают и протирают предметное и покровное стекла.
На предметное стекло наносится капля воды.
Лезвием вырезается неповрежденная часть органа.
Лезвием удаляется часть органа на глубину необходимую для исследования.
Лезвие помещается на изучаемую поверхность. Скользящим движением выполняется срез.
4.6. Срез с лезвия иглой снимается в каплю воды. С помощью пинцета поверх капли воды помещается покровное стекло. Если из-под стекла выступает вода, то она отсасывается фильтровальной бумагой, если пространство под стеклом частично не заполнено водой, она добавляется пипеткой.
С частными методами приготовления препаратов студент знакомится в процессе выполнения самостоятельной работы.
Работа 3. Основные методы окрашивания препаратов
1. Окрашивание временных препаратов
Поднять покровное стекло препаровальной иглой.
Добавить к препарату каплю реактива.
Закрыть покровным стеклом.
Рассмотреть при малом увеличении.
Зарисовать объект при малом увеличении.
Записать в тетрадь (альбом) результат окрашивания.
Поместить рядом с покровным стеклом каплю реактива так, чтобы она прикасалась к ребру покровного стекла.
У другого противоположного ребра покровного стекла приложить полоску фильтровальной бумаги, для оттягивания воды из препарата.
Проследить постепенное окрашивание объекта при малом увеличении.
Зарисовать объект. Записать результат окрашивания.
Окрашивание препаратов с применением реактивов с концентрированной серной кислотой
Проверить качество приготовления временного препарата при малом увеличении микроскопа.
Поднять покровное стекло при помощи препаровальной иглы.
Снять покровное стекло.
Осушить препарат фильтровальной бумагой.
Добавить реактив, а затем каплю раствора кислоты серной 50%.
Выдержать препарат 1-2 мин. до появления окрашивания.
Промыть препарат водой.
Осушить предметное стекло, убрав избыток воды.
Накрыть покровным стеклом.
Рассмотреть при малом увеличении микроскопа.
Зарисовать объект. Записать в тетрадь (альбом) результат окрашивания.
Работа 4. Основные реактивы и их действие.
Переписать в альбом содержание таблицы:
Название реактива |
Объект окрашивания |
Результат действия, ЦВЕТ |
1 |
2 |
3 |
Оранж. (кислотный краситель) |
древесина |
красный |
Хлор-цинк-йод |
древесные волокна |
желто-коричневый |
Хлор-цинк-йод |
клетчатка |
сине-фиолетовый |
I2 в KI (р-р Люголя) |
крахмал |
синий, фиолетовый |
белки |
желтый, оранжевый | |
Судан III |
жиры, жироподобные вещества, пробка, кутин |
оранжевый или оранжево-красный |
Флороглюцин + 50%-ная H2SO4 |
Древесина (ЛИГНИН) |
малиново-красный |
Работа 5. Приготовление временных препаратов
Приготовить 3 временных препарата объектов, предложенных преподавателем. Рассмотреть их при малом и большом увеличении микроскопа. Зарисовать часть объекта.
Работа 6. Окрашивание препаратов
Один из препаратов окрасить раствором флороглюцина и раствором кислоты серной 50%. Результат окрашивания записать в альбом.
Контрольные вопросы
Название частей микроскопа и их назначение.
Правила работы с микроскопом.
Методы приготовления временных препаратов.
Основные реактивы и их действие.